JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هذا الفيديو يوضح إعداد الثقافات العصبية الأولية من العقول في وقت متأخر من مرحلة الشرانق ذبابة الفاكهة. آراء الثقافات الحية تظهر ثمرة neurite والتصوير باستخدام مستويات الكالسيوم Fura - 2.

Abstract

في هذا الفيديو ، ونبدي استعدادا للثقافات العصبية الأولية من العقول في وقت متأخر من مرحلة الشرانق ذبابة الفاكهة. يبدأ الإجراء مع إزالة العقول من الحيوانات في 70-78 ساعة بعد تشكيل puparium. وأظهرت أدمغة معزولة بعد حضانة قصيرة في غراء تليها يغسل عدة في وسط النمو المصل الحرة. ويتضح من عملية التفكك الميكانيكي للدماغ في كل قطرة 5 المجاهدين من وسائل الإعلام على ساترة. وعلى المحاور sheered و dendrites من الخلايا العصبية في مرحلة ما بعد الإنقسامية قبالة قرب سوما خلال تفارق ولكن تبدأ الخلايا العصبية لتجديد العمليات في غضون ساعات قليلة من الطلاء. تظهر الصور الثقافات تعيش في 2 يوما. الخلايا العصبية مواصلة تطويرها العمليات خلال الأسبوع الأول في مجال الثقافة. يمكن التعرف على السكان العصبية المحددة في الثقافة GAL4 باستخدام خطوط لمحرك التعبير أنسجة معينة من علامات الفلورسنت مثل GFP أو طلب تقديم العروض. وقد أظهرت التسجيلات خلية كاملة من الخلايا العصبية مثقف شكل وظيفي ونشطة بشكل تلقائي والمشابك كوليني GABAergic. قطعة شريط فيديو قصير يوضح ديناميات الكالسيوم في الخلايا العصبية مثقف باستخدام Fura - 2 باعتبارها الكالسيوم صبغ المؤشر لمراقبة العابرين الكالسيوم عفوية والنيكوتين أثار ردود الكالسيوم في طبق من الخلايا العصبية مثقف. هذه الثقافات الدماغ العذراء هي نظام نموذجا مفيدا يمكن من خلالها استخدام أدوات والدوائية الجينية لتحديد العوامل الجوهرية التي تؤثر على وخارجي تشكيل وظيفة نقاط الاشتباك العصبي المركزي.

Protocol

الاستعدادات قبل يوم من زراعة :

  1. جعل تشريح محلول معقم.
  2. جعل DMEM معقمة والاحتفاظ بها في 10 مل aliquots في 4 أسابيع لمدة 2 درجة مئوية.
  3. جعل العقيمة DDM2 ملاحق وتجميد في 50 أو 100 aliquots ميكرولتر : 1 الشهر.
  4. جعل كونا / laminin.
  5. معطف coverslips.
    اختياري : قم CNBM العقيمة وتخزينها مجمدة لمدة تصل إلى 4 أشهر.

في يوم من زراعة

أولا تحضير محلول أنزيم (ES) في غطاء تدفق الصفحي

  1. وضع 5 مل من تشريح الحل (DS) في أنبوب 15 مل الطرد المركزي.
  2. تزن 0،8 ملغ من سيستين - L في إيبندورف 0.6 مل وإضافة 150 ميكرولتر من DS. ماصة صعودا ونزولا حتى تختفي البلورات.
  3. إضافة 150 مل من DS / DS سيستين إلى 5 مل وتخلط جيدا.
  4. إضافة 50 يو (وحدة) من غراء.
  5. إضافة 7 مل من 0.1 OH نا N وتخلط جيدا. سيكون حل واضح في غضون 30 دقيقة. عندما يتم تنشيطها.
  6. حل تصفية الانزيم مع 0.2 ملم تصفية المحاقن المعقمة إلى 1.5 مل المسمار سقف أنبوب microfuge

    غراء : هل ترغب في يو 50 س 5 مل. كل دفعة يختلف قليلا ، لذلك يجب حساب مقدار :
    37.3 ملغ / مل و 28.3 U / ملغ
    37.3 X 28.3 = 1055.59 يو / مل (1000 مل)
    50 U = 47.4 مل

II. جعل وسائل الاعلام DDM2

في يوم من زراعة : إضافة المكملات التالية لإجراء DDM2

إلى 10 مل من DMEM إضافة ملاحق ، وقبل زراعة :

  1. 100μl ترانسفيرين
  2. 100μl بوتريسين
  3. 100μl السيلينيوم
  4. 100μl البروجسترون
  5. 50μl الأنسولين
  6. 10μl 20 Hydroxyecdysone

ملاحظة : تحقق ما يكفي لجميع الثقافات DDM2 المخططة (كل الدماغ مطلي على ساترة واحد في الفردي 35 مم طبق بتري ، 1.5 مللي ثانية من وسائل الإعلام / ثقافة)

الخطوة يمكن أن تكون من الثالث إلى السادس في المختبرات nonsterile القيام به ، وينبغي أن يكتمل في 45 دقيقة أو أقل.

III. كوكتيل الشرانق

  1. حدد 10-15 الشرانق من الجانبين من قارورة تشريح تحت المجهر.
  2. الشرانق في مكان غطاء جافة 35 مم طبق بتري.

ملاحظة : نحن نستخدم العقل عموما من الشرانق ما بين 55-78 ساعة بعد تشكيل puparium (APF). يصعب قليلا إلى خارج تشريح الدماغ من الشرانق الاصغر منذ كبسولات رئيس تميل إلى الانهيار ، في حين أن المستوى العام للثمرة neurite أقل قليلا من أقدم الشرانق. في سلالة wildtype كانتون - S ، يتم التعرف على هذه المراحل من قبل عيون الصباغية التي البني الفاتح إلى الحمرة قليلا ، قليلا مع الصباغ في أماكن أخرى.

رابعا. قطع الرأس تحت مجهر تشريح

  1. مكان قطرتين من محلول معقم في تشريح غطاء صحن بيتري ، بجانب الشرانق.
  2. عقد بلطف خادرة واحدة مع غرامة ملقط في اليد اليسرى واستخدام حقنة قياس 27 إبرة تعلق على حقنة سم مكعب 1 في اليد اليمنى لإزالة إهاب في نهاية الأمامي للخادرة.
  3. خادرة الضغط قليلا مع ملقط ورئيسا تبرز استخدام إبرة قياس 27 الى قطع العنق.
  4. مع غيض من إبرة أو الملقط ، ونقل رأسه إلى قطرة من تشريح الحل.
  5. كرر حتى يكون لديك رؤساء 10-15 في قطرة واحدة.

خامسا إزالة المخ من الرأس تحت مجهر تشريح

  1. في كل ناحية عقد حقنة سم مكعب 1 مع إبرة قياس 27.
  2. استخدام هذه لموقف رئيس الطيران في قطرة من تشريح حل حتى خرطوم باتجاهك والسطح الظهري للرأس والشمال.
  3. ادخال الإبرة اليسار في خرطوم لدبوس رئيس لأسفل واستعمال إبرة الحق في إجراء شق في العين اليمنى التي تذهب من بطني إلى السطح الظهري.
  4. ادخال الإبرة بالقرب من حق اليسار في منطقة خرطوم ثم استخدام الإبرة اليسار إلى خفض بلطف إهاب على العين اليسرى ، مما دفع الدماغ تجاه فتحة في العين اليمنى. وينبغي أن الدماغ الخروج من فتحة على اليمين ، سليمة نسبيا ، وغالبا مع كل من لو البصريةبيز لا تزال تعلق وأحيانا مصطبغة نسيج العين أيضا.
  5. دفع الدماغ على الجزء الخلفي من الإبرة ونقل إلى قطرة من المياه المالحة عقيمة في تشريح جديدة معقمة ، 35 طبق بيتري ملم.
  6. جمع 10-15 العقول لكل الوراثي.

سادسا. إزالة الفص البصري والعلاج الانزيم

  1. في كل ناحية عقد حقنة سم مكعب 1 مع إبرة قياس 27 و استخدامها لجمع كل هذه العقول في منطقة واحدة صغيرة من قطرة من حل تشريح
  2. استخدام المحاقن وأدوات القطع لإزالة الفص البصري في الدماغ من كل ذلك النسيج المتبقية للثقافة هي المنطقة المركزية في الدماغ.
  3. استخدام pipetman 20 ميكرولتر ، التي حددت في 5 ميكرولتر ، لنقل كل العقول من النمط الجيني واحد لأنبوب إيبندورف تحتوي على 1 مل من محلول غراء العقيمة.
  4. أدمغة المحتضنة في غراء لمدة 10-15 دقيقة على مجموعة المدورة في 60 دورة في الدقيقة.
  5. أجهزة الطرد المركزي في 3000 دورة في الدقيقة لمدة 3 دقائق.

معقمة داخل غطاء تدفق الصفحي -- ينبغي لجميع الخطوات التي تعرض الأنسجة للهواء ينبغي القيام به في التدفق الصفحي غطاء لتنفيذ الخطوات المتبقية.

سابعا. غسل

  1. إزالة حل ويحل محل الانزيم مع محلول معقم تشريح.
  2. أجهزة الطرد المركزي في 3000 دورة في الدقيقة لمدة 3 دقائق.
  3. يغسل مع محلول معقم تشريح ما مجموعه 3 مرات.
  4. إزالة الملوحة تشريح واستبدالها مع DDM2.
  5. أجهزة الطرد المركزي ، ويغسل ما مجموعه 2 مرات مع DDM2.
  6. نقل العقول وسائل الإعلام إلى العقيمة 35 مم طبق بتري.

ثامنا. سحن والتصفيحات تشريح تحت المجهر

  1. 5 المكان المقدس من DDM2 في وسط ساترة.
  2. 1 نقل الدماغ لهذا الانخفاض من DDM2 مع طرف الصفراء.
  3. تحت المجهر ، واستخدام إبر عيار 27 إلى النرد يصل الدماغ الى قطع صغيرة (وينبغي أن تتخذ <1 دقيقة).
  4. تحت التوجيه البصري ، وكسر غيض من الزجاج الماصة التي تم سحبها إلى نقطة دقيقة بحيث يمكن أن تكون أكبر قطعة امتص برفق في غيض من الماصة وطرد مرة أخرى في المتوسط. نستخدم أنابيب شفط الفم القياسية التي تأتي مع 100 ميكرولتر الهيماتوكريت الزجاج الشعرية.

    ملاحظة : احرص على عدم الحصول على فقاعات في وسائل الإعلام ، وسوف تحتاج إلى تحديد تجريبيا الماصة أفضل حجم الاستخدام. الجيدة منها تسمح لك فصل المخ مع بعض الخلايا الفردية ومازال بعض كتل كبيرة ، في حوالي 30 ثانية / الدماغ. عندما تنظر إلى هذه في أعلى السلطة ، وينبغي أن حوالي 10-20 ٪ من الخلايا العصبية لا تزال بعض العمليات المتبقية ، وستظل هناك بعض كتل كبيرة. إذا كنت تنأى كثيرا ، وبعد ذلك سوف تكون جميع الخلايا المستديرة وسيكون لديهم الكثير لحقت بها أضرار أنهم لن يكتب له البقاء. هذه الخطوة تأخذ الممارسة ويجب أن يتم بسرعة لأن هناك عدد كبير السطحية إلى نسبة حجم ودرجة الحموضة والأسمولية من قطرة DDM2 يمكن أن تتغير بسرعة. الأنسجة يحتاج إلى أن يوضع في الحاضنة CO 2 في أسرع وقت ممكن.

  5. الكتابة على الغطاء طبق بيتري : "الوراثي ، والتاريخ والوقت".
  6. وضع طبق بتري 35 ملم في طبق بتري مم 100 (مع kimwipe الرطب) والسماح للتسوية في الحاضنة CO 2 لمدة 30 دقيقة.
  7. الفيضانات الطبق 35 ملم مع 1.5 مل من DDM2.
  8. إبقاء الثقافات في الحاضنة في 5 ٪ CO 2 الحاضنة (23 درجة مئوية).

    ملاحظة : إذا لم يكن لديك الوصول إلى حاضنة CO 2 التبريد ، واستخدام معيار الثقافة أنسجة الثدييات الحاضنة وضعت إما في غرفة باردة والحرارة إلى 23 درجة مئوية ، أو وضعها في المختبر ، إيقاف مؤقت ، واستخدام الجليد في صينية في أسفل الحاضنة لتنظيم درجة الحرارة في جميع أنحاء الغرفة.

تاسعا. تغذية الخلايا

  1. يوم 1 (اليوم التالي) ، إضافة 0.5 مل من CNBM/B27 (وسائل الإعلام مشروطة) لجعل 03:01 DDM2 : CNBM/B27.
  2. في يوم 5 1 مل تحل محل وسائل الاعلام لل03:01 DDM2 : CNBM/B27.
  3. مع إبقاء خلايا التغذية 03:01 DDM2 : CNBM/B27 كل 4-5 أيام.

    ملاحظة : يمكن زراعتها دون الثقافات وسائل الإعلام غير مشروطة ولكن العصبية الخلايا العصبية يبدو قليلا أكثر هشاشة وأكثر صعوبة لاستخدامها في تجارب الكهربية.

Discussion

يمكن زراعة الخلايا العصبية التي تحصد من أدمغة الفئران الجنينية / ما بعد الولادة في الثقافة الخلية الأولية حيث تمتد neurites اتصالات وشكل متشابك وظيفية. هي راسخة طرق تحضير هذه الثقافات والدراسات في ثقافات القوارض العصبية لعبت دورا حاسما في تحديد الجينات والعوامل البيئية المتورطين ?...

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة لمنح NS27501 DKOD. وقدمت دعما إضافيا لهذا العمل من خلال منحة لجامعة كاليفورنيا في ايرفين في دعم DKOD من خلال برنامج أستاذ HHMI.

Materials

Coverslips طلاء : ضع coverslips تعقيمها في طبق بتري 60 مم. الماصة 5 من المجاهدين الموالين مزيج Laminin / على مركز كل ساترة. مكان في الحاضنة لمدة 2 C 37 ساعة. شطف coverslips 3X مع 100 UL تعقيمها كل من المياه. استخدام الفراغ يعلق على الماصة باستور العقيمة. خلال مشاركة شطف ، التقط ساترة مع ملقط والجافة الجانبين. نقل ساترة لطبق بيتري 35mm. تخزين في درجة حرارة الغرفة لمدة تصل الى شهر.

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1991).
  2. Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and Modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).
  3. O'Dowd, D. K. Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium. J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).
  4. Lee, D., O'Dowd, D. K. Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons. J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).
  5. Su, H., O'Dowd, D. K. Fast synaptic currents in Drosophila mushroom body Kenyon cells are mediated by alpha-bungarotoxin-sensitive nAChRs and picrotoxin-sensitive GABA receptors. J. Neurosci. 23, 9246-9253 (2003).
  6. Jiang, S. A., Campusano, J. M., Su, H., O'Dowd, D. K. Drosophila mushroom body Kenyon cells generate spontaneous calcium transients mediated by PLTX-sensitive calcium channels. J. Neurophysiol. 94, 491-500 (2005).
  7. Campusano, J. M., Su, H., Jiang, S. A., Sicaeros, B., O'Dowd, D. K. nAChR-mediated calcium responses and plasticity in Drosophila Kenyon cells. Develop Neurobiol. 67, 1520-1532 (2007).
  8. Oh, H. -. W., Campusano, J. M., Hilgenberg, L. G. W., Sun, X., Smith, M. A., O'Dowd, D. K. Ultrastructural analysis of chemical synapses and gap junctions between Drosophila brain neurons in culture. Develop Neurobiol. , (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

4 Fura 2

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved