JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Mechanical stress can induce the chondrogenic differentiation of stem cells, providing a potential therapeutic approach for the repair of impaired cartilage. We present a protocol to induce the chondrogenic differentiation of adipose-derived stem cells (ASCs) using centrifugal gravity (CG). CG-induced upregulation of SOX9 results in the development of chondrogenic phenotypes.

Abstract

Impaired cartilage cannot heal naturally. Currently, the most advanced therapy for defects in cartilage is the transplantation of chondrocytes differentiated from stem cells using cytokines. Unfortunately, cytokine-induced chondrogenic differentiation is costly, time-consuming, and associated with a high risk of contamination during in vitro differentiation. However, biomechanical stimuli also serve as crucial regulatory factors for chondrogenesis. For example, mechanical stress can induce chondrogenic differentiation of stem cells, suggesting a potential therapeutic approach for the repair of impaired cartilage. In this study, we demonstrated that centrifugal gravity (CG, 2,400 × g), a mechanical stress easily applied by centrifugation, induced the upregulation of sex determining region Y (SRY)-box 9 (SOX9) in adipose-derived stem cells (ASCs), causing them to express chondrogenic phenotypes. The centrifuged ASCs expressed higher levels of chondrogenic differentiation markers, such as aggrecan (ACAN), collagen type 2 alpha 1 (COL2A1), and collagen type 1 (COL1), but lower levels of collagen type 10 (COL10), a marker of hypertrophic chondrocytes. In addition, chondrogenic aggregate formation, a prerequisite for chondrogenesis, was observed in centrifuged ASCs.

Introduction

عيوب في الغضروف المفصلي لا تلتئم بشكل طبيعي. ونتيجة لذلك، وقف وقد اقترح زرع الخلايا كنهج واعدة لإصلاح الغضروف ضعف. ومع ذلك، هذا الأسلوب يتطلب على حد سواء الحصول على عدد كاف من الخلايا الجذعية وتحريض هذه الخلايا على الخضوع التمايز المولدة للغضروف. نخاع العظم (BM) وقد استخدم على نطاق واسع كمصدر للخلايا الجذعية، لكن العزلة خلية من BM اثنين من عيوب رئيسية هي: الغزو وعدم كفاية العائد. بسبب سهولة اقتناء والأنسجة الدهنية مصدرا مفضلا للخلايا الجذعية. وأظهرت دراسات سابقة إمكانية عزل الخلايا الجذعية من الأنسجة الدهنية ويحفز التمايز المولدة للغضروف في هذه الخلايا باستخدام السيتوكينات، مثل TGF-β1 1 و 2. هذه الطرق فعالة لكنها باهظة الثمن.

باعتبارها أقل تكلفة البديل لالسيتوكينات، إجهاد يمكن استخدامها للحث على تمايز المولدة للغضروف. تحميل الميكانيكية يلعب دورا حاسما في الحفاظ على صحة الغضروف المفصلي ويمكن أن تحدث الظواهر المولدة للغضروف في خلايا مختلفة. على سبيل المثال، الضغط الهيدروليكي يدفع الظواهر المولدة للغضروف في الخلايا الاولية المستمدة من الغشاء الزليلي عبر خطة عمل البحر المتوسط كيناز / JNK مسار والضغط الميكانيكي يدفع تكون الغضروف في الخلايا الجذعية الوسيطة الإنسان (اللجان الدائمة) من خلال upregulating الجينات chondrocytic 5. وبالإضافة إلى ذلك، إجهاد القص يساهم في التعبير عن ذات الصلة تكون الغضروف المصفوفة خارج الخلية (ECM) في اللجان الدائمة الإنسان 6. خطورة الطرد المركزي (م)، وإجهاد تطبيقها بسهولة والتحكم التي تم إنشاؤها بواسطة الطرد المركزي، يمكن أن تحفز التعبير الجيني الفرق في الخلايا 7. على سبيل المثال، في خلايا سرطان الرئة الظهارية، وupregulated التعبير عن انترلوكين (IL) -1b بواسطة الطرد المركزي 8. تيherefore، باعتبارها إجهاد محرض تجريبيا، CG يمكن أن تستخدم للحث على التعبير الجيني chondrocytic في الخلايا الجذعية. ومع ذلك، فإنه لا يزال من غير الواضح ما إذا كانت CG يمكن أن تحفز على تمايز الخلايا الجذعية المولدة للغضروف.

في هذه الدراسة، وجدنا أن CG يسببها upregulation من SOX9، المنظم الرئيسي لتكون الغضروف، في مخولا لصيانة طائرات الإنسان، مما أدى إلى overexpression من الجينات chondrocytic. وبالإضافة إلى ذلك، فإننا مقارنة آثار CG على الغضروف مع تلك TGF-β1، وعامل النمو الأكثر شيوعا للحث في المختبر تكون الغضروف في الخلايا الجذعية.

Protocol

تمت الموافقة على هذا البروتوكول الدراسة من قبل مجلس المراجعة المؤسسية للجامعة الكاثوليكية في كوريا (KC16EAME0162) وإجراء فقا للمبادئ التوجيهية المعاهد الوطنية للصحة. تم الحصول على جميع أنسجة مع الموافقة المسبقة عن مكتوب.

1. الطرد المركزي الجاذبية تحميل وبيليه الثقافة

  1. زراعة الخلايا والحصاد
    1. مخولا لصيانة طائرات الثقافة (P2-P3، انظر قائمة من المواد) في Dulbecco لتعديل المتوسطة انخفاض مستوى السكر في النسر (DMEM-LG) تستكمل مع المصل 10٪ بقري جنيني (FBS) و 1٪ البنسلين / الستربتومايسين (P / S) عند 37 درجة مئوية في حاضنة مرطب يحتوي على 5٪ CO 2.
    2. عندما تصل الخلايا 80٪ التقاء، تجاهل المتوسطة وغسل الخلايا مع 5 مل من 1X الفوسفات مخزنة المالحة (PBS).
    3. إضافة 1 مل من برنامج تلفزيوني يحتوي على 1 ملم EDTA واحتضان لمدة 2 دقيقة عند 37 درجة مئوية في حاضنة مرطب يحتوي على 5٪ CO 2.
    4. اضغط على لوحة الثقافة بلطف، إضافة 4 مل من متوسطة جديدة، نقل الخلايا إلىأنبوب 15 مل المخروطية، وأجهزة الطرد المركزي الخلايا في 250 × ز لمدة 2 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (RT).
  2. الطرد المركزي الجاذبية تحميل
    1. بعد الطرد المركزي (الخطوة 1.1.4)، وإزالة طاف دون الإخلال بيليه و resuspend بيليه في 10 مل من DMEM-LG مع FBS 10٪. عد الخلايا باستخدام عدادة الكريات.
    2. الفريق الاستشاري للتحميل، ونقل 2.5 × 10 5 الخلايا إلى أنبوب مخروطي 15 مل جديد وأجهزة الطرد المركزي في 2400 × ز لمدة 15 دقيقة.
  3. ثقافة بيليه
    1. مباشرة بعد الطرد المركزي، ونضح طاف وإضافة 500 ميكرولتر من يعرف متوسطة التمايز المولدة للغضروف (CDM، وارتفاع الجلوكوز DMEM تستكمل مع 1٪ FBS، 1٪ ITS + بريمكس، 100 نانومتر ديكساميثازون، 1X MEM غير الضرورية حل الأحماض الأمينية، 50 ميكروغرام / مل L-البرولين، و 1٪ البنسلين / الستربتومايسين). إضافة 50 ميكروغرام / مل من الطازجة حمض الأسكوربيك L-2-الفوسفات في كل تغيير المتوسط. كما تحكم إيجابية، لحث differentiati مكون للغضروفعلى الخلايا uncentrifuged بإضافة آلية التنمية النظيفة التي تحتوي على 10 نانوغرام / مل TGF-β1.
    2. وضع أنابيب توج فضفاضة تحتوي على الكريات في وضعية الوقوف واحتضان عند 37 درجة مئوية في حاضنة مرطب يحتوي على 5٪ CO 2.
    3. تغيير المتوسط ​​كل يوم لمدة 3 أسابيع.
  4. ثقافة MICROMASS
    1. مباشرة بعد الطرد المركزي (الخطوة 1.2.2، 2400 × ز لمدة 15 دقيقة)، ونضح طاف و resuspend بيليه في 10 ميكرولتر من آلية التنمية النظيفة.
    2. لتشكيل MICROMASS، وضع الخلايا معلق في وسط بئر من 24 لوحة جيدا.
    3. بعد 2 ساعة، إضافة بعناية 1 مل من آلية التنمية النظيفة إلى البئر، pipetting لضد الجدار لوحة لتجنب تعطيل MICROMASS. كما تحكم إيجابية، نفذ ثقافة MICROMASS مع خلايا uncentrifuged بإضافة آلية التنمية النظيفة التي تحتوي على 10 نانوغرام / مل TGF-β1.
    4. احتضان MICROMASS عند 37 درجة مئوية في حاضنة مرطب يحتوي على 5٪ CO 2.
    5. تغيير إف المتوسطريها يوم لمدة 3 أسابيع.

2. عكسي الناسخ، البلمرة المتسلسل (RT-PCR) للكشف الترانسكربتي Upregulation من مكون للغضروف التمايز علامات

  1. في يوم 14، واستخدام ماصة لنقل الكريات كروي لأنبوب جديد 1.5 مل وغسلها في برنامج تلفزيوني 1X.
  2. استخراج الحمض النووي الريبي مجموع من الكريات باستخدام guanidinium ثيوسيانات الفينول كلوروفورم طريقة استخراج 9.
  3. توليف [كدنا من 2 ميكروغرام من الحمض النووي الريبي مجموع باستخدام الناسخ العكسي وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة (احتضان عند 42 درجة مئوية لمدة 1 ساعة ثم تعطيل انزيم على 70 درجة مئوية لمدة 5 دقائق).
  4. أداء PCR مع الاشعال محددة للعلامات التمايز المولدة للغضروف 10.

3. تلطيخ للكشف عن overexpression من مكون للغضروف التمايز ماركر البروتينات

  1. الكريات خلية تضمين البارافين
    1. في يوم 21،استخدام ماصة للحصاد الكريات كروي وغسلها مع برنامج تلفزيوني 1X.
    2. إصلاح الكريات كروي عن طريق الغمر في 4٪ امتصاص العرق لمدة 24 ساعة.
      تحذير: لامتصاص العرق عالية السمية. تجنب ملامسة العينين والجلد، أو الأغشية المخاطية. تقليل التعرض وتجنب استنشاق أثناء التحضير. ارتداء معدات الوقاية الشخصية المناسبة.
    3. تجاهل تثبيتي، وشطف الكريات الخلايا مع الماء منزوع الأيونات (DW).
    4. وضع طبقة واحدة من الشاش على الكاسيت ونقل الكريات الثابتة باستخدام ماصة. تغطية بيليه عن طريق طي الشاش وإغلاق غطاء كاسيت.
    5. يذوى الكريات.
      1. تزج الكريات في 70٪ من الإيثانول (ETOH) لمدة 5 دقائق على RT.
      2. تزج الكريات في 80٪ ETOH لمدة 5 دقائق على RT.
      3. تزج الكريات في 95٪ ETOH لمدة 5 دقائق على RT.
      4. تزج الكريات في 100٪ ETOH لمدة 5 دقائق على RT. كرر مرتين.
      5. تزج الكريات في 100٪ الزيلين لمدة 15 دقيقة في RT. كرر التويم.
    6. تضمين الكريات خلية ثابتة في البارافين عند 56 درجة مئوية في القالب. يمكن أن تكون جزءا لا يتجزأ من الكريات في البارافين باستخدام نظم معالجة الأنسجة الآلي المتخصصة.
    7. قطع 5 أقسام ميكرون سميكة من الخلية بيليه جزءا لا يتجزأ من البارافين باستخدام مشراح الدوارة.
    8. تعويم المقاطع في 50٪ ETOH ومن ثم نقلها إلى حمام الماء 50 درجة مئوية باستخدام الشرائح.
    9. ضع أقسام عائمة على الشرائح.
  2. سفرانين يا وتلطيخ الأزرق الألسيان
    1. ترطيب أقسام البارافين.
      1. تزج الشرائح في الزيلين لمدة 15 دقيقة. كرر مرتين.
      2. تزج الشرائح في 100٪ ETOH لمدة 5 دقائق. كرر مرتين.
      3. تزج الشرائح في 90٪ ETOH لمدة 5 دقائق.
      4. تزج الشرائح في 80٪ ETOH لمدة 5 دقائق.
      5. تزج الشرائح في 70٪ ETOH لمدة 5 دقائق، ثم غسلها في برنامج تلفزيوني 1X.
    2. وصمة عار على أقسام ممهى مع 1٪ سفرانين يا حل و 3٪ الأزرق الألسيان ل30 دقيقة.
    3. تجاهل الحل تلطيخ وشطف المقاطع مع DW.
    4. وصمة عار على أقسام مع حل الهيماتوكسيلين / يوزين (مباين) لمدة 1 دقيقة.
    5. تجاهل الحل تلطيخ وشطف المقاطع مع DW.
    6. ضع قطرة من متوسطة متزايدة على ساترة بعد إزالة أي المياه المتبقية. وضع بعناية الشريحة (الجانب الخلية أسفل) على ساترة تحتوي على المتوسطة المتزايدة.
    7. السماح للشرائح حتى يجف لمدة 2-3 ساعة عند RT.
    8. التقاط الصور باستخدام المجهر مشرق الميدان (الآلي المجهر تستقيم، 50X و200X).
  3. المناعي فحص
    1. ترطيب أقسام كما هو موضح في القسم 3.2.1.
    2. تزج الشرائح في المخزن سيترات الصوديوم (10 ملي سيترات الصوديوم، 0.05٪ توين 20، ودرجة الحموضة 6.0)، ثم الحفاظ عليها عند درجة حرارة الغليان الفرعية لمدة 10 دقيقة باستخدام الميكروويف.
    3. تبريد الشرائح لمدة 20 دقيقة في RT ثم غسلها بماء الصنبور.
    4. احتضان الشرائح في 3٪H 2 O 2 (في برنامج تلفزيوني 1X) لمدة 15 دقيقة، ثم يغسل لهم ماء الصنبور لمدة 15 دقيقة 11.
    5. منع الشرائح مع عازلة تمنع (10٪ مصل الماعز العادي في برنامج تلفزيوني) لمدة 1 ساعة.
    6. نضح عرقلة الحل، ومن ثم تطبيق الأجسام المضادة الأولية المخفف مع 5٪ مصل الماعز العادي على الشرائح.
    7. احتضان الشرائح بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية.
    8. غسل الشرائح ثلاث مرات في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 5 دقائق لكل منهما.
    9. احتضان الشرائح في الأجسام المضادة الثانوية-تألقي مترافق المخفف مع 5٪ مصل الماعز العادي لمدة 1 ساعة على RT في الظلام.
    10. غسل الشرائح ثلاث مرات في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 5 دقائق كل في الظلام.
    11. احتضان الشرائح مع دابي (1 ميكروغرام / مل) لمدة 10 دقيقة، ثم يغسل لهم مرتين في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 5 دقائق لكل منهما.
    12. ضع قطرة من متوسطة متزايدة على ساترة بعد إزالة أي المياه المتبقية. وضع بعناية الشريحة (الجانب الخلية أسفل) على تصاعد المتوسط.
    13. السماح للشرائح حتى يجف لمدة 2-3ساعة في الظلام في RT.
    14. تصور الشرائح باستخدام المجهر مضان (Rhod: 594 نانومتر، دابي: 340 نانومتر؛ 60X والتكبير 200X) 12.

النتائج

خطورة الطرد المركزي تحرض على overexpression من علامات التمايز المولدة للغضروف في الخلايا الجذعية الدهنية المشتقة.

لتحديد درجة قوة الجاذبية الطرد المركزي التي هي مناسبة للحث على تمايز المولدة للغضرو...

Discussion

الدولة stemness الخلايا مهمة جدا ل overexpression الناجم عن CG-من SOX9. في دراستنا، يمكن أن يتسبب التعبير SOX9 التي كتبها CG في مخولا لصيانة طائرات المبكر مرور (2-3)، ولكن ليس في مخولا لصيانة طائرات في وقت لاحق-مرور. وقد أفيد أنه خلال زراعة، مخولا لصيانة طائرات تحتوي على CD34 + الخلايا حتى 3 ...

Disclosures

We declare that we have no conflicts of interest associated with this work.

Acknowledgements

This research was supported by a grant of the Korea Health Technology R&D Project through the Korea Health Industry Development Institute (KHIDI), funded by the Ministry of Health & Welfare, Republic of Korea (grant number: HI14C2116) and by Research Fund of Seoul St. Mary's Hospital, The Catholic University of Korea.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Plasticware
100 mm DishTPP93100
60 mm DishTPP93060
50 mL Cornical TubeSPL50050
15 mL Cornical TubeSPL50015
10 mL Disposable PipetteFalcon7551
5 mL Disposable PipetteFalcon7543
ASC Culture Media Materials
DPBSLife Technologies14190-144
DMEM Low glucoseLife Technologies11885-084growth base media
Penicilin StreptomycinSigma AldrichP43331%
Fetal Bovine SerumLife Technologies16000-04410%
PBS/1 mM EDTALife Technologies12604-039
Chondrogenic Differentiation Media Materials
DMEM High glucoseLife Technologies11995chondrogenic differentiation base media
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100x)Life Technologies11140-050
DexamethasoneSigma AldrichD2915100 nM
Penicilin StreptomycinLife TechnologiesP43331%
Fetal Bovine SerumLife Technologies16000-0441%
Ascorbate-2-phosphateSigma AldrichA896050 μg/mL
L-prolineSigma AldrichP560750 μg/mL
ITSBD3543521%
Human TGFβ1Peprotech100-2110 ng/mL
Materials
18 mm Cover GlassSuperiorHSU-0111580
4% ParaformaldyhydeTech & InnovationBPP-9004
Tween 20BIOSESANGT1027
Bovine Serum AlbuminVector LabSP-5050
Anti-Collagen II antibodyabcam ab347121:100
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 594 conjugateMolecular ProbeA-110371:200
DAPIMolecular ProbeD1306
Prolong gold antifade reagentInvitrogenP36934
Slide Glass, CoatedHyun Il Lab-MateHMA-S9914
TrizolInvitrogen15596-018
ChloroformSigma Aldrich366919
IsoprypylalcoholMillipore109634
EthanolDuksan64-17-5
RevertAid First Strand cDNA Synthesis kitThermo ScientficK1622
i-Taq DNA PolymeraseiNtRON BIOTECH25021
UltraPure 10x TBE BufferLife Technologies15581-044
loading starDyne BioA750
AgaroseSigma-Aldrich9012-36-6
1 kb (+) DNA ladder markerEnzynomicsDM003
Human adipose-derived stem cells (ASCs)Catholic MASTER Cells

References

  1. Awad, H. A., Halvorsen, Y. D., Gimble, J. M., Guilak, F. Effects of transforming growth factor beta1 and dexamethasone on the growth and chondrogenic differentiation of adipose-derived stromal cells. Tissue Eng. 9 (6), 1301-1312 (2003).
  2. Erickson, G. R., et al. Chondrogenic potential of adipose tissue-derived stromal cells in vitro and in vivo. Biochem Biophys Res Commun. 290 (2), 763-769 (2002).
  3. Sah, R. L., et al. Biosynthetic response of cartilage explants to dynamic compression. J Orthop Res. 7 (5), 619-636 (1989).
  4. Sakao, K., et al. Induction of chondrogenic phenotype in synovium-derived progenitor cells by intermittent hydrostatic pressure. Osteoarthritis Cartilage. 16 (7), 805-814 (2008).
  5. Li, Z., Yao, S. J., Alini, M., Stoddart, M. J. Chondrogenesis of human bone marrow mesenchymal stem cells in fibrin-polyurethane composites is modulated by frequency and amplitude of dynamic compression and shear stress. Tissue Eng Part A. 16 (2), 575-584 (2010).
  6. Alves da Silva, M. L., et al. Chondrogenic differentiation of human bone marrow mesenchymal stem cells in chitosan-based scaffolds using a flow-perfusion bioreactor. J Tissue Eng Regen Med. 5 (9), 722-732 (2011).
  7. Maeda, S., et al. Changes in microstructure and gene expression of articular chondrocytes cultured in a tube under mechanical stress. Osteoarthritis Cartilage. 13 (2), 154-161 (2005).
  8. Yang, J., Hooper, W. C., Phillips, D. J., Tondella, M. L., Talkington, D. F. Centrifugation of human lung epithelial carcinoma a549 cells up-regulates interleukin-1beta gene expression. Clin Diagn Lab Immunol. 9 (5), 1142-1143 (2002).
  9. Rio, D. C., Ares, M., Hannon, G. J., Nilsen, T. W. Purification of RNA using TRIzol (TRI reagent). Cold Spring Harb Protoc. (6), (2010).
  10. Lorenz, T. C. Polymerase chain reaction: basic protocol plus troubleshooting and optimization strategies. J Vis Exp. (63), e3998 (2012).
  11. Jang, Y., et al. UVB induces HIF-1alpha-dependent TSLP expression via the JNK and ERK pathways. J Invest Dermatol. 133 (11), 2601-2608 (2013).
  12. Wu, Y. L., et al. Immunodetection of human telomerase reverse-transcriptase (hTERT) re-appraised: nucleolin and telomerase cross paths. J Cell Sci. 119, 2797-2806 (2006).
  13. Bobick, B. E., Chen, F. H., Le, A. M., Tuan, R. S. Regulation of the chondrogenic phenotype in culture. Birth Defects Res C Embryo Today. 87 (4), 351-371 (2009).
  14. Akiyama, H., Chaboissier, M. C., Martin, J. F., Schedl, A., de Crombrugghe, B. The transcription factor Sox9 has essential roles in successive steps of the chondrocyte differentiation pathway and is required for expression of Sox5 and Sox6. Genes Dev. 16 (21), 2813-2828 (2002).
  15. Lefebvre, V., Huang, W., Harley, V. R., Goodfellow, P. N., de Crombrugghe, B. SOX9 is a potent activator of the chondrocyte-specific enhancer of the pro alpha1(II) collagen gene. Mol Cell Biol. 17 (4), 2336-2346 (1997).
  16. Jang, Y., et al. Characterization of adipose tissue-derived stromal vascular fraction for clinical application to cartilage regeneration. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 51 (2), 142-150 (2015).
  17. Chen, J., et al. Simultaneous regeneration of articular cartilage and subchondral bone in vivo using MSCs induced by a spatially controlled gene delivery system in bilayered integrated scaffolds. Biomaterials. 32 (21), 4793-4805 (2011).
  18. Janzen, V., et al. Stem-cell ageing modified by the cyclin-dependent kinase inhibitor p16INK4a. Nature. 443 (7110), 421-426 (2006).
  19. Muraglia, A., Cancedda, R., Quarto, R. Clonal mesenchymal progenitors from human bone marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model. J Cell Sci. 113, 1161-1166 (2000).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

120 SOX9

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved