JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يصف هذا العمل بروتوكولات لإعداد الجسيمات النانوية المغناطيسية ، وطلاءها مع SiO2، متبوعة بوظيفتها الأمينية مع (3-aminopropyl) triethoxysilane (APTES) والاقتران مع تأجيلoxamine باستخدام مويتي succinyl كمرتابط. وصف توصيف الهيكلية العميقة ومقايسة البكتيريا التقاط باستخدام Y. enterocolitica لجميع الجسيمات النانوية المتوسطة ومترافق النهائي هي أيضا وصف مفصل.

Abstract

في العمل الحالي، وتوليف الجسيمات النانوية المغناطيسية، وطلاءها مع SiO2، تليها وظيفية أمين مع (3-أمينوبروبيل) triethoxysilane (APTES) والاقتران مع تأجيلoxamine، وs siderophore المعترف بها من قبل Yersinia enterocolitica، وذلك باستخدام مويتي succinyl كما وصفت رابط.

تم إعداد الجسيمات النانوية المغناطيسية (MNP) من الممغنط (Fe3O4)بواسطة طريقة solvothermal ومغلفة بـ SiO2 (MNP@SiO2)باستخدام عملية Stöber تليها وظيفية مع APTES (MNP@SiO2@NH2). ثم، كان مترافقا فيروكسيمين مع MNP@SiO2@NH2 من قبل اقتران كاربودييميد لإعطاء MNP@SiO2@NH2@Fa. تم فحص مورفولوجيا وخصائص المترافقة والوسيطة من خلال ثماني طرق مختلفة بما في ذلك مسحوق X-Ray DIFFACTION (XRD) ، وفورييه تحويل الطيفي بالأشعة تحت الحمراء (FT-IR) ، والتحليل الطيفي رامان ، والأشعة السينية الطيفي الضوئي (XPS) ، والمجهر الإلكتروني انتقال (TEM) وشعاع الأشعة السينية (EDX) الطاقة رسم الخرائط. وقد أكد هذا الوصف الشامل تشكيل المترافق. وأخيرا، من أجل تقييم قدرة وخصوصية الجسيمات النانوية، تم اختبارها في التقاط البكتيريا اختبار باستخدام Yersinia enterocolitica.

Introduction

تعتمد طرق الكشف عن البكتيريا باستخدام MNP على الاعتراف الجزيئي للأجسام المضادة ، aptamers ، البروتين الحيوي ، الكربوهيدرات المترافقة مع MNP بواسطة البكتيريا المسببة للأمراض1. مع الأخذ في الاعتبار أن يتم التعرف على siderophores من قبل مستقبلات محددة على الغشاء الخارجي للبكتيريا، فإنها يمكن أن ترتبط أيضا إلى MNP لزيادة خصوصيتها2. Siderophores هي الجزيئات العضوية الصغيرة المشاركة في Fe3 + امتصاص البكتيريا3،4. لم يتم بعد الإبلاغ عن إعداد الترافق بين siderophores و MNP جنبا إلى جنب مع تقييمها لالتقاط وعزل البكتيريا.

واحدة من الخطوات الحاسمة في تركيب جسيمات نانوية مغناطيسية مع جزيئات صغيرة هي اختيار نوع الرابطة أو التفاعل بينها لضمان أن يتم إرفاق الجزيء الصغير على سطح MNP. لهذا السبب، كان تركيز الإجراء لإعداد الترافق بين الجسيمات النانوية المغناطيسية و فيروكزامين -siderophore المعترف بها من قبل Yersinia enterocolitica- في توليد سطح قابل للتعديل من MNP للسماح لها ربط بتكهوري إلى siderophore بواسطة الكيمياء كاربودييميد. من أجل الحصول على جسيمات نانوية موحدة المغنطيسية (MNP) وتحسين التحكم في التنوية والحجم ، تم إجراء تفاعل تحلية مع الكحول البنزيل في كتلة حرارية دون أن تهتز5. ثم، تم إنشاء طلاء السيليكا من قبل طريقة Stöber لمنح الحماية وتحسين استقرار تعليق الجسيمات النانوية في وسائل الإعلام مائي6. مع الأخذ في الاعتبار هيكل الفلوكسامين ، وإدخال مجموعات أمين ضروري لإنتاج الجسيمات النانوية المناسبة (MNP@SiO2@NH2) أن تكون مترافقة مع siderophore. وقد تحقق ذلك عن طريق التكثيف من (3-aminopropyl) ثلاثية الأيثوكسيسيلين (APTES) مع مجموعات الكحول الموجودة على سطح الجسيمات النانوية المعدلة السيليكا (MNP@SiO2) باستخدام طريقة سول جل7.

في موازاة, تم إعداد فيروكسيمين الحديد (III) مجمع من قبل تعقيد من deferoxamine المتاحة تجاريا مع أسيتونات أسيتيل الحديد في محلول مائي. N-succinylferoxamine، تحمل مجموعات السوتشينيل التي سوف تعمل كربطات، تم الحصول عليها من قبل رد فعل فيروكسيمين مع أنهيدريد succinic.

تمت عملية الاقتران بين MNP@SiO2@NH2 وN-succinylferoxamine لإعطاء MNP@SiO2@NH@Fa من خلال كيمياء كاربوديميد باستخدام الكواشف اقتران benzotriazole-1-yl-ox y-tris-(dimethylamino)-فوسفونيوم سداسي فلوريفوروفوسفات (BOP) و 1-هيدروكسي بنزوزيرول (HOBt) في وسائل الإعلام الأساسية لينة لتنشيط مجموعة حمض المحطة الطرفية في N-succinylferoxamine8. N

وبمجرد أن تم وصف MNPs ، قمنا بتقييم قدرات الجسيمات النانوية المغناطيسية العارية والمزملة لالتقاط النوع البري (WC-A) ومتحول من Y. enterocolitica تفتقر إلى مستقبلات الفلوكسامين FoxA (FoxA WC-A 12-8). وسمح لأعضاء البرلمان الوطنيين العاديين والنواب المُمَنَاة الوظيفية وأعضاء البرلمان الوطني MNP@SiO2@NH@Fa بالتفاعل مع كل سلالة من سلالة Y. enterocolitica. تم فصل المجاميع البكتيريا- مترافق من تعليق البكتيريا عن طريق تطبيق حقل مغناطيسي. تم شطف المجاميع المنفصلة مرتين مع المالحة الفوسفاتية المخزنة (PBS) ، وإعادة تعليقها في PBS لإعداد عمليات التخفيف التسلسلية ثم ، كانت مطلية لعد المستعمرة. يوضح هذا البروتوكول كل خطوة من توليف MNP@SiO2@NH@Fa، والتوصيف الهيكلي لجميع الوسيطات والمقارنات، ومقايسة التقاط البكتيريا كوسيلة سهلة لتقييم خصوصية المترافق فيما يتعلق بالمتوسطات. 9

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

ملاحظة: بالنسبة لردود الفعل التي يتم تنفيذها تحت ظروف الغلاف الجوي الخاملة، كانت جميع الأواني الزجاجية قد جفت سابقا في فرن عند 65 درجة مئوية، مختومة بختم مطاطي وتطهيرها بالأرغون ثلاث مرات.

1. توليف الجسيمات النانوية المغناطيسية المقترنة مع فيلوكسامين

  1. تركيب Fe3O4 الجسيمات النانوية المغناطيسية (MNPs)
    1. إضافة 0.5 غرام من Fe(acac)3 في 20 مل الزجاج قارورة ثم تخلط مع 10 مل من الكحول البنزيل.
    2. سونيكات هذا الخليط لمدة 2 دقيقة، ثم نقل إلى كتلة التدفئة والحرارة في 180 درجة مئوية لمدة 72 ساعة.
    3. بعد الانتهاء من التفاعل، والسماح للقارورة لتهدئة، وشطف الجسيمات النانوية مع 96٪ الإيثانول والطرد المركزي في 4000 س ز لمدة 30 دقيقة. كرر الطرد المركزي مرتين على الأقل.
    4. فصل الجسيمات النانوية من الفائقة عن طريق الجذب المغناطيسي باستخدام المغناطيس النيوديزيوم (NdFeB) والتخلص من المذيبات المتبقية.
    5. شطف مع 96٪ الإيثانول تكرار الخطوة 1.1.4. وتجاهل supernatant بالتناوب مع sonication في حمام لمدة 1 دقيقة في 40 كيلوهرتز حتى يبدو المذيب واضحة.
  2. المغناطيسي جسيمات نانوية SiO2 طلاء (MNP@SiO2)
    1. إعداد تعليق 2 غرام من MNP في 80 مل من الايزوبروبانول ثم إضافة 4 مل من 21٪ الأمونيا، 7.5 مل من الماء المقطر و 0.56 مل من رباعي الإيثيل orthosilicate (في هذا الترتيب) في قارورة أسفل مستديرة مع شريط ضجة المغناطيسي.
    2. سخني الخليط على حرارة 40 درجة مئوية لمدة 2 ساعة مع التحريك المستمر ثم sonicate لمدة 1 ساعة.
    3. فصل MNP مع المغناطيس، والتخلص من عظمى، وتفريقه في 30 مل من الايزوبروبانول.
    4. كرر الخطوات 1.2.1. و1.2.2.
    5. إزالة وغسل شريط اثارة المغناطيسي مع 96٪ الإيثانول لاسترداد جميع المواد.
    6. فصل الجسيمات النانوية من عظمى عن طريق الجذب المغناطيسي باستخدام المغناطيس.
    7. تجاهل supernatant وشطف الجسيمات النانوية مع 96٪ الإيثانول ثلاث مرات بالتناوب مع sonication.
    8. جفف الجسيمات النانوية تحت فراغ في درجة حرارة الغرفة لمدة 12 ساعة.
  3. وظيفية MNP@SiO2 مع (3-أمينوبروبيل) ثلاثي الأيثوكسي سيلين (APTES)
    1. شطف 500 ملغ من MNP@SiO2 التي تم الحصول عليها من الخطوة السابقة مع N, N-dimethylformamide (DMF) تحت الجو الخامل ثم سونيكات لمدة 1 دقيقة في 40 كيلوهرتز. ثم، تجاهل ناظر وكرر هذه العملية ثلاث مرات.
    2. إعادة تعليق الجسيمات في قارورة أسفل جولة، تحت اثارة مع شريط ضجة المغناطيسي وإضافة 9 مل من APTES.
    3. يُحرّك الخليط عند 60 درجة مئوية لمدة 12 ساعة.
    4. تجاهل supernatant وشطف الجسيمات النانوية مع 96٪ الإيثانول ثلاث مرات بالتناوب مع sonication.
  4. توليف الفلوكسامين
    1. يُحلّل 100 ملغ (0.15 مليمول) من ملح المزيج الميّيّلوكسيلات المُرَيِّر المُرَيَّر و53.0 ملغ (0.15 مليمول) من Fe(acac)3 في 5 مل من الماء المقطر ويُحرّك الخليط بين عشية وضحاها في درجة حرارة الغرفة.
    2. اغسل المنتج الناتج ثلاث مرات مع 20 مل من EtOAc في قمع الفصل ومن ثم، وإزالة المذيب العضوي تحت فراغ باستخدام المبخر الدوارة.
    3. تجميد الجافة المرحلة مائي لتحمل فيلوكسامين كما الصلبة الحمراء.
  5. توليف N-succinylferoxamine
    1. إضافة 350 ملغ (3.50 مليمول) من anhydride succinic إلى حل من 100 ملغ (0.17 مليمول) من فيروسامين في 5 مل من البيريدين في 50 مل جولة قاع القارورة تحت الجو الخامل.
    2. يُحرّك الخليط الناتج في درجة حرارة الغرفة لمدة 16 ساعة. بعد ذلك الوقت، وإزالة فائض من البيريدين تحت ضغط مخفض في المبخر الدوار لإعطاء صلبة حمراء داكنة.
    3. حل رد فعل الخام في 3 مل من الميثانول.
    4. نقل محلول الميثانول إلى عمود Sephadex (20 سم من Sephadex في عمود قطره 20 مم) وlute في 0.5 مل / دقيقة.
    5. جمع الكسر الأحمر وإزالة الميثانول تحت فراغ باستخدام المبخر الدوارة.
  6. توليف MNP@SiO2@NH@Fa
    1. شطف 30 ملغ من MNP@SiOالجافة 2@NH2 مرتين مع DMF و sonicate الجسيمات النانوية في 100 مل Erlenmeyer قارورة لمدة 30 دقيقة تحت الجو الخامل.
    2. إعداد حل من N-succinylferoxamine (200 ملغ، 0.30 مليمول)، benzotriazole-1-yl-oxy-tris-(dimethylamino)-فوسفونيوم سداسي فلوريوفوسفات (BOP، 173 ملغم، 0.45 مليمول)، 1-هيدروكسي بنزوزيرول (HOBt، 46 ملغ، 0.39 مليمول) وN،N-diisopropylethylamine (DIPEA، 128.8 ملغ، 1.21 مليمول) في 10 مل من DMF (مزيج A) في 50 مل قارورة مستديرة القاع تحت الغلاف الجوي الخام.N
    3. تعليق شطف سابقا MNP@SiO2@NH2 في 3 مل من DMF تحت سونيكيشن في ظل جفاف تحت ظروف خالية من الأوكسجين باستخدام الغلاف الجوي غاز الأرجون (مزيج B).
    4. إضافة مزيج A لخلط B قطرة.
    5. يهز الخليط النهائي باستخدام شاكر المدارية في درجة حرارة الغرفة بين عشية وضحاها.
    6. فصل القارن الناتج (MNP@SiO2@NH@Fa) من التعليق باستخدام المغناطيس.
    7. شطف الصلبة الناتجة ومن ثم، sonicate أنه خمس مرات مع 10 مل من الإيثانول.
    8. تجفيف الصلبة تحت فراغ لمدة 24 ساعة.

2. جرثومية مع Y. سلالات enterocolitica لتحديد كمية من القبض على البكتيريا المسببة للأمراض مع الجسيمات النانوية

  1. إعداد تعليق لجميع الجسيمات النانوية الوسيطة والمترافق النهائي في برنامج تلفزيوني في 1 ملغ / مل في أنابيب 2 مل العقيمة.
  2. إعداد ثقافة Y. enterocolitica في 5 مل من حساء لوريا بيرتاني (LB) بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية.
  3. إعداد 5 مل من الحديد مرق الصويا تريبتيك نقص (TSB) عن طريق إضافة 50 ميكرولتر من 10 مل 2،2′-bipyridyl.
  4. تلقيح 5 مل من الحديد ناقص TSB مع 50 ميكرولتر من ثقافة بين عشية وضحاها من Y. enterocolitica ومن ثم، احتضان في 37 درجة مئوية مع الانفعالات حتى يتم التوصل إلى OD600 = 0.5\u20120.8.
  5. اتخاذ 100 μL من الثقافة التي تم الحصول عليها في الخطوة 2.4 وتمييع في أنبوب 2.0 مل تحتوي على 900 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني للحصول على أول 1/10 تخفيف. ثم، إعداد تخفيف 1/100 من التخفيف الأول باستخدام نفس الإجراء للحصول على تركيز الخلايا البكتيرية في 1 × 106 مستعمرة تشكيل وحدات (CFU)/مل تقريبا.
  6. إضافة 100 ميكرولتر من تعليق الجسيمات النانوية في 1 ملغم / مل إلى 1 مل من تخفيف 1/100 من تعليق البكتيرية في أنبوب 2.0 مل، والتجانس مع دوامة.
  7. احتضان الثقافة في 20 درجة مئوية لمدة 1 ساعة.
  8. فصل المجاميع MNP / البكتيريا باستخدام المغناطيس وتجاهل بعناية فائقة.
  9. شطف الجسيمات النانوية المنفصلة مرتين مع PBS 1 مل باستخدام دوامة.
  10. تعليق الجسيمات النانوية في 1 مل من برنامج تلفزيوني لحساب كمية التقاط البكتيرية في CFU / مل.
  11. إعداد أربعة متتالية 1/10 تخفيف من التعليق السابق حتى يتم التوصل إلى تخفيف 1 ×10-4.
  12. لوحة 10 μL من كل تخفيف على لوحات TS agar واحتضان لهم في 37 درجة مئوية بين عشية وضحاها.
  13. تصوير لوحة مع digitalizer هلام في وضع الأبيض epi. معالجة الصورة مع برنامج مناسب لتضخيم بقعة لحساب عدد المستعمرات الفردية.
    ملاحظة: تم وصف كل وسيط من الحركة الوطنية NP لمتابعة التقدم المحرز في التوليف. أولاً، تمت دراسة MNPs العارية من قبل XRD للتحقق من الهيكل البلوري. ثم، تم تشغيل الطيف FT-IR لكل وسيطة للتحقق من التغييرات التي حدثت في التفاعل المقابل. كما تم إجراء تحليل طيفي من رامان لكل وسيط من أجل تأكيد الاستنتاجات المستخلصة من أطياف FT-IR. وأتاح لنا تحليل TGA تقدير الوزن الفقدان للمواد الوسيطة التي تحمل مواد عضوية في هيكلها. وقد درست TEM مورفولوجيا وحجم كل وسيطة. وأخيرا، كان تحليل XPS حاسما لتحديد حالات أكسدة الذرة في كل سطح متوسط من سطح MNP وللتأكد من تكوين السندات التساهمية في MNP@SiO2@NH@Fa.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

ويتم إجراء توصيف هيكلي شامل من أجل تحديد مورفولوجيا وخصائص كل من المرافق الوسيطة والنهائية. لهذا الغرض، وتستخدم تقنيات XRD، FT-IR، التحليل الطيفي رامان، TGA، TEM، EDX رسم الخرائط وXX من أجل إثبات تشكيل المترافق. حالات أكسدة الذرات على سطح الجسيمات النانوية التي حصل عليها التحليل الطيفي الضوئي بال?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

يصف هذا البروتوكول تركيب اقتران بين الجسيمات النانوية المغناطيسية وspartrophore feroxamine بواسطة الترابط التساهمي. تم تركيب الممغنطة باستخدام بروتوكول أبلغت عنه بينا وآخرون5 تليها طلاء السيليكا لحماية النواة المغناطيسية للتآكل في النظم مائي، للحد من تجميع وتوفير سطح مناسب للوظيفية<...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

ليس لدينا ما نكشف عنه

Acknowledgements

الكتاب ممتنا نقدر البروفيسور كلاوس Hantke (جامعة توبنغن ، ألمانيا) للتكرم توريد Yersinia enterocolitica سلالات المستخدمة في هذا العمل. وقد تم دعم هذا العمل من خلال المنح AGL2015-63740-C2-1/2-R وRTI2018-093634-B-C21/C22 (AEI/FEDER, EU) من الوكالة الحكومية للأبحاث (AEI) في إسبانيا، والتي يشارك في تمويلها برنامج فيدر من الاتحاد الأوروبي. كما تم دعم العمل في جامعة سانتياغو دي كومبوستيلا وجامعة كورونيا بمنح من قبل GRC2018/018 و GRC2018/039 و ED431E 2018/03 (مجموعة إستراتيجية CICA-INIBIC) من Xunta de Galicia. وأخيراً، نود أن نشكر نوريا كالفو على تعاونها الكبير في تنفيذ بروتوكول الفيديو هذا.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1-Hydroxybenzotriazole hydrate
HOBT		Acros300561000
2,2′-BipyridylSigma AldrichD216305
3-Aminopropyltriethoxysilane 99%Acros151081000
Ammonium hydroxide solution 28% NH3Sigma Aldrich338818
Benzotriazol-1-yloxytris(dimethylamino)-phosphonium hexafluorophosphate BOP ReagentAcros209800050
Benzyl alcoholSigma Aldrich822259
Deferoxamine mesylate salt >92,5% (TLC)Sigma AldrichD9533
Ethanol, anhydrous, 96%Panreac131085
Ethyl Acetate, Extra Pure, SLR, Fisher Chemical
Iron(III) acetylacetonate 97%Sigma AldrichF300
LB Broth (Lennox)Sigma AldrichL3022
N,N-Diisopropylethylamine, 99.5+%, AcroSealAcros459591000
N,N-Dimethylformamide, 99.8%, Extra Dry, AcroSealAcros326871000
Pyridine, 99.5%, Extra Dry, AcroSealAcros339421000
Sephadex LH-20Sigma AldrichLH20100
Succinic anhydride >99%Sigma Aldrich239690
Tetraethyl orthosolicate >99,0%Sigma Aldrich86578

References

  1. Pan, Y., Du, X., Zhao, F., Xu, B. Magnetic nanoparticles for the manipulation of proteins and cells. Chemical Society Reviews. 41 (7), 2912-2942 (2012).
  2. Zheng, T., Nolan, E. M. Siderophore-based detection of Fe(III) and microbial pathogens. Metallomics. 4, 866-880 (2012).
  3. Hider, R. C., Kong, X. Chemistry and biology of siderophores. Natural Product Reports. 27 (5), 637-657 (2010).
  4. Sandy, M., Butler, A. Microbial Iron Acquisition: Marine and Terrestrial Siderophores. Chemical Reviews. 109 (10), 4580-4595 (2010).
  5. Pinna, N., Grancharov, S., Beato, P., Bonville, P., Antonietti, M., Niederberger, M. Magnetite Nanocrystals : Nonaqueous Synthesis, Characterization. Chemistry of Materials. 17 (15), 3044-3049 (2005).
  6. Li, Y. S., Church, J. S., Woodhead, A. L., Moussa, F. Preparation and characterization of silica coated iron oxide magnetic nano-particles. Spectrochimica Acta - Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 76 (5), 484-489 (2010).
  7. Chen, J. P., Yang, P. C., Ma, Y. H., Tu, S. J., Lu, Y. J. Targeted delivery of tissue plasminogen activator by binding to silica-coated magnetic nanoparticle. International Journal of Nanomedicine. 7, 5137-5149 (2012).
  8. El-Boubbou, K., Gruden, C., Huang, X. Magnetic glyco-nanoparticles: a unique tool for rapid pathogen detection, decontamination, and strain differentiation. Journal of the American Chemical Society. 129 (44), 13392-13393 (2007).
  9. Martínez-Matamoros, D., et al. Preparation of functionalized magnetic nanoparticles conjugated with feroxamine and their evaluation for pathogen detection. RSC Advances. 9 (24), 13533-13542 (2019).
  10. Cozar, O., et al. Raman and surface-enhanced Raman study of desferrioxamine B and its Fe(III) complex, ferrioxamine B. Journal of Molecular Structure. 788 (1-3), 1-6 (2006).
  11. Shebanova, O. N., Lazor, P. Characterisation of a-C:H and oxygen-containing Si:C:H films by Raman spectroscopy and XPS. Journal of Solid State Chemistry. 174 (4), 424-430 (2003).
  12. González, P., Serra, J., Liste, S., Chiussi, S., León, B., Pérez-Amor, M. Raman spectroscopic study of bioactive silica based glasses. Journal of Non-Crystalline Solids. 320 (12), 92-99 (2003).
  13. Veres, M., et al. Characterisation of a-C:H and oxygen-containing Si:C:H films by Raman spectroscopy and XPS. Diamond and Related Materials. 14 (3-7), 1051-1056 (2005).
  14. You, Y., et al. Visualization and investigation of Si-C covalent bonding of single carbon nanotube grown on silicon substrate. Applied Physics Letters. 93 (10), 103111-103113 (2008).
  15. Graf, N., et al. XPS and NEXAFS studies of aliphatic and aromatic amine species on functionalized surfaces. Surface Science. 603 (18), 2849-2860 (2009).
  16. Michaeli, W., Blomfield, C. J., Short, R. D., Jones, F. R., Alexander, M. R. A study of HMDSO/O2 plasma deposits using a high-sensitivity and -energy resolution XPS instrument: curve fitting of the Si 2p core level. Applied Surface Science. 137 (1-4), 179-183 (2002).
  17. Liana, A. E., Marquis, C. P., Gunawan, C., Gooding, J. J., Amal, R. T4 bacteriophage conjugated magnetic particles for E. coli capturing: Influence of bacteriophage loading, temperature and tryptone. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 151, 47-57 (2017).
  18. Fang, W., Han, C., Zhang, H., Wei, W., Liu, R., Shen, Y. Preparation of amino-functionalized magnetic nanoparticles for enhancement of bacterial capture efficiency. RSC Advances. 6, 67875-67882 (2016).
  19. Zhan, S., et al. Efficient removal of pathogenic bacteria and viruses by multifunctional amine-modified magnetic nanoparticles. Journal of Hazardous Materials. 274, 115-123 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

160 SiO2 siderophore

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved