JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هنا، وتبين لنا نهجا الأنزيمية لعزل خلايا الكبد الأولية من الفئران الكبار، ونحن تصف الكمي لاستجابة التهابية باستخدام ELISA وفي الوقت الحقيقي PCR.

Abstract

الكبد يلعب دورا حاسما في تنظيم الالتهابات. في أمراض الكلى المزمنة على وجه الخصوص، حيث يتفاعل الكبد ردا على الوسط اليوريمي، الاكسدة، endotoxemia وإزالة انخفضت تعميم السيتوكينات proinflammatory من خلال إنتاج عدد كبير من المواد المتفاعلة في المرحلة الحادة. أدوات تجريبية لدراسة التهاب والدور الأساسي لخلايا الكبد هي أساسية لفهم التنظيم ومساهمة السيتوكينات الكبد إلى مرحلة الاستجابة الحادة النظامية وسيناريو لفترات طويلة الموالية للالتهابات، وخصوصا في بيئة معقدة مثل مرض الكلى المزمن. منذ دراسة آليات معقدة من التهاب في الجسم الحي لا تزال صعبة، والموارد كثيفة، وعادة ما يتطلب استخدام الحيوانات المعدلة وراثيا، وتقدم خلايا الكبد معزولة الأولية أداة قوية لاكتساب رؤى الآلية في الاستجابة المرحلة الحادة الكبدية. لأن هذا في المختبر تقنية ملامح التكاليف المعتدلة، وإعادة عاليةالطاقة الانتاجية والمعرفة التقنية المشتركة، يمكن للخلايا الكبد معزولة الأولية أن تستخدم أيضا بسهولة كنهج الفرز. هنا، نحن تصف طريقة القائم على الأنزيمية لعزل خلايا الكبد الفئران الأولية، وصفنا تقييم استجابة التهابية في هذه الخلايا باستخدام ELISA والكمي في الوقت الحقيقي PCR.

Introduction

مرض الكلى المزمن (CKD) يمكن تعريفها بأنها حالة من الالتهاب الحاد والمزمن 1. في المرضى الذين يعانون من كد، ومستويات المصل من هرمون الليفية عامل النمو phosphaturic 23 (FGF23) يرتفع تدريجيا من أجل الحفاظ على الفوسفات في الدم التوازن 2. وترتبط زيادة مستويات FGF23 المصل بشكل مستقل مع معدلات الاعتلال والوفيات القلب والأوعية الدموية لدى المرضى الذين بدأوا العلاج غسيل الكلى 3، 4. وعلاوة على ذلك، أظهرت العديد من الدراسات السريرية وجود علاقة قوية بين مستويات FGF23 مرتفعة ومستويات مصل البروتين سي التفاعلي (CRP)، انترلوكين 6 (IL-6) وورم α عامل نخر (TNFα) 5، 6. وعلاوة على ذلك، في دراسة تجريبية، قمنا في الآونة الأخيرة أظهرت أن FGF23 يمكن أن تستهدف مباشرة خلايا الكبد ويسبب استجابة التهابية من خلال زيادة البروتين وIL-6 صرودوكشن في الكبد 7. وبالتالي، FGF23 قد يكون بمثابة عامل المتداولة التي تساهم في التهاب النظامية في CKD.

في 70 في وقت مبكر، وكانت خلايا الكبد الأولية معزولة ودرس لأول مرة 8. ومنذ ذلك الحين استخدمت خلايا الكبد مثقف الابتدائي على نطاق واسع لدراسة معالجة الأيض، وظيفة الهرمونية، استقلاب الدواء وسمية وكذلك الحصانة والاستجابات الالتهابية 9 و 10. ووصف البروتوكولات السابقة أساسا العزلة الأنزيمية من خلايا الكبد الأولية من أنسجة الكبد البشري 11 و 12. بينما نموذجا ممتازا، وهذا يترك من القدرة على دراسة كيفية التلاعب الجيني يؤثر على آليات إشارات الكبد معقدة وكذلك العواقب الوظيفية على أنواع مختلفة من المحفزات. في ما يلي، وصفنا عزل خلايا الكبد الأولية الفئران. والجدير بالذكر، يمكن تحليل تأثير عدة وسطاء للاستجابة في المرحلة الحادة الكبدية، مثل lipopolysaccharide في (LPS)، IL-6 و FGF23 في وسيلة سهلة وسريعة وقابلة للتكرار بطريقة 13.

هنا، نقدم بروتوكول لعزل الأنزيمية من خلايا الكبد من فئران بالغة، وعلينا أن نبرهن على المحرضات التي أنشئت من التهاب، مثل LPS وIL-6، وكذلك وسطاء التهابات جديدة مثل FGF23، يمكن أن تحفز مباشرة التعبير وإفراز السيتوكينات الالتهابية، مثل البروتين وIL-6 في خلايا الكبد مثقف.

Protocol

تمت الموافقة على جميع البروتوكولات الحيوانية والإجراءات التجريبية من قبل اللجنة المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (IACUC) من كلية الحقوق بجامعة ميامي ميلر للطب.

1. إعداد

  1. سخن وسائل الاعلام نضح الكبد وهضم وسائل الإعلام في حمام مائي عند 37 درجة مئوية.
  2. انشاء مضخة نضح (30 مل / دقيقة). بعناية تعبئتها بشكل مسبق نظام أنابيب المضخة مع وسائل الاعلام نضح الكبد. تجنب أي فقاعات هواء في نظام وإعداد المجهر المجسم.
  3. أطباق زراعة الخلايا معطف باستخدام نوع الكولاجين أنا وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.

2. الكبد الانتعاش

  1. تخدير الماوس المانحة باستخدام الأوكسجين / استنشاق الأيزوفلورين (الأيزوفلورين 4٪ / 2 لتر / دقيقة الأكسجين).
    1. الحفاظ على التخدير عن طريق خفض الأيزوفلورين إلى 2-2.5٪ أو عن طريق حقن الكيتامين (100 ملغم / كغم من وزن الجسم داخل الصفاق) وزيلازين (10 ملغ / كغ من وزن الجسم intraperitoneally). ويفضل التخدير الأيزوفلورين المستمر منذ الكيتامين يخفض ضغط الدم ويمكن أن يسبب تسمم الكبد.
  2. ضع الماوس تخدير على وسادة ماصة. إصلاح الأطراف الماوس، مع شريط لاصق.
  3. حلاقة وتطهير البطن من الفأرة وإجراء عملية فتح البطن بطني من العانة إلى الحدود الجمجمة الكبد باستخدام مقص جراحي مع حادة / نصائح صريحة. شق جدار البطن لكلا الجانبين، الذيلية من الحجاب الحاجز.
  4. فضح الوريد الأجوف السفلي (IVC) عن طريق نقل بعناية الأمعاء إلى الجانب الأيمن. بعناية تشريح الأنسجة الدهنية في جميع أنحاء IVC باستخدام معقم مسحات القطن طرف وملقط غيض الزاوية.
  5. شق الحجاب الحاجز فوق الكبد وفتح التجويف الصدري من قبل اثنين من الشقوق الجانبية باستخدام مقص جراحي غرامة مع / نصائح حادة حادة. Ligate في IVC الصدري باستخدام الحرير الجراحية (5/0).
  6. يقني؛ يدخل القنية في IVC infrarenal باستخدام القسطرة الرابع محمية، وإزالة بعناية الإبرة،توصيل مضخة نضح وبدء perfusing الكبد. إذا أجريت بشكل صحيح، يجب الكبد تبدأ على الفور لشحب وتنتفخ.
  7. المسح الشامل للالوريد البابي مما يتيح تصريف مناسبة من الدم والتروية الوسائط باستخدام مقص جراحي غرامة.
  8. يروي الكبد مع ما يقرب من 30 مل من وسائل الاعلام نضح الكبد، ومن ثم التبديل إلى الكبد الهضم وسائل الإعلام (30 مل). إيقاف مضخة نضح وإزالة قنية مرة نضح كاملة.
  9. فضح بلطف المنطقة الوسطى من الكبد وتحديد الأنسجة التي تربط تربط بين فصوص الكبد. الاستيلاء على الألياف التي تربط وسط وبعناية تشريح جميع أنسجة عقد الكبد في مكان وإزالة بلطف الكبد.
  10. على الفور نقل الكبد في أنبوب مخروطي 50 مل البولي بروبلين تحتوي على 15 مل من الكبد الهضم وسائل الإعلام.
    ملاحظة: ليس هناك خط زمني محدد لهذه الخطوة. بعد نضح، يبقى الكبد في وسائل الإعلام هضم لنقل إلى الخلية هود الثقافة العقيمة. كل ليالييجب أن يتم تنفيذ الخطوات التي تبعت في بيئة معقمة.

3. عزل وعلاج الخلايا

  1. داخل الخلية هود الثقافة، ونقل الكبد من 50 مل أنبوب البولي بروبلين مخروطي يحتوي على وسائل الاعلام الهضم في طبق نسيج الثقافة العقيمة.
  2. باستخدام ملقط معقم، المسيل للدموع بلطف فصوص أربعة من الكبد. إذا أجريت بشكل صحيح، ينبغي أن يصبح الهضم المتوسطة عكر بسبب عزل خلايا الكبد من الكبد.
  3. باستخدام 25 مل ماصة معقمة غيض، تصفية المتوسطة الهضم العكرة من خلال 70 ميكرون خلية النايلون مصفاة في أنبوب جديد مخروطي 50 مل البولي بروبلين لإزالة جزيئات الأنسجة عسر الهضم والحطام الخلية.
  4. كرر الخطوات من 3.2 و 3.3 العقيمة مع الفوسفات مخزنة المالحة (PBS). هذا يساعد في إزالة أي خلايا الكبد المتبقية من الكبد.
  5. أجهزة الطرد المركزي في 50 x ج لمدة 2 دقيقة على 4 درجات مئوية. نضح طاف تحتوي على حطام خلية الزائد وبلطف اعادة تعليق الخلايا في 25 مل 1X الباردويليامز المتوسطة هاء
  6. باستخدام 25 مل ماصة معقمة غيض، تصفية اعادة تعليق من خلال جديدة 70 ميكرون خلية النايلون مصفاة إلى مل أنبوب البولي بروبلين مخروطي 50 لتحقيق وقف أنظف.
  7. كرر الخطوات من 3.5 و 3.6 لمدة ثلاث يغسل إضافية باستخدام البارد ويليامز المتوسطة E 1x إلى الحصول على تعليق خلية أكثر وضوحا.
  8. بعد الخطوة غسل النهائي، نضح طاف لإزالة الحطام الخلية الزائد. اعادة تعليق والخلايا مرشح في 25 مل دافئ وليامز "الإعلام E 1X يحتوي على الذوبان الكبدية الابتدائي والمكملات الطلاء من خلال جديدة 70 ميكرون خلية النايلون مصفاة إلى مل أنبوب البولي بروبلين مخروطي 50.
  9. عدد الخلايا داخل تعليق خلية مل 25 باستخدام عدادة الكريات. في المتوسط ​​نتوقع 15-20000000 الخلايا في الكبد الكبار. تحديد بقاء الخلية باستخدام تلطيخ التريبان الأزرق.
  10. لوحة الخلايا في 2 مل من ويليامز وسائل الإعلام E 1X يحتوي على الذوبان الكبدية الابتدائي والمكملات الطلاء على الكولاجين المغلفة م 6-جيداكتلة الثقافة ليرة لبنانية (9 × 10 5 خلايا لكل بئر).
  11. بعد 4 ساعات، وتغيير وسائل الاعلام ويليامز 'وسائل الإعلام E 1X التي تحتوي على ملاحق صيانة الكبدية الأولية.
  12. بعد 24 ساعة، والمصل تجويع الخلايا مع Dulbecco ومتوسطة النسر المعدلة (DMEM) وسائل الاعلام 1X لمدة 6 ساعات.
  13. علاج الخلايا مع برنامج تلفزيوني كما مركبة، FGF23 (25 نانوغرام / مل)، LPS (100 ميكروغرام / مل) أو IL-6 (50 نانوغرام / مل) في المصل خالية المتوسطة واحتضان لمدة 24 ساعة.

4. عزل الحمض النووي الريبي

  1. تحضير الحمض النووي الريبي باستخدام مجموعة عمود الدوران التجارية وفقا لتعليمات الشركة الصانعة.

5. توليد كدنا] من الحمض النووي الريبي معزولة عن طريق النسخ العكسي

  1. إضافة 200 نانوغرام من عينة الحمض النووي الريبي معزولة إلى أنبوب PCR.
  2. إضافة 14 ميكرولتر من خالية من نوكلياز داخلية H 2 O لPCR أنبوب من الخطوة 5.1.
  3. إضافة 4 ميكرولتر من الناسخ العكسي لأنبوب PCR من الخطوة 5.1.
  4. اعادة تعليق محتويات بلطف لجعل الخليط متجانسا. أجهزة الطرد المركزي بلطف.
  5. وضع أنبوب PCR التي تحتوي على الخليط في thermocycler. تشغيل thermocycler لعكس النسخ: 1 دورة من 25 درجة مئوية (5 دقائق)، 42 ° C (30 دقيقة)، 85 ° C (5 دقائق)، ثم عقد في 4 درجات مئوية. سوف يكون المنتج النهائي للكدنا] المرجوة.

6. تحليل الخلايا بواسطة الكمي في الوقت الحقيقي PCR (QPCR)

  1. إعداد لوحة 96-جيدا.
    1. وضع جميع مكونات رد فعل QPCR على الجليد: 1 ميكرولتر كدنا]، 0.25 ميكرومتر التمهيدي إلى الأمام، 0.25 ميكرومتر التمهيدي العكسي، 5 ميكرولتر SYBR الأخضر، 3.5 ميكرولتر PCR الصف المياه إلى وحدة تخزين ما مجموعه 10 ميكرولتر. باستخدام SYBR الخضراء، وإعداد مزيج الرئيسي لتشغيل جميع العينات في ثلاث نسخ.
    2. مرة واحدة مزيج الرئيسي اكتمال، دوامة لجعل متجانسة. قسامة 9 ميكرولتر من QPCR مزيج الرئيسي في كل بئر من لوحة 96-WLL. بعد، إضافة بعناية 1 ميكرولتر من [كدنا في كل بئر. سيصبح إجمالي حجم رد الفعل 10 ميكرولتر.
    3. بعد تحميل كاملة، وختم لوحة 96-جيدا مع البصريةفيلم لاصقة وأجهزة الطرد المركزي لفترة وجيزة لوحة 96-جيدا (50 x ج لمدة 1 دقيقة).
  2. عينات تشغيل في صك في الوقت الحقيقي-PCR. وضع ختم لوحة 96-جيدا في ريال مدريد أداة الوقت-PCR وتشغيل عينات حسب توصيات الشركة الصك. يتم تضمين أمثلة من الدورات العادية والسريعة أدناه.
    1. لالمعلمات الدراجات القياسية، استخدم ما يلي: تمسخ الأولي في 94 درجة مئوية لمدة 120 ثانية، ثم 40 دورة من 94 درجة مئوية لمدة 15 ثانية و 60 درجة مئوية لمدة 60 ثانية، ثم اضغط اختياريا في 4 درجات مئوية.
    2. لالمعلمات ركوب الدراجات بسرعة: استخدم ما يلي: تمسخ الأولي في 94 درجة مئوية لمدة 30 ثانية، ثم 40 دورة من 95 درجة مئوية لمدة 5 ثوان، 58 درجة مئوية لمدة 15 ثانية، ثم 72 درجة مئوية لمدة 10 ثانية.
  3. الرجوع إلى دليل أداة لتوجيهات بشأن كيفية تحليل البيانات.

7. تحليل Supernatants خلية بواسطة ELISA

ملاحظة: يتم تنفيذ كافة الخطوات وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.

  1. إعداد عينة
    1. الاستغناء عن 398 ميكرولتر من مخفف في أنابيب منفصلة. ماصة 2 ميكرولتر من عينة الخلية طاف في أنبوب مخفف 398 ميكرولتر. وهذا سيوفر أضعاف التخفيف من 200.
    2. كرر الخطوة 7.1.1 لكل عينة لفحصها.
  2. إجراء
    1. ماصة 100 ميكرولتر من 200 أضعاف العينة المخففة ومعيار في آبار من لوحة 96-جيدا.
    2. احتضان لوحة 96-جيدا في درجة حرارة 25 درجة مئوية لمدة 45 دقيقة على شاكر صفيحة ميكروسكوبية 150 دورة في الدقيقة.
    3. غسل الآبار 5 مرات مع حل العازلة 1X غسل. وبمجرد الانتهاء من غسل الماضي، وإزالة جميع محلول الغسيل المتبقية مع ورقة ماصة.
    4. إضافة 500 ميكرولتر من كاشف HRP-المترافقة في كل بئر.
    5. كرر الخطوات من 7.2.2 - 7.2.3.
    6. ماصة 100 ميكرولتر من tetramethylbenzidine (TMB) كاشف في كل بئر من لوحة 96-جيدا.
    7. المزيج بلطف لوحة 96-جيدا في درجة حرارة 25 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة على صفيحةشاكر في 150 دورة في الدقيقة. وقف رد الفعل بإضافة مباشرة 100 ميكرولتر من توقف حل كل بئر وتخلط بلطف. مرة واحدة يتم إضافة الحل محطة اللون يجب أن تتحول الصفراء. هذا يعلم أن الحل محطة كان مختلطا بشكل صحيح.
    8. باستخدام لوحة القارئ عيار مكروي، وتحديد الكثافة البصرية في 450 نانومتر خلال 5 دقائق الأولى.
  3. حساب نتائج
    1. حساب جدول متوسط قيم الامتصاصية (A 450) لكل عينة ولكل معيار.
    2. تجميع منحنى القياسية بالتآمر المتوسط بقيمة 450 لكل معيار ضد تركيزه القياسي في نانوغرام / مل على الرسم البياني الخطي. السماح للمحور س لتمثيل تركيز والمحور الصادي لتمثيل 450 القيم.
    3. الاستفادة من يعني 450 من كل عينة المخفف، وتحديد تركيز البروتين المطلوب في نانوغرام / مل من المنحنى القياسي.
    4. مضاعفة تركيز العينة التي كتبها التخفيف الواقعص. وهذا سوف يسمح لتحديد تركيز الفعلي للبروتين المطلوب في نموذج خلية طاف.
    5. رسم الجدول شيدت من العينات في الرسم البياني خط. اذا انخفضت OD 450 القيم خارج المنحنى القياسي، يجب تخفيف العينات بشكل مناسب واختبارها من جديد.
    6. تطبيع النتائج إلى 500،000 الخلايا.

النتائج

علم الانسجة

وصفت الممثلة صور المجهر الضوئي من الخلايا المعزولة ومثقف الابتدائي في الشكل 1A. يوضح تحليل Immunocytochemical أن خلايا الكبد معزولة تعبر عن درجة عالية من الزلال (الحمراء)، وكذلك ن?...

Discussion

عزل خلايا الكبد الأولية من الفئران هو أداة سريعة وغير مكلفة ويمكن الاعتماد عليها لدراسة الاستجابات الالتهابية خارج الحي. إذا أجريت بشكل صحيح، النتائج التي يمكن أن تتولد بسهولة ومستنسخة في الوقت المناسب وبطريقة فعالة من حيث التكلفة. وينبغي تقييم النقاط التالية ...

Disclosures

الكتاب ليس لديهم تضارب المصالح إلى إعلان.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة (R01HL128714 إلى CF) و (F31DK10236101 إلى KS)، وجمعية القلب الأمريكية (قوات التحالف وAG).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Consumables
Cell Strainer 70 μm Nylon cell strainerFalcon352350
BD Insyte AutoguardBD381412
50 mL Polypropylene Conical TubeFalcon352098
100 6-inch Cotton Tipped Applicators Puritan806-WC
1cc U-100 Insulin Syringe 28 G 1/2Becton Dickinson329420
Tissue Culture Dish 100 x 20 mm StyleCorning353003
6 well Cell Culture ClusterCostar3516
5/0 Black Braided Surgical Silk (100 yards)LOOKSP115
NameCompanyCatalog NumberComments
Equipment
Minipuls 3 Perfusion PumpGilsonF155007
Hemacytometer Kits, PropperVWR48300-474
Hemacytometer Cover Glasses, PropperVWR48300-470
Surgical Scissers - Sharp/BluntF.S.T.14001-12
Iris Scissors-ToughCut StraightF.S.T.14058-11
Dumont SS-45 ForcepsF.S.T.11203-25
Student Tissue ForcepsF.S.T.991121-12
NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
Acetic acid solution, 2.0 NSigma    A8976-100ML
Isoflurane, USP 250 mLPiramal Healthcare   66794-013-25
KetaVed 1,000 mg/10 mL (100 mg/mL)VEDCO    50989-161-06
Xylazine 100 mg/mLAnaSed Injection139-236
Willams' Medium E (1x)gibco12551-032
Liver Perfusion Medium (1x)gibco17701-038
Liver Digest Medium (1x)Life Technologies17703034
Primary Hepatocyte Thawing and Plating SupplementsLife TechnologiesCM3000
Primary Hepatocyte Maintenance SupplementsLife TechnologiesCM4000
Phosphate Buffer Saline (PBS) pH 7.4ThermoFisher scientific10010031
Collagen Type 1Corning354236
Trypan Blue SolutionVWR45000-717

References

  1. Silverstein, D. M. Inflammation in chronic kidney disease: role in the progression of renal and cardiovascular disease. Pediatr Nephro. 24 (8), 1445-1452 (2008).
  2. Isakova, T., et al. Fibroblast growth factor 23 is elevated before parathyroid hormone and phosphate in chronic kidney disease. Kidney Int. 79 (12), 1370-1378 (2011).
  3. Faul, C., et al. FGF23 induces left ventricular hypertrophy. J Clin Invest. 121 (11), 4393-4408 (2011).
  4. Gutiérrez, O. M., et al. Fibroblast growth factor 23 and mortality among patients undergoing hemodialysis. N England J Med. 359 (6), 584-592 (2008).
  5. Munoz Mendoza, J., et al. Fibroblast growth factor 23 and Inflammation in CKD. Clin J Am Soc Nephrol. 7 (7), 1155-1162 (2012).
  6. Hanks, L. J., Casazza, K., Judd, S. E., Jenny, N. S., Gutiérrez, O. M. Associations of Fibroblast Growth Factor-23 with Markers of Inflammation, Insulin Resistance and Obesity in Adults. PLoS ONE. 10 (3), e0122885 (2015).
  7. Singh, S., et al. Fibroblast growth factor 23 directly targets hepatocytes to promote inflammation in chronic kidney disease. Kidney Int. , 1-12 (2016).
  8. Howard, R. B., Christensen, A. K., Gibbs, F. A., Pesch, L. A. The enzymatic preparation of isolated intact parenchymal cells from rat liver. J Cell Biol. 35 (3), 675-684 (1967).
  9. Moshage, H. J., et al. The effect of interleukin-1, interleukin-6 and its interrelationship on the synthesis of serum amyloid A and C-reactive protein in primary cultures of adult human hepatocytes. Bioch Biophysi Res Commun. 155 (1), 112-117 (1988).
  10. Soldatow, V. Y., LeCluyse, E. L., Griffith, L. G., Rusyn, I. In vitro models for liver toxicity testing. Toxicol. Res. 2 (1), 23-39 (2013).
  11. Lee, S. M. L., Schelcher, C., Demmel, M., Hauner, M., Thasler, W. E. Isolation of Human Hepatocytes by a Two-step Collagenase Perfusion Procedure. J Vis Exp. (79), (2013).
  12. Kegel, V., et al. Protocol for Isolation of Primary Human Hepatocytes and Corresponding Major Populations of Non-parenchymal Liver Cells. J Vis Exp. (109), (2016).
  13. Moshage, H., et al. Cytokines and the hepatic acute phase response. J Pathol. 181 (3), 257-266 (1997).
  14. Klaunig, J. E., et al. Mouse liver cell culture. I. Hepatocyte isolation. In vitro. 17 (10), 913-925 (1981).
  15. Lu, Y. C., Yeh, W. C., Ohashi, P. S. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 42 (2), 145-151 (2008).
  16. Schmidt-Arras, D., Rose-John, S. IL-6 pathway in the liver: From physiopathology to therapy. J Hepatol. 64 (6), 1403-1415 (2016).
  17. Grabner, A., et al. Activation of Cardiac Fibroblast Growth Factor Receptor 4 Causes Left Ventricular Hypertrophy. Cell Metab. 22 (6), 1020-1032 (2015).
  18. Shulman, M., Nahmias, Y. Chapter 17, Long-Term Culture and Coculture of Primary Rat and Human Hepatocytes. Methods Mol Biol. 945, 287-302 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

121 6 FGF23 CRP LPS

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved