JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يصف هذا التقرير طريقة الهندسة الحيوية لتصميم وبناء عوامل الربط الاصطناعي الجديدة (أسفس) التي تعدل على وجه التحديد الربط بين الجينات المستهدفة في خلايا الثدييات. ويمكن توسيع هذه الطريقة لمواصلة هندسة العوامل الاصطناعية المختلفة لمعالجة جوانب أخرى من عملية التمثيل الغذائي للحمض النووي الريبي.

Abstract

وتوسطت تجهيز معظم الرنا RNA حقيقية النواة من البروتينات (الممارسات التجارية التقييدية) مع تكوينات وحدات، بما في ذلك وحدة الاعتراف RNA، الذي يربط على وجه التحديد الهدف قبل مرنا ومجال المستجيب ملزم. سابقا، وقد استفدنا من الحمض النووي الريبي طريقة فريدة ملزم المجال PUF في Pumilio البشرية 1 لتوليد سقالة RNA ملزم للبرمجة، والتي كانت تستخدم لمهندس مختلف الممارسات التجارية التقييدية الاصطناعية للتلاعب استقلاب الحمض النووي الريبي. هنا، يوصف بروتوكول مفصلة لبناء عوامل الربط هندسة (كلية العلوم التربوية) التي تم تصميمها خصيصا لتعديل الربط البديلة من الجينات المستهدفة. ويتضمن البروتوكول كيفية تصميم وبناء سقالة PUF مخصصة لهدف معين RNA، وكيفية بناء تعبير البلازميد ESF عن طريق دمج مجال PUF مصمم ومجال المستجيب، وكيفية استخدام كلية العلوم التربوية لمعالجة الربط من الجينات المستهدفة. في نتائج تمثيلية لهذه الطريقة، التي وصفناها أيضا فحوصات مشتركةأنشطة كلية العلوم التربوية باستخدام صحفيين الربط، تطبيق ESF في الخلايا البشرية المستزرعة، وتأثير لاحق من التغييرات الربط. عن طريق اتباع بروتوكولات مفصلة في هذا التقرير، فمن الممكن لتصميم وتوليد كلية العلوم التربوية لتنظيم أنواع مختلفة من البديل الربط (AS)، وتوفير استراتيجية جديدة لدراسة تنظيم الربط وظيفة الإسوية الربط مختلفة. وعلاوة على ذلك، من خلال دمج مجالات وظيفية مختلفة مع مجال PUF تصميم، يمكن للباحثين مهندس العوامل المصطنعة التي تستهدف الرنا محددة لمعالجة مختلف مراحل معالجة RNA.

Introduction

معظم الجينات البشرية تخضع البديلة الربط (أس) لإنتاج الأشكال الإسوية متعددة مع أنشطة متميزة، مما زاد كثيرا من تعقيد الترميز من الجينوم 1 ، 2 . أس يوفر آلية رئيسية لتنظيم وظيفة الجينات، وينظم بإحكام من خلال مسارات متنوعة في مختلف مراحل الخلوية والتنموية 3 ، 4 . لأن الربط سوء التنظيم هو سبب شائع للمرض البشري 5 ، 6 ، 7 ، 8 ، استهداف تنظيم الربط أصبح طريقا علاجيا جذابا.

وفقا لنموذج مبسط لتنظيم الربط، يتم التحكم أس أساسا عن طريق الربط التنظيمية سيس -Elements (سريس) في مرحلة ما قبل الرنا المرسال التي تعمل كما تعزيز الربط أو كاتمات الصوت من إكسونس البديلة. ثإيس سريس على وجه التحديد تجنيد مختلف العوامل عبر البروتين المتفاعلة ( أي عوامل الربط) التي تعزز أو قمع رد فعل الربط 3 ، 9 . معظم معاملات الربط عبر ترانزلاتينغ لها نطاقات تسلسل رنا منفصلة تسلسل محددة للاعتراف أهدافها ومجالات المستجيب للسيطرة على الربط. الأمثلة الأكثر شهرة هي أعضاء عائلة البروتين سيرين / أرجينين الغنية (سر) التي تحتوي على N- محطة رنا التعرف على الزخارف (رمز)، التي تربط تعزيز الربط إكسونيك، والمجالات C- محطة رس، التي تعزز إدراج اكسون 10 . على العكس من ذلك، يرتبط هنرنب A1 كواتم الصوت الربط إكسونيك من خلال مجالات رم ويمنع إدراج اكسون من خلال C- محطة غلايسين الغنية المجال 11 . باستخدام هذه التكوينات وحدات، يجب أن يكون الباحثون قادرين على هندسة عوامل الربط الاصطناعي من خلال الجمع بين مجال محدد رنا ملزمة (ربد) مع مختلف إفيكتور المجالات التي تنشط أو تثبط الربط.

مفتاح مثل هذا التصميم هو لاستخدام RBD التي تعترف نظرا أهداف مع خصوصية ملزمة RNA للبرمجة، والتي هي مماثلة لوضع الحمض النووي ملزم المجال حكاية. ومع ذلك، فإن معظم عوامل الربط الأم تحتوي على RRM أو K التماثل (KH) المجالات، والتي تعترف عناصر RNA قصيرة مع ضعف تقارب وبالتالي تفتقر إلى التنبؤي RNA البروتين الاعتراف "كود" (12). وRBD من البروتينات تكرار PUF (أي المجال PUF) لديه واسطة الاعتراف RNA فريدة من نوعها، والسماح لإعادة تصميم المجالات PUF الاعتراف تحديدا RNA مختلفة تستهدف 13 و 14. يحتوي المجال PUF الكنسي ثمانية تكرارات لثلاث α-اللوالب، كل الاعتراف قاعدة واحدة في RNA الهدف 8 الإقليم الشمالي. سلاسل الجانب من الأحماض الأمينية في مواقع معينة من ثاني شكل α حلزون روابط هيدروجينية معينة مع حافة واطسون كريك-رقال النووي الريبي قاعدة، والذي يحدد خصوصية ملزم RNA من كل تكرار (الشكل 1A). رمز للاعتراف قاعدة RNA من تكرار PUF بسيط من المستغرب (الشكل 1A)، والسماح لتوليد المجالات PUF التي تعترف أي مزيج 8-قاعدة ممكن (التي استعرضتها وي وانغ 15).

هذا المبدأ تصميم وحدات يسمح للجيل من المهندسة الربط عامل (ESF) التي تتكون من مجال PUF مرغوب و مجال الربط تعديل (أي مجال SR أو مجال الغليسين الغنية). ويمكن لهذه كلية العلوم التربوية تعمل إما تفعيل الربط أو مثبطات للسيطرة على أنواع مختلفة من الأحداث الربط، وأنها أثبتت مفيدة كأدوات لمعالجة الربط الجينات الذاتية المتعلقة الأمراض التي تصيب البشر 16 و 17. وكمثال على ذلك، ونحن قد شيدت PUF-الغليسين من نوع كلية العلوم التربوية لتغيير وجه التحديد الربط للبي سي إل س الجين، وتحويل إسوفورم طويلة موت الخلايا المبرمج (بكل-زل) إلى إسوفورم قصيرة الموالية المبرمج (بكل-شس). كان تحويل نسبة إيسوفورم بكل-x كافية لتوعية العديد من الخلايا السرطانية للعديد من الأدوية المضادة للسرطان العلاج الكيميائي 16 ، مما يشير إلى أن هذه العوامل الاصطناعية قد تكون مفيدة ككواشف العلاجية المحتملة.

بالإضافة إلى التحكم في الربط مع النطاقات المعروفة المستجيب الربط (على سبيل المثال، رس أو المجال غلي الغنية)، ويمكن أيضا أن تستخدم عوامل بوف المهندسة لفحص أنشطة عوامل الربط الجديدة. على سبيل المثال، باستخدام هذا النهج، أثبتنا أن المجال C- محطة من عدة بروتينات سر يمكن تفعيل أو تمنع الربط عند ربط لمختلف مناطق ما قبل مرنا 18 ، أن عزر ألانين من RBM4 يمكن أن تمنع الربط 19 ، وأن يمكن لعزر البرولين الغنية DAZAP1 تعزيز الربط 20 ، 21 </ سوب>. هذه المجالات وظيفية جديدة يمكن استخدامها لبناء أنواع إضافية من عوامل مصطنعة إلى الربط صقل.

Protocol

1. بناء سقالة بوف مع تخصيص رنا ملزم خصوصية من خلال تداخل ير

  1. تصميم سلسلة من الاشعال ير تحتوي على تسلسل بوف التي تعترف على وجه التحديد النوكليوتيدات رنا مختلفة في كل موقف 12 (انظر الجدول 1 لتسلسل التمهيدي ورؤية الشكل 1 A ل رنا: رمز الاعتراف بوف). لكل تكرار بوف، تصميم أربعة الاشعال مختلفة للاعتراف قاعدة مختلفة على كل موقف.
    ملاحظة: سيتم استخدام هذه الاشعال في سلسلة من أربع جولات من ردود الفعل ير لتوليد شظايا بوف التي انضمت معا ( الشكل 1 B ).
  2. حدد موقع التعرف على الجينات المستهدفة بالقرب من موقع لصق بديل.
    ملاحظة: هذا الموقع يمكن أن يقرر من قبل المستخدم، وعادة ما يتم اختياره في غضون 10 - 50 نت من مواقع لصق بديلة.
  3. الجولة 1: توليد تسلسل الترميزل 4 يكرر بوف، شظايا جسر عالمية، وشظايا غطاء.
    1. استخدم الموقع المستهدف لتحديد رمز التعرف لكل تكرار من بوف المخصص. حدد مجموعة من الاشعال ير ل بوف يكرر 1 - 8. إجراء أربع جولات متتالية من ير لإنتاج مجال بوف حسب الطلب، كما هو موضح أدناه ( الشكل 1 ب ).
    2. في الجولة الأولى من ير، إعداد مخاليط تفاعل ير القياسية (التي تحتوي على 2.5 ميكرولتر من العازلة 10X، 0.5 ميكرولتر من 10 دنتبس ملي، 0.5 ميكرولتر من 10 ميكرومتر إلى الأمام وعكس الاشعال، 50 نانوغرام من قالب الحمض النووي (كدنا البشري أو ناقلات التعبير من مجال وت بوف)، و 0.5 U البلمرة الحمض النووي عالية الدقة في 25 ميكرولتر الحجم النهائي).
      ملاحظة: هذه التفاعلات سوف تنتج تسلسل الحمض النووي المقابلة لكل تكرار بوف، لشظايا جسر عالمية، وشظايا كاب اثنين مع مواقع تقييد مختلفة ( الشكل 1 B ). قائمة مختصرة من القوالب، الاشعال، وتنتج ير المنتجات المستخدمة في هذه الخطوة هي مبينة في الجدول 2 .
    3. تعيين برنامج ير على النحو التالي: 5 دقائق في 95 درجة مئوية. 28 دورة من 30 ثانية عند 95 درجة مئوية، و 30 ثانية عند 55 درجة مئوية، و 15 ثانية عند 72 درجة مئوية؛ و 5 دقائق من الحضانة عند 72 درجة مئوية. استخدام عالية الدقة البلمرة الحمض النووي لتقليل الطفرات نقطة خلال ير.
  4. الجولة 2: توليد متواليات ترميز R1 / R2 / R3 / R4 (R1 - 4) و R5 / R6 / R7 / R8 (R5 - 8).
    1. فصل المنتجات ير التي تم الحصول عليها في الخطوة 1.3.3 باستخدام الكهربائي مع هلام الاغاروز 1.5٪ (25 دقيقة في الجهد المستمر من 120 V). هلام تنقية جميع المنتجات من الحجم المتوقع باستخدام مجموعة تنقية هلام. استخدام خليط مختلف من هذه المنتجات كقالب في الجولات التالية من ير.
      ملاحظة: مزيج من ثلاثة منتجات ير في تقريبا 1: 1: 1 نسبة. وعادة ما لا تحتاج إلى أن تكون كمية، طالما شدة كل منتج تبدو مشابهة في هلام.
    2. مزيج حوالي 5٪ من المنتجات ير المنقى باعتباره تيملوحة في الجولة القادمة من PCR. بدلا من ذلك، تحديد المنتجات PCR النقاء باستخدام مطياف أشعة فوق البنفسجية فيس واستخدام 15 نانوغرام لكل منتج PCR في خليط قالب.
    3. استخدام المنتجات PCR النقاء R1 / R2، R3 / R4، وجسر 2/3 القوالب مختلطة كما وR1-F وR4-R كما الاشعال. إعداد رد فعل PCR كما هو موضح في الخطوة 1.3 للحصول تداخل المنتج PCR R1 - 4.
    4. استخدام المنتجات PCR النقاء R5 / R6، R7 / R8، وجسر 6-7 كقوالب المختلطة وR5-F وR8-R كما الاشعال للحصول تداخل PCR المنتج R5-8 (الشكل 1 B). ضبط البرنامج PCR على النحو التالي: 5 دقائق في درجة حرارة 95 درجة مئوية؛ 28 دورات من 30 ثانية في 95 ° C، 30 ثانية في 55 ° C، و30 ثانية في 72 ° C. و5 دقائق عند 72 درجة مئوية. هلام تنقية R1-4 R5-8 و.
  5. الجولة 3: إنشاء الترميز متواليات لR1 / R2 / R3 / R4 / R5 / R6 / R7 / R8 (R1 - 8 بدون أغطية).
    1. في الجولة الثالثة من PCR، وذلك باستخدام R1-4 تنقيته، R5-8، وجسر 4/5 القوالب مختلطة كما وR1-F وR8-R كما الاشعال، إعداد رد فعل PCR كما هو موضح في الخطوة 1.3 للحصول تداخل PCR المنتج R1-8 دون مباراة دولية.
    2. ضبط البرنامج PCR على النحو التالي: 5 دقائق في درجة حرارة 95 درجة مئوية؛ 28 دورات من 30 ثانية في 95 ° C، 30 ثانية في 55 درجة مئوية، و 55 ق في 72 ° C. و5 دقائق عند 72 درجة مئوية. هلام تنقية R1-8 دون مباراة دولية.
  6. الجولة 4: إنشاء الترميز متواليات لنطاقات PUF كاملة.
    1. في الجولة الأخيرة من PCR، وذلك باستخدام R1-8 تنقيته من دون القبعات و5'نهاية و3'نهاية مباراة دولية كقوالب مختلطة وكاب-F وكاب-R كما الاشعال، إعداد رد فعل PCR كما هو موضح في الخطوة 1.3 للحصول على المجالات PUF تحور النهائية.
    2. ضبط البرنامج PCR على النحو التالي: 5 دقائق في درجة حرارة 95 درجة مئوية؛ 28 دورات من 30 ثانية في 95 ° C، 30 ثانية في 55 ° C، و 1 دقيقة في 72 ° C. و5 دقائق عند 72 درجة مئوية.
    3. هلام تنقية المنتجات PCR من المجالات PUF برمجتها النهائية. استخدام هذه المنتجات لبناء البلازميد التعبير كلية العلوم التربوية في الخطوات اللاحقة. Sequسينعقد التركيبة النهائية للتحقق من تسلسل برمجتها من المجالات PUF.
      ملاحظة: كاب-F يشفر NLS (PPKKKRKV) بين BamH أنا والمواقع Xba I وكاب-R يشفر كودون وقف وموقع سال I (صممت تقييد مواقع لبناء ناقلات التعبير من كلية العلوم التربوية، الشكل 1 C).

2. بناء وحدة وظيفية من كلية العلوم التربوية

  1. يتم استخدام استراتيجيتين عادة لاستنساخ وحدات وظيفية من كلية العلوم التربوية (المجالات RS أو المجالات الغليسين الغنية): لتضخيم هذه المجالات عن طريق PCR باستخدام الكلي [كدنا البشري كنموذج (الخطوة 2.2) أو لتجميع مباشرة شظايا الحمض النووي الذي رمز لمختلف RS أو المجالات الغليسين الغنية (الخطوة 2.3).
  2. استخدام PCR لاستنساخ RS المجالات من بقايا 123-238 من 9G8 (NP001026854)، وبقايا 180-272 من SRP40 (NP008856)، أو بقايا 117-221 من SC35 (NP003007). استنساخ المجالات الغليسين الغنية من بقايا 195-320 من hnRNP A1 (NP_002127)، بقاياالصورة 203-353 من hnRNP A2 (NP112533)، أو بقايا 211-378 من hnRNP A3 (NP919223).
    1. استخدام NCBI التمهيدي أداة تصميم (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/) أو Primer3 (http://frodo.wi.mit.edu/primer3/) لتصميم الاشعال ل استنساخ RS المجالات أو المجالات الغليسين الغنية (وحدة وظيفية من كلية العلوم التربوية).
      ملاحظة: التمهيدي إلى الأمام يحتوي على FLAG العلامة-N المحطة الطرفية بعد الموقع NHE I. يحتوي التمهيدي العكسي موقع BamH I للاستنساخ في ناقلات التعبير (الشكل 1 C).
    2. إعداد رد فعل PCR القياسية، كما هو موضح في الخطوة 1.3، لتضخيم RS أو المجالات الغليسين الغنية. ضبط البرنامج PCR على النحو التالي: 5 دقائق في درجة حرارة 95 درجة مئوية؛ 28 دورات من 30 ثانية في 95 ° C، 30 ثانية في 55 ° C، و30 ثانية في 72 ° C. و5 دقائق عند 72 درجة مئوية.
  3. المجالات أو المجالات الغليسين الغنية من خلال تخليق DNA المباشر RS استنساخ. بدلا من توليد منتجات PCR التي تكود للمجالات المستجيب في الخطوة 2.2، سينتحجم والنوكليوتيد الذي يشفر مجال القصير جزء RS (RSRSRSRSRSRS) أو مجال الغليسين الغنية (GYGGGGPGYGNQGGGYGGG) باستخدام مصدر تجاري من أليغنوكليوتيد DNA.

3. البناء من البلازميدات ESF التعبير

  1. بناء البلازميدات التعبير كلية العلوم التربوية باستخدام أي ناقلات التعبير.
    ملاحظة: تعبير بناء PGL-الغليسين-MS2 (هدية من الدكتور R. Breathnach من 11 معهد دي البيولوجيا-CHR) كان يستخدم في الأصل، الذي يشفر من N- إلى C-المحطة، حاتمة FLAG، والغليسين نطاق الغنية من hnRNP A1، والبروتين معطف MS2. لذلك، يتم استخدام هذا التعبير بناء كمثال في الخطوة التالية.
    ملاحظة: يمكن أيضا ناقلات التعبير الأخرى مع مواقع الاستنساخ متعددة يمكن استخدامها، وسيتم تطبيق خطوات الاستنساخ القياسية للانضمام إلى شظايا معا.
  2. هضم 1.5 ميكروغرام من البلازميدات التعبير (PGL-الغليسين-MS2) المذكورة في الخطوة 3.1 لإزالة MS2 البروتين معطف شظية. استخدام restricنشوئها نوكلياز داخلي BamH الأول وسال I لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية. هضم حدة الاعتراف كلية العلوم التربوية (ترميز لNLS وبرمجتها المجالات PUF، ولدت في الخطوة 1.5) مع BamH الأول وسال أنا في حالة نفسه.
  3. إضافة 5X صبغ تحميل لتقييد هضم ردود الفعل وelectrophorese ببطء الحجم الكلي مع هلام الاغاروز 1.5٪ تحتوي على هلام وصمة عار DNA لمدة 40 دقيقة في 120 V. جل تنقية المنتجات هضمها.
  4. إعداد 10 ميكرولتر ردود الفعل ربط مع وحدة الاعتراف النقاء من إدراج كلية العلوم التربوية وDNA ناقلات التعبير في نسبة 3: 1، 1 ميكرولتر من يغاز DNA، و 1 ميكرولتر من العازلة 10X ربط. احتضان ردود الفعل ربط بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية. التركيبة الناتجة يعبر عن الغليسين، PUF من نوع ESF (PGL-الغليسين، PUF) تحت سيطرة المروج CMV (الشكل 1 C).
  5. إزالة جزء ترميز FLAG / نطاق الغليسين الغنية مع NHE الأول وBamH I الهضم لمدة 1 ساعة في 37 درجة مئوية. استبدالها مع جزء الذي يشفر مجال رس (ولدت في الخطوة 2.2، هضمها أيضا من قبل نهي I و بامه I). ويعبر عن بناء الناتجة رس-بوف ​​من نوع إسف ( الشكل 1 C ).

4. بناء مراسل الربط

  1. تجميع أوليغونوكلأوتيدس تحتوي على تسلسل المرشح ( أي تسلسل الهدف من المجالات بوف) يحيط بها مواقع شو I و أبا I أو مواقع شو I و إكور I. أنيل أوليغونوكلأوتيدس لمدة 5 دقائق في 55 درجة مئوية للحصول على إدراج مزدوج تقطعت بهم السبل التي تحتوي على مواقع الاعتراف من المجالات بوف يحيط بها نهايات متماسكة من شهو I و أبا I أو شو I و إكور I المواقع.
  2. بدء من وصفها مسبقا مراسل الربط وحدات 22 ، pGZ3، الذي يحتوي على اثنين من إكسونات غفب مفصولة اختبار إكسون (اكسون 12 من IGF2BP1 الإنسان، إنزمبل إد ENSG00000159217) و إنترونس المرافقة لها.
    ملاحظة: تم تصميم إكسون اختبار مع شو I و أبا I المواقع، والتي يمكن استخدامها لإدراج أوليغونوكليوتيدس توليفها تحتوي على تسلسل المرشح (تسلسل الهدف من المجالات بوف). يتم توفير هذا المراسل الربط وحدات (pGZ3) من خلال مستودع إضافة البلازميد.
  3. هضم pGZ3 مراسل قاعدة (أعدت في الخطوة 4.2) مع شو الأول وأبا I إندونوكليسيس تقييد لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية.
  4. جل تنقية المنتجات هضمها كما هو موضح في الخطوة 3.3.
  5. إعداد 10 ميكرولتر من ردود الفعل ربط مع إدراجات مزدوجة تقطعت بهم السبل ولدت في الخطوة 4.1 وناقلات pGZ3 هضمها ولدت في الخطوة 4.4 في نسبة مولر 3: 1، 1 ميكرولتر من ليغاز الحمض النووي، و 1 ميكرولتر من العازلة ربط 10X. احتضان ردود الفعل ربط بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية للحصول على بناء الربط مراسل ناقلات pGZ3.
  6. إدراج إدراج مزدوج تقطعت بهم السبل ولدت في الخطوة 4.1 في السابقبيز-1B (باستخدام شو I و إكور I المواقع) و بيز-2F (باستخدام شهو I و أبا I مواقع) 23 ، للحصول على 5 'مراسل سس المتنافسة و 3' مراسل سس المنافسة، كما هو موضح في الخطوات 4.3-4.5.
    ملاحظة: كلا النوعين من صحفيين الربط سيكون متاحا من خلال إضافة الجينات.

5. بناء ناقلات التعبير لنتيفيرال ل إسف

  1. إعداد رد فعل ير القياسية كما هو موضح في الخطوة 1.3 لتضخيم إسفس كامل طول من ناقلات التعبير الأصلي (بغل-غلي-بوف أو بغل-رس-بوف) مع الاشعال التي تحتوي على مواقع I / سبو ملو . تعيين برنامج ير على النحو التالي: 5 دقائق في 95 درجة مئوية. 28 دورة من 30 ثانية في 95 درجة مئوية، 30 ثانية عند 55 درجة مئوية، و 1.5 دقيقة عند 72 درجة مئوية. و 5 دقائق عند 72 درجة مئوية.
  2. من خلال رد فعل الهضم، وتنقية هلام، وربط رد فعل، ودمج إسفس في ناقلات التعبير لنتيفيرال، بوبسد، بين مولو مواقع I / سبي I، كما هو موضح في الخطوات 3.2-3.4.
  3. استخدام طريقة الهطول الفوسفات الكالسيوم القياسية، كما ذكرت سابقا 24 ، لتوليد لنتيفيروسيس بواسطة كوترانزفكتينغ خلايا HEK293T عن طريق تعبئة ناقلات، psPAX2 و pMD2.G، مع إما بوكسلد-غلي-بوف (بكل-X)، بوبلكسد-غلي-بوف بالوزن) (كسيطرة خصوصية)، أو بوبلكسد-غفب (وهمية).
    1. البذور 5x10 6 خلايا HEK293T في 10 سم الأطباق وتنمو الخلايا بين عشية وضحاها في 10 مل من دولبيكو في النسر المعدل دولمكو تكمل مع 10٪ مصل بقري الجنين (فبس) لكل طبق في حاضنة ترطيب عند 37 درجة مئوية و 5٪ كو 2 . أداء ترنسفكأيشن عندما تكون الخلايا 70-90٪ متموجة.
    2. إعداد خليط البلازميد عن طريق إضافة البلازميدات الثلاثة (7.5 ميكروغرام من ناقلات التعبئة والتغليف، PSPAX2؛ 2.5 ميكروغرام من pMD2.G؛ و 10 ميكروغرام من بوكسلد-غلي-بوف (بكل-x)، بوبلكسد-غلي-بوف (بالوزن) ، أو بوبلكسد-غفب) إلى أنبوب 2 مل.
    3. إضافة 560 ميكرولتر من 0.25 M كاكل2 و 560 ميكرولتر من 2X بس الحل إلى أنبوب 2 مل. مزيج بلطف عدة مرات واحتضان لمدة 15 دقيقة في رت لإعداد خليط ترنسفكأيشن.
    4. إضافة جميع مخاليط ترنسفكأيشن إلى الأطباق 10 سم. دوامة الأطباق بلطف واحتضان لهم بين عشية وضحاها في 3٪ كو 2 و 37 درجة مئوية.
    5. إزالة المتوسطة، إضافة 10 مل من دمم جديدة مع 2٪ فبس إلى كل طبق، واحتضان لهم في 10٪ كو 2 و 37 ° كو / N.
    6. جمع طاف الأول من الأطباق. إضافة 10 مل من دمم الطازجة مع 2٪ فبس إلى كل طبق. احتضان الأطباق O / N عند 10٪ كو 2 و 37 درجة مئوية. تخزين طاف في 4 درجات مئوية.
    7. جمع طاف الثاني من الأطباق. بركة طاف من الحصاد الأول والثاني. مسح طاف من الحطام الخلية عن طريق تصفية من خلال مرشح 0.4 ميكرون. استخدام طاف مسح مباشرة أو تخزينه في -80 درجة مئوية.
  4. تحديد عيار الفيروس العدسي عن طريق إصابة HEK2خلايا 93T مع التخفيفات المسلسل لإعداد الفيروس، كما ذكرت سابقا 25 .

6. على وجه التحديد تحوير إدراج اكسون والاستخدام البديل لمواقع لصق مع إسفس

  1. البذور 2 X10 5 خلايا HEK293T في كل بئر من لوحة 24 جيدا. تنمو الخلايا بين عشية وضحاها في 500 ميكرولتر من دمم تستكمل مع 10٪ فبس في حاضنة ترطيب عند 37 درجة مئوية و 5٪ كو 2 .
  2. مزيج كاشف ترنسفكأيشن الليبوسومات عن طريق قلب بلطف الزجاجات قبل الاستخدام. تمييع 2 ميكرولتر من كاشف ترنسفكأيشن الليبوسومات في 50 ميكرولتر من انخفاض مصل الدم. مزيج بلطف واحتضان لهم لمدة 5 دقائق في رت.
  3. تمييع 0.04 ميكروغرام من ناقلات التعبير بغل-غلي-بوف و 0.2 ميكروغرام من البلازميدات pGZ3 مراسل في 50 ميكرولتر من انخفاض مصل الدم في أنبوب معقمة. تمييع 0.4 ميكروغرام من ناقلات التعبير بغل-رس-بوف ​​و 0.2 ميكروغرام من البلازميدات مراسل PGZ3 في 50 ميكرولتر من انخفاض مصل الدم في أنبوب معقمة. دإيليوت 0.4 ميكروغرام من ناقلات التعبير بل-رس-بوف ​​و 0.2 ميكروغرام من بيز-1B أو بيز-2F مراسل البلازميدات في 50 ميكرولتر من انخفاض مصل الدم في أنبوب معقمة.
  4. بعد 5 دقائق من الحضانة في رت، خلط بلطف كاشف ترنسفكأيشن الليبوسوماتي المخفف أعدت في الخطوة 6.2 مع البلازميدات المخففة أعدت في الخطوة 6.3. احتضان الخليط لمدة 20 دقيقة في رت.
  5. إضافة خليط ترنسفكأيشن كامل يحتوي على ناقلات التعبير وكاشف ترنسفكأيشن أعدت في الخطوة 6.4 إلى كل بئر واحتضان لمدة 12 ساعة على الأقل في حاضنة ترطيب عند 37 درجة مئوية و 5٪ كو 2 .
  6. بعد 12 ساعة في حاضنة ترطيب عند 37 درجة مئوية و 5٪ كو 2 ، تجاهل المتوسطة من كل بئر وغسلها مع 500 ميكرولتر من محلول ملحي الفوسفات مخزنة (بس) / جيدا.
  7. تجاهل برنامج تلفزيوني وإضافة 200 ميكرولتر من التربسين إلى كل بئر. احتضان لوحة في حاضنة ترطيب عند 37 درجة مئوية و 5٪ كو 2 لمدة 5 دقائق. إضافة 1 مل من وسيلة لوقف ديGESTION ونقل الخلايا إلى العقيمة 1.5 مل أنبوب.
  8. أنابيب الطرد المركزي لمدة 3 دقائق في 5000 x ج وتجاهل المتوسطة. إضافة 0.5 مل من الحمض النووي الريبي استخراج العازلة في أنبوب لليز الخلايا قبل pipetting المتكررة. احتضان عينات متجانسة لمدة 5 دقائق.
  9. لكل استخراج الحمض النووي الريبي عينة المعالجة العازلة، إضافة 0.1 مل من الكلوروفورم في 0.5 مل من العازلة استخراج الحمض النووي الريبي. عكس الأنابيب لمدة 15 ق واحتضان لهم لمدة 3 دقائق على RT.
  10. أنابيب الطرد المركزي لمدة 15 دقيقة في 12000 x ج و 4 ° C. نقل المرحلة المائية لأنبوب جديد. إضافة 0.25 مل من الأيزوبروبانول في 0.5 مل من العازلة استخراج الحمض النووي الريبي المستخدمة في التجانس الأولي.
  11. مزيج من قبل vortexing واحتضان لهم في RT لمدة 10 دقيقة. أنابيب الطرد المركزي في 12000 x ج لمدة 10 دقيقة على 4 درجات مئوية. بعد الطرد المركزي، ويعجل RNA عادة ما يكون وضوحا في الجزء السفلي من الأنبوب.
  12. تجاهل طاف ويغسل بيليه RNA مع 0.5 مل من الايثانول 75٪ في 0.5 مل من العازلة استخراج الحمض النووي الريبي.
  13. دوامة بقوة وأجهزة الطرد المركزي أنه في 7500 x ج لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية. إزالة طاف وتجفيف بيليه RNA. حل RNA في 50 ميكرولتر من ريبونوكلياز خالية من المياه.
  14. إضافة 2 ميكرولتر من 5U / ميكرولتر الدناز I، 7 ميكرولتر من 10X العازلة، و 11 ميكرولتر من H 2 O إلى كل حل 50 ميكرولتر RNA. احتضان الأنابيب عند 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة. تسخينها عند 70 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة لإبطال نشاط الدناز.
  15. لكل عينة، إضافة العناصر التالية إلى nuclease خالية من أنبوب 0.2 مل: 1 ميكرولتر من 50 ميكرومتر بنسبة ضئيلة DT، 5 ميكرولتر من 400 نانوغرام / ميكرولتر RNA (2 ميكروغرام)، 1 ميكرولتر من 10 ملي dNTP، و 3 ميكرولتر من H 2 O. نفذ PCR عكسي.
    1. حرارة الخليط إلى 65 درجة مئوية لمدة 5 دقائق واحتضان على الجليد لمدة 2 دقيقة على الأقل لمنع إعادة تشكيل هيكل الثانوي. إضافة المكونات التالية لنفس أنبوب: 4 ميكرولتر من 5X العازلة حبلا الأول، 1 ميكرولتر من 0.1 M DTT، 1 ميكرولتر من 200 U / ميكرولتر عكس الناسخ، و 4 ميكرولتر من H 2 </ سوب> O. مزيج بواسطة بيبتينغ بلطف صعودا وهبوطا واحتضان عند 50 درجة مئوية لمدة 60 دقيقة. وقف رد فعل عن طريق تسخينه في 70 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة.
  16. لكل عينة، إضافة المكونات التالية إلى أنبوب ير من أجل استكمال ير المسمى الجسم: 2.5 ميكرولتر من العازلة ير 10X، 0.5 ميكرولتر من 10 ملي مزيج دنتب، 1 ميكرولتر من 10 ميكرومتر التمهيدي إلى الأمام، 1 ميكرولتر من 10 ميكرومتر عكس التمهيدي، 0.25 ميكرولتر من 5 U / ميكرولتر تاق دنا البلمرة، 0.5 ميكرولتر من 25 نانومتر Cy5-دكتب، و 2 ميكرولتر من [كدنا] أعدت في الخطوة 6.15.
    1. تسخين التفاعل إلى 94 درجة مئوية لمدة 2 دقيقة لتفكك الجزيئات، وأداء 25 دورات من ير (94 درجة مئوية لمدة 30 ثانية، 60 درجة مئوية 30 ثانية، و 72 درجة مئوية 30 ثانية)، والحفاظ على رد فعل عند 72 درجة مئوية ل 7 دقائق، ثم ترك الأمر في عقد 4 درجات مئوية.
  17. حل المنتجات ير عن طريق الكهربائي من خلال هلام بولي أكريلاميد 10٪ مع قاعدة تريس 1X، حمض بوريك، و إدتا (تب) العازلة. إجراء المسح الضوئي باستخدام الماسح الضوئي مضان. قياسقيمة كل شكل الإسوي الربط باستخدام البرمجيات كثافة.

7. استخدام ESF لتعديل الذاتية بي سي إل س الربط وقياس أثرها على موت الخلايا المبرمج

  1. لوحة 2 × 10 5 خلايا هيلا إلى كل بئر من 24 لوحة جيدا. تنمو الخلايا بين عشية وضحاها في 500 ميكرولتر من DMEM تستكمل مع 10٪ FBS في حاضنة عند 37 درجة مئوية و CO 2 5٪.
  2. بعد 12 ساعة، transfect الخلايا مع 2 ميكروغرام من PGL-الغليسين، PUF (WT) أو 0.2 ميكروغرام، 1 ميكروغرام، و 2 ميكروغرام من PGL-الغليسين، PUF (531) (مجال PUF برمجتها يعترف بي سي إل س ما قبل مرنا مع قابلية عالية، انظر الشكل 2 A).
  3. بعد 24 ساعة، وحصاد الخلايا. 1/3 من الخلايا هي لعزل الحمض النووي الريبي وتحليل PCR (الخطوات 6،8 حتي 6،17) و03/02 هي لعزل بروتين.
  4. لتحليل لطخة غربية، وتغلي مجموع الكريات خلية في 2X الصوديوم دوديسيل كبريتات-إس دي إس بايج (SDS-PAGE) العازلة تحميل لمدة 10 دقيقة، ومن ثم حل البروتينات في هلام سدز-بادج 12٪. نقل البروتينات على غشاء النيتروسليلوز.
  5. منع الغشاء مع الحليب 5٪ لمدة 1 ساعة في رت واحتضان غشاء O / N مع كاسباس -3 (1: 1،000)، بارب (1: 1،000)، أو بيتا أكتين (1: 5،000) الأجسام المضادة الأولية (المخفف في 5٪ حليب) عند 4 درجات مئوية.
  6. غسل الغشاء مع برنامج تلفزيوني يحتوي على 0.1٪ توين 20 (بس-T) لمدة 5 دقائق في رت 3X على شاكر هزاز. احتضان الغشاء مع الأجسام المضادة المرتبطة هرب (1: 5،000، المخفف في الحليب 5٪) لمدة 1 ساعة في رت.
  7. غسل الغشاء مع بس-T 3X في رت، ومن ثم تطوير الغشاء باستخدام إكل الغربية الكواشف الكشف النشاف.
  8. إضافة 250 ميكرولتر من بولي L- يسين (بل) على كوفرسليبس، واحتضان لهم لمدة 15 دقيقة في رت، وسيفون قبالة السائل. غسل الزجاج المغلفة بل كوفرسليبس مع برنامج تلفزيوني 3X لمدة 5 دقائق لكل منهما. لقياس المناعي قياس موت الخلايا المبرمج، البذور 5 × 10 5 خلايا هيلا على كوفرسليبس بولي يسين المغلفة الزجاج في لوحة 6 جيدا. ترانسفيكت pغل-غلي-بوف (وت) أو بل-غلي-بوف (531) البلازميدات في الخلايا هيلا باستخدام كاشف ترنسفكأيشن الليبوسومات (انظر الخطوات 6،1-6،5).
  9. 24 ساعة بعد ترنسفكأيشن، إصلاح الخلايا على كوفرسليبس مع 1 مل من بارافورمالدهيد 4٪ (بفا) في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 20 دقيقة في رت. تنبيه: بفا هو سامة. التعامل معها بعناية في غطاء الدخان.
  10. غسل بلطف الخلايا على كوفرسليبس عن طريق إضافة 2 مل من برنامج تلفزيوني 1X. احتضان لهم لمدة 5 دقائق. إزالة بس مع ماصات. كرر غسل 3X.
  11. بيرمابيليز الخلايا مع 0.2٪ تريتون X-100 في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 10 دقيقة، ومن ثم غسلها 3X مع برنامج تلفزيوني 1X.
  12. منع الخلايا مع 3٪ البقري المصل ألبومين (بسا) في برنامج تلفزيوني 1X لمدة 10 دقيقة وغسلها 3X مع برنامج تلفزيوني 1X.
  13. تمييع الأجسام المضادة فلاج 1: 1000 في 3٪ بسا / برنامج تلفزيوني وماصة 30 ميكرولتر من الجسم المضاد فلاج المخفف على ورقة بارافيلم.
  14. إخراج ساترة مع الخلايا، وتجفيف بعناية العازلة الزائدة مع مناديل مختبر، ووضعه رأسا على عقب (جانب الخلية إلى أسفل) على 30 ميكرولتر المضادة فلاج قالحل. احتضان لمدة 1 ساعة في رت.
  15. إضافة حوالي 500 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني 1X إلى جانب ساترة حضنت مع الأجسام المضادة الأولية حتى يطفو ساترة على رأس الحل. إعادته إلى لوحة 6-جيدا مع برنامج تلفزيوني 1X في الآبار.
  16. غسله 3X مع برنامج تلفزيوني 1X لمدة 5 دقائق لكل منهما.
  17. تمييع الأجسام المضادة الثانوية لمكافحة الماوس (1: 500) في 3٪ بسا / برنامج تلفزيوني. مرة أخرى، واستخدام 30 ميكرولتر لكل ساترة. وضع ساترة رأسا على عقب على حل الأجسام المضادة الثانوية واحتضان لمدة 15 دقيقة في رت.
  18. إزالة ساترة من بارافيلم، كما هو موضح في الخطوة 7.15. وضعه مرة أخرى في لوحة 6-جيدا وغسله مع 1X بس 3X لمدة 5 دقائق لكل منهما.
  19. جبل كوفرسليبس مع تصاعد المتوسطة (مع دابي)، إزالة المتوسطة الزائدة، وختم حافة مع طلاء الأظافر.
  20. تصور الخلايا باستخدام المجهر مضان (في التكبير 100X) وتصويرها باستخدام كاميرا رقمية.
    ملاحظة: يتم التعبير عن التعبير إسف من قبل مضان-لابيلوتصور الأجسام المضادة الثانوية د ضد العلامة FLAG، وتفتيت النووي باستخدام تلوين دابي.

8. قياس موت الخلايا المبرمج للخلايا سرطان مختلفة التعبير عن كلية العلوم التربوية

  1. تقسيم 2 × 10 6 خلايا هيلا، MDA-MB-231 الخلايا، والخلايا A549 في أطباق من عيار 60 ملم مع 4 مل من DMEM تستكمل مع 10٪ FBS في حاضنة عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO 2 للكشف عن موت الخلايا المبرمج مع Propidium يوديد (PI) تلطيخ.
  2. بعد 24 ساعة، وتحديث المتوسطة وإعداد الفيروسة البطيئة، كما ذكرت سابقا 24.
  3. تمييع pWPXld-الغليسين، PUF (WT)، pWPXld-الغليسين، PUF (531)، أو pWPXld-GFP أسهم 10 × 10 6 الفيروسة البطيئة إلى 4 مل من متوسطة جديدة لجعل نسبة الفيروس في عدد الخلايا يساوي 5.
  4. تغيير المتوسطة في لوحات ل4 مل من متوسطة تحتوي على فيروس أعدت في الخطوة 8.3 واحتضان لوحات في حاضنة عند 37 درجة مئوية و CO 2 5٪. 12 ساعة بعد الإصابة، وتغيير المتوسطة.
  5. بعد 24 ساعة من العدوى، وجمع وصمة عار على الخلايا لمدة 5 دقائق في محلول PBS التي تحتوي على تركيز النهائي من 2 ميكروغرام / مل PI.
  6. تحليل الخلايا ملطخة PI مع تدفق عداد الكريات، كما هو موضح سابقا (16).

النتائج

یصف ھذا التقریر البروتوکول الکامل لتصمیم وبناء الأطر البیئیة والاجتماعیة (إسف) ومراسلي الربط. ويحدد أيضا المزيد من تطبيق إسفس في التلاعب أس من الجينات الذاتية 16 . لتوضيح النتائج النموذجية للتغيرات الربط بوساطة إسف، نستخدم البيانات من ?...

Discussion

يقدم هذا التقرير وصفا تفصيليا لتصميم وبناء عوامل الربط المصطنعة التي يمكن التلاعب على وجه التحديد الربط البديلة من الجينات المستهدفة. يأخذ هذا الأسلوب الاستفادة من RNA طريقة فريدة ملزم من PUF يكرر لإنتاج سقالة ملزم RNA مع خصوصية مخصصة. ويمكن استخدامه إما تنشيط أو قمع الر...

Disclosures

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة منحة R01-CA158283 وNSFC منح 31400726 لZWYW يموله برنامج المواهب الشابة ألف ومؤسسة العلوم الطبيعية الوطنية الصينية (منح 31471235 و81422038). ويتم تمويل XY من قبل مؤسسة العلوم ما بعد الدكتوراه من الصين (2015M571612).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
High-fidelity DNA polymerase (Phusion High-Fidelity) with PCR bufferNew England BiolabsM0530L
DNA ligase (T4 DNA ligase)New England BiolabsM0202L
Liposomal transfection reagent (Lipofectamine 2000)Invitrogen11668-019
Reduced serum medium (Opti-MEM)Gibco31985-062
RNA extraction buffer (TRIzol Reagent)ambion15596018TRIzol reagent includes phenol, which can cause burns. Wear gloves when handling
PBS (1x)Life Technologies10010-031
SuperScript III Reverse Transcriptase (RT)Invitrogen18080044
Caspase-3 antibodyCell Signaling Technology9668
PARP antibodyCell Signaling Technology9542
Bcl-x antibodyBD Bioscience610211
beta-actin antibodySigma-AldrichA5441
alpha-tubulin antibodySigma-AldrichT5168
FLAG antibodySigma-AldrichF4042
Nitrocellulose membraneAmersham-PharmaciaRPN203D
ECL Western Blotting detection reagentsInvitrogenWP20005
Cy5-dCTPGE HealthcarePA55021
Fluorescence-activated Cell Sorter (FACS)BD BioscienceFACSCalibur 
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM)GE HealthcareSH30243.01
Fetal Bovine Serum (FBS)Invitrogen26140079
Propidium iodide (PI)SigmaP4170
Bovine Serum Albumin (BSA)SigmaA7638-5G
Triton-X100PromegaH5142
Poly-L-Lysine SigmaP-4832Filter-sterilize and store at 4 °C
Vector pWPXLdAddgene12258
Vector pMD2.GAddgene12259
Vector psPAX2Addgene12260
DNase I (RNase-free)New England BiolabsM0303S
Oligo(dT)18 PrimerThermo ScientificSO131 
Anti-mouse secondary antibody (Anti-mouse IgG, HRP-linked Antibody)Cell Signaling Technology7076S

References

  1. Wang, E. T., et al. Alternative isoform regulation in human tissue transcriptomes. Nature. 456 (7221), 470-476 (2008).
  2. Pan, Q., Shai, O., Lee, L. J., Frey, B. J., Blencowe, B. J. Deep surveying of alternative splicing complexity in the human transcriptome by high-throughput sequencing. Nat Genet. 40 (12), 1413-1415 (2008).
  3. Wang, Z., Burge, C. B. Splicing regulation: from a parts list of regulatory elements to an integrated splicing code. Rna. 14 (5), 802-813 (2008).
  4. Matera, A. G., Wang, Z. A day in the life of the spliceosome. Nat Rev Mol Cell Biol. 15 (2), 108-121 (2014).
  5. Singh, R. K., Cooper, T. A. Pre-mRNA splicing in disease and therapeutics. Trends Mol Med. 18 (8), 472-482 (2012).
  6. Wang, G. -. S., Cooper, T. A. Splicing in disease: disruption of the splicing code and the decoding machinery. Nat Rev Genet. 8 (10), 749-761 (2007).
  7. Li, Y. I., et al. RNA splicing is a primary link between genetic variation and disease. Science. 352 (6285), 600-604 (2016).
  8. Scotti, M. M., Swanson, M. S. RNA mis-splicing in disease. Nat Rev Genet. 17 (1), 19-32 (2016).
  9. Black, D. L. Mechanisms of alternative pre-messenger RNA splicing. Annu Rev Biochem. 72 (1), 291-336 (2003).
  10. Graveley, B. R., Maniatis, T. Arginine/serine-rich domains of SR proteins can function as activators of pre-mRNA splicing. Mol cell. 1 (5), 765-771 (1998).
  11. Del Gatto-Konczak, F., Olive, M., Gesnel, M. -. C., Breathnach, R. hnRNP A1 recruited to an exon in vivo can function as an exon splicing silencer. Mol Cell Biol. 19 (1), 251-260 (1999).
  12. Auweter, S. D., Oberstrass, F. C., Allain, F. H. Sequence-specific binding of single-stranded RNA: is there a code for recognition. Nucleic Acids Res. 34 (17), 4943-4959 (2006).
  13. Dong, S., et al. Specific and modular binding code for cytosine recognition in Pumilio/FBF (PUF) RNA-binding domains. J Biol Chem. 286 (30), 26732-26742 (2011).
  14. Filipovska, A., Razif, M. F., Nygård, K. K., Rackham, O. A universal code for RNA recognition by PUF proteins. Nat Chem Biol. 7 (7), 425-427 (2011).
  15. Wei, H., Wang, Z. Engineering RNA-binding proteins with diverse activities. Wiley Interdiscip Rev RNA. 6 (6), 597-613 (2015).
  16. Wang, Y., Cheong, C. -. G., Hall, T. M. T., Wang, Z. Engineering splicing factors with designed specificities. Nat Methods. 6 (11), 825-830 (2009).
  17. Choudhury, R., Tsai, Y. S., Dominguez, D., Wang, Y., Wang, Z. Engineering RNA endonucleases with customized sequence specificities. Nat Commun. 3, 1147 (2012).
  18. Wang, Y., et al. A complex network of factors with overlapping affinities represses splicing through intronic elements. Nat Struct Mol Biol. 20 (1), 36-45 (2013).
  19. McCabe, B. C., Gollnick, P. Cellular levels of trp RNA-binding attenuation protein in Bacillus subtilis. J Bacteriol. 186 (15), 5157-5159 (2004).
  20. Wang, Y., Ma, M., Xiao, X., Wang, Z. Intronic splicing enhancers, cognate splicing factors and context-dependent regulation rules. Nat Struct Mol Biol. 19 (10), 1044-1052 (2012).
  21. Choudhury, R., et al. The splicing activator DAZAP1 integrates splicing control into MEK/Erk-regulated cell proliferation and migration. Nat Commun. 5, (2014).
  22. Xiao, X., Wang, Z., Jang, M., Burge, C. B. Coevolutionary networks of splicing cis-regulatory elements. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (47), 18583-18588 (2007).
  23. Wang, Z., Xiao, X., Van Nostrand, E., Burge, C. B. General and specific functions of exonic splicing silencers in splicing control. Mol Cell. 23 (1), 61-70 (2006).
  24. Li, M., Husic, N., Lin, Y., Snider, B. J. Production of lentiviral vectors for transducing cells from the central nervous system. J Vis Exp. (63), e4031 (2012).
  25. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat Protoc. 1 (1), 241-245 (2006).
  26. Venables, J. P. Aberrant and alternative splicing in cancer. Cancer Res. 64 (21), 7647-7654 (2004).
  27. Cooke, A., Prigge, A., Opperman, L., Wickens, M. Targeted translational regulation using the PUF protein family scaffold. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (38), 15870-15875 (2011).
  28. He, C., Zhou, F., Zuo, Z., Cheng, H., Zhou, R. A global view of cancer-specific transcript variants by subtractive transcriptome-wide analysis. PloS one. 4 (3), 4732 (2009).
  29. Venables, J. P., et al. Identification of alternative splicing markers for breast cancer. Cancer Res. 68 (22), 9525-9531 (2008).
  30. Shapiro, I., et al. An EMT-Driven Alternative Splicing Program Occurs in Human Breast Cancer. PLoS Genet. 7 (8), 1002218 (2011).
  31. David, C. J., Manley, J. L. Alternative pre-mRNA splicing regulation in cancer: pathways and programs unhinged. Genes Dev. 24 (21), 2343-2364 (2010).
  32. Ladomery, M. Aberrant alternative splicing is another hallmark of cancer. Int J Cell biol. 2013, (2013).
  33. Karni, R., et al. The gene encoding the splicing factor SF2/ASF is a proto-oncogene. Nat Struct Mol Biol. 14 (3), 185-193 (2007).
  34. Anczukòw, O., et al. SRSF1-regulated alternative splicing in breast cancer. Mol cell. 60 (1), 105-117 (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

122

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved