JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

هنا ، نصف سلالة S. pneumoniae من النمط المصلي 1 519/43 التي يمكن تعديلها وراثيا باستخدام قدرتها على الحصول بشكل طبيعي على الحمض النووي والبلازميد الانتحاري. كدليل على المبدأ ، تم إجراء طفرة متجانسة في جين pneumolysin (رقائق).

Abstract

لا يزال النمط المصلي 1 للمكورات العقدية الرئوية يمثل مشكلة كبيرة في البلدان المنخفضة والمتوسطة الدخل، ولا سيما في أفريقيا جنوب الصحراء الكبرى. على الرغم من أهميته ، فقد أعيقت الدراسات في هذا النمط المصلي بسبب عدم وجود أدوات وراثية لتعديله. في هذه الدراسة ، وصفنا طريقة لتعديل العزلة السريرية من النمط المصلي 1 وراثيا (السلالة 519/43). ومن المثير للاهتمام ، تم تحقيق ذلك من خلال استغلال قدرة المكورات الرئوية على اكتساب الحمض النووي بشكل طبيعي. ومع ذلك ، على عكس معظم المكورات الرئوية ، لم يكن استخدام الحمض النووي الخطي ناجحا. لتحور هذه السلالة المهمة ، كان لا بد من استخدام بلازميد انتحاري. وقد وفرت هذه المنهجية الوسائل لفهم أعمق لهذا النمط المصلي المراوغ ، سواء من حيث بيولوجيته أو إمراضيته. للتحقق من صحة الطريقة ، تم تحور سم المكورات الرئوية الرئيسي المعروف ، pneumolysin ، لأنه يحتوي على نمط ظاهري معروف وسهل المتابعة. أظهرنا أن المتحور ، كما هو متوقع ، فقد قدرته على تحلل خلايا الدم الحمراء. من خلال القدرة على تحور جين مهم في النمط المصلي محل الاهتمام ، تمكنا من ملاحظة أنماط ظاهرية مختلفة لفقدان الطفرات الوظيفية عند العدوى داخل الصفاق وداخل الأنف من تلك التي لوحظت للأنماط المصلية الأخرى. باختصار ، تثبت هذه الدراسة أن السلالة 519/43 (النمط المصلي 1) يمكن تعديلها وراثيا.

Introduction

العقدية الرئوية (S. pneumoniae ، المكورات الرئوية) هي واحدة من الأسباب الرئيسية للمراضة والوفيات على مستوى العالم. حتى وقت قريب ، تم اكتشاف ما يقرب من 100 نمط مصلي من S. pneumoniae 1،2،3،4،5،6،7. سنويا ، يودي مرض المكورات الرئوية الغازية (IPD) بحوالي 700000 حالة وفاة ، من الأطفال الذين تقل أعمارهم عن 5 سنوات8. العقدية الرئوية هي السبب الرئيسي للالتهاب الرئوي الجرثومي والتهاب الأذن الوسطى والتهاب السحايا وتسمم الدم في جميع أنحاء العالم9.

في حزام التهاب السحايا الأفريقي ، يكون النمط المصلي 1 مسؤولا عن تفشي التهاب السحايا ، حيث يكون نوع التسلسل (ST) ST217 ، وهو نوع تسلسل شديد الضراوة ، هو السائد 10،11،12،13،14،15. وقد تم تشبيه أهميته في علم أمراض التهاب السحايا بأهميته النيسرية السحائية في حزام التهاب السحايا الأفريقي16. غالبا ما يكون النمط المصلي 1 هو السبب الرئيسي ل IPD. ومع ذلك ، نادرا ما توجد في النقل. في الواقع ، في غامبيا ، هذا النمط المصلي مسؤول عن 20 ٪ من جميع الأمراض الغازية ، ولكن تم العثور عليه فقط في 0.5 ٪ من الناقلين الأصحاء14،17،18،19. يحدث التبادل الجيني وإعادة التركيب في المكورات الرئوية المختصة بشكل عام في النقل وليس في المرضالغازي 20. علاوة على ذلك ، فقد ثبت أن النمط المصلي 1 يحتوي على واحد من أقصر معدلات النقل الموصوفة بين المكورات الرئوية (9 أيام فقط). لذلك ، تم اقتراح أن هذا النمط المصلي قد يكون له معدل إعادة تركيب أقل بكثير من الآخرين21.

من الضروري إجراء دراسات متعمقة لفهم السبب وراء انخفاض معدل نقل سلالات النمط المصلي 1 وأهميته في الأمراض الغازية في أفريقيا جنوب الصحراء الكبرى.

نبلغ هنا عن بروتوكول يسمح بالطفرات على مستوى الجينوم لسلالة معينة من النمط المصلي 1 ، 519/43. يمكن لهذه السلالة بسهولة الحصول على الحمض النووي الجديد وإعادة تجميعه في جينومها. هذه الطريقة ليست بعد بين الإجهاد ، لكنها فعالة للغاية عند القيام بها في خلفية 519/43 (تم تحور أهداف أخرى ، والمخطوطات قيد الإعداد). ببساطة باستخدام سلالة 519/43 ، واستغلال كفاءتها الطبيعية ، وكذلك استبدال الطريقة التي يتم بها توفير الحمض النووي الخارجي ، تمكنا من تحور جين pneumolysin (رقائق) في هذه السلالة المصلية 1. تمثل هذه الطريقة تحسينا على الطريقة التي قدمها Harvey et al.22 حيث يتم إجراؤها في خطوة واحدة دون الحاجة إلى تمرير الحمض النووي عبر نمط مصلي مختلف. ومع ذلك ، وبسبب التباين بين السلالات ، لم يتم توحيد أي طريقة لجميع السلالات. إن القدرة على تحور جينات معينة ومراقبة آثارها ستسمح بفهم عميق لسلالات النمط المصلي 1 S. الرئوية وستوفر إجابات لدور هذه السلالات في التهاب السحايا في أفريقيا جنوب الصحراء الكبرى.

Protocol

1. توليد الأمبليكون المتحور بواسطة SOE-PCR23 وتضخيم كاسيت سبكتينومايسين

  1. ابدأ بإجراء تفاعل البوليميراز المتسلسل لتضخيم أذرع التماثل (رقائق 5 '(488 نقطة أساس) ورقائق 3' (715 نقطة أساس) على التوالي) للمناطق الجانبية لجين الرقائقي من السلالة 519/43. استخدم الاشعال plyFw1_NOTI (TTT GCGGCCGCCAGTAAATGACTTTATACTAGCTATG) ، ply5'R1_BamHI (CGAAATATAGACCAAAGGACGC GGATCC AGAACCAAACTTGACCTTGA) ، ply3'F1_BamHI (TCAAGGTCAAGTTTTTCTCTGGATCC GCGTCCTTTGGTCTATATTTCG) و plyRv2_NotI (TTTGCGGCCGCCATTTTCTACCTTATCCTCTACC).
  2. استخدم شروط تفاعل البوليميراز المتسلسل التالية للرقائق 5 ': تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة 60 ثانية ، الخطوة 2: تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 3: التلدين عند 58 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 4: التمديد عند 72 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 5: ارجع إلى الخطوة 2 وكرر لمدة 35 دورة ، الخطوة 6: التمديد النهائي عند 72 درجة مئوية لمدة 30 ثانية.
    1. استخدم نفس شروط تفاعل البوليميراز المتسلسل ل ply3 'باستثناء وقت التمديد في الخطوة 4 والخطوة 6 حيث يجب أن يكون 60 ثانية.
  3. تحليل منتجات PCR عن طريق هلام الكهربائي واستئصال amplicon من هلام.
  4. تنقية مضخمات PCR باتباع البروتوكول الموضح في تعليمات الشركة المصنعة (جدول المواد).
  5. استخدم كميات متساوية المولي من كلا ذراعي التماثل كقوالب في SOE-PCR. دمج اثنين من amplicons باستخدام الاشعال plyFw1_ NOTI (TTT GCGGCCGCCAGTAAATGACTTTATACTAGCTATG) ، و plyRv2_NotI (TTTGCGGCCGCCATTTTCTACCTTATCCTCTACC).
  6. استخدم شروط SOE-PCR التالية (الخطوة 1: تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة دقيقتين ، الخطوة 2: تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 3: التلدين 58 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 4: التمديد عند 68 درجة مئوية لمدة 60 ثانية ، الخطوة 5: ارجع إلى الخطوة 2 وكرر لمدة 25 دورة ، الخطوة 6: التمديد النهائي عند 68 درجة مئوية لمدة 90 ثانية).
  7. تحليل منتج SOE-PCR عن طريق هلام الكهربائي. قم باستئصاله من الجل باستخدام مجموعة استخراج الجل واتبع التعليمات المقدمة.
  8. تضخيم كاسيت سبكتينومايسين من البلازميد pR412 باستخدام شروط تفاعل البوليميراز المتسلسل التالية: الخطوة 1: تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة 60 ثانية ، الخطوة 2: تغيير طبيعة عند 94 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 3: التلدين عند 55 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، الخطوة 4: التمديد عند 68 درجة مئوية لمدة 60 ثانية ، الخطوة 5: ارجع إلى الخطوة 2 وكرر لمدة 25 دورة ، الخطوة 6: التمديد النهائي عند 68 درجة مئوية لمدة 60 ثانية.
    1. استخدم البادئات BamHI_SP2F2 (GGATCC CTA GAA CTA GTG GAT CCC CC) و BamHI_SP2R2 (GGATCC AAT TCT GCA GAT TTT AC ATG ATC). تم الحصول على البلازميد pR412 من الدكتور مارك برودوم (CNRS-جامعة بول ساباتييه تولوز فرنسا).
  9. تحليل amplicons PCR عن طريق هلام الكهربائي. استئصال وتنقية amplicon PCR الناتجة كما هو موضح أعلاه.

2. توليد البلازميد pSD1 والتحول الكيميائي للإشريكية القولونية Dh5α

  1. قم بإجراء ربط باتباع تعليمات الشركة المصنعة لنظام pGEMT-easy I (جدول المواد). في أنبوب الطرد المركزي الدقيق ، أضف 5 ميكرولتر من مخزن الربط 2x ، و 1 ميكرولتر من pGEMTeasy ، و 2 ميكرولتر من المنتج ply_SOE ، و 1 ميكرولتر من T4 DNA ligase والماء إلى حجم إجمالي 20 ميكرولتر. احتضان بين عشية وضحاها في 4 درجة مئوية. هذا يولد البلازميد pSD1.
  2. تحويل الإشريكية القولونية المختصة كيميائيا Dh5α مع pSD1. ابدأ باحتضان 50 ميكرولتر من الإشريكية القولونية المختصة كيميائيا Dh5α مع 3 ميكرولتر من تفاعل ربط pSD1 لمدة 15 دقيقة على الجليد. ثم استمر في تعريض الخلايا لصدمة حرارية (42 درجة مئوية ، 30 ثانية). ضع الخلايا على الثلج لمدة 2 دقيقة.
  3. قم بإزالة الخلايا من الثلج وأضف 350 ميكرولتر من وسائط S.O.C. احتضان الثقافة لمدة 2 ساعة عند 37 درجة مئوية ، 120 دورة في الدقيقة.
  4. صفيحة التحول على Luria Bertani Agar (LBA) مكملة ب 0.4 mM IPTG ، 0.24 مجم / مل X-Gal للاختيار الأزرق / الأبيض و 100 ميكروغرام / مل أمبيسيلين لضمان أن جميع المستعمرات التي تنمو في الصفيحة لها العمود الفقري البلازميد. تحتوي المستعمرات البيضاء على pSD1.
  5. اختر ثلاث مستعمرات بيضاء وقم بإعداد نمو بين عشية وضحاها في 10 مل من LB ، مع استكمال 100 ميكروغرام / مل من الأمبيسلين. احتضان الثقافات بين عشية وضحاها عند 37 درجة مئوية مع الهز.
  6. في اليوم التالي ، قم بطرد الثقافات عند 3082 × جم واستخدم الحبيبات لاستخراج البلازميد.

3. استخراج الحمض النووي البلازميد ، وتقييد هضم pSD1 وجين سبكتينومايسين وتجميع pSD2

  1. استخرج الحمض النووي البلازميد باتباع التعليمات المرفقة مع المجموعة التجارية (جدول المواد).
  2. قم بإعداد هضم تقييد BamHI لكل من بلازميد pSD1 وكاسيت سبكتينومايسين الذي تم تضخيمه وتنقيته مسبقا. استخدم الشروط والكميات التالية الموضحة في الجدول 1.
  3. احتضان تفاعلات الهضم التقييدية والضوابط عند 37 درجة مئوية لمدة 3 ساعات.
  4. قم بتحليل هضم التقييد عن طريق الرحلان الكهربائي ، وقم باستئصال الشريط وتنقيته باتباع التعليمات المرفقة مع المجموعة التجارية (جدول المواد).
  5. بعد ذلك ، قم بإعداد تفاعل ربط باتباع تعليمات الشركة المصنعة (جدول المواد) باستخدام pSD1 المهضوم BamHI والسبكتينومايسين (من الخطوة 3.2). في أنبوب الطرد المركزي الدقيق ، أضف مكونات التفاعل التالية: 5 ميكرولتر من 2x ربط العازلة ، 2 ميكرولتر pSD1 ، 2 ميكرولتر من كاسيت سبكتينومايسين ، 1 ميكرولتر من T4 DNA ligase واحتضان بين عشية وضحاها عند 4 درجات مئوية. هذا يولد البلازميد pSD2.
  6. تحويل البلازميد pSD2 إلى E. coli Dh5α المختص كيميائيا كما هو موضح في الخطوة 2.2.
  7. حدد المحولات التي تحمل البلازميد pSD2 بناء على قدرتها على النمو في LBA المكمل ب 100 ميكروغرام / مل من سبكتينومايسين والأمبيسلين.
  8. قم بإجراء استخراج الحمض النووي البلازميد (pSD2) كما هو موضح أعلاه واتباع تعليمات الشركة المصنعة (ميكرولتر).

4. تحول سلالة S. الرئوية 519/43

  1. قم بإعداد ثقافة بين عشية وضحاها من S. pneumoniae 519/43 في BHI واسمح لها بالنمو بشكل ثابت عند 37 درجة مئوية ، 5٪ CO2.
  2. في اليوم التالي تمييع الثقافات 1:50 و 1: 100 في 10 مل من مرق BHI الطازج. احتضان المزارع بشكل ثابت عند 37 درجة مئوية حتى يكون OD595nm بين 0.05 و 0.1 (الاكتساب الأمثل للحمض النووي أقرب إلى 0.1 OD).
  3. بمجرد الوصول إلى OD من 0.1 ، خذ 860 ميكرولتر وانقله إلى أنبوب طرد مركزي دقيق. في نفس أنبوب الطرد المركزي الدقيق هذا ، أضف: 100 ميكرولتر من 100 مللي مول هيدروكسيد الصوديوم ، 10 ميكرولتر من 20٪ (وزن / حجم) BSA ، 10 ميكرولتر من 100 مللي متر CaCl 2 ،2 ميكرولتر من 50 نانوغرام / مل CSP124 و 500 نانوغرام من pSD2.
  4. احتضان التفاعل بشكل ثابت عند 37 درجة مئوية لمدة 3 ساعات.
  5. صفيحة 330 ميكرولتر على ألواح أجار الدم 5٪ (BA) مكملة ب 100 ميكروغرام / مل سبكتينومايسين ، كل ساعة على مدار 3 ساعات حضانة.
  6. احتضان لوحات بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية ، 5 ٪ CO2. رقعة المستعمرات المقاومة للسبكتينومايسين على صفيحة BA أخرى مكملة ب 100 ميكروغرام / مل سبكتينومايسين وكذلك على ألواح BA مكملة ب 100 ميكروغرام / مل من الأمبيسلين. احتضان كلتا المجموعتين من اللوحات بين عشية وضحاها وفقا للشروط المذكورة أعلاه. لوحات الأمبيسلين هي لاختبار وجود العمود الفقري البلازميد.
  7. تأكد من وجود كاسيت سبكتينومايسين بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسل باستخدام الاشعال plyFw1_ NOTI (TTT GCGGCCGCCAGTAAATGACTTTATACTAGCTATG) و SPEC_REV (TAATTCCTCTAAGTCATAATTTCCG). تأكد من الطفرة بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسل باستخدام البرايمات plySCN1 (CCAATGGAAATCGCTAGGCAAGAGATAA) و plySCN2 (ATTACTTAGTCCAACCACGGCTGAT) التي تلتصق خارج المنطقة المتحورة.
  8. قم بتأكيد التكامل في الموقع الصحيح للجينوم عن طريق التسلسل باستخدام الباشير plySCN1 (CCAATGGAAATCGCTAGGCAAGAGATAA) ، plySCN2 (ATTACTTAGTCCAACCACGGCTGAT) ، بالإضافة إلى البادئات مع موقع ارتباطها في كاسيت سبكتينومايسين sqr1 (CCTGATCCAAACATGTAAGTACC) sqf2 (CGTAGTTATCTTGGAGAGAATA) spec_sqf1 (GGTACTTACATGTTTGGATCAGG) و spec_sqr2 TATTCTCTCCAAGATAACTACG.

النتائج

يبدأ البروتوكول الموصوف هنا باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل لتضخيم أذرع التماثل الأيسر والأيمن ، مع حذف 191 نقطة أساس في نفس الوقت من المنطقة الوسطى من جين الرقائق . أثناء إجراء تفاعل البوليميراز المتسلسل ، يتم تقديم موقع BamHI عند 3 'من ذراع التماثل الأيسر وفي نهاية 5' من ذراع التماثل...

Discussion

لا تزال العقدية الرئوية ، ولا سيما النمط المصلي 1 ، تشكل تهديدا عالميا يسبب مرض المكورات الرئوية الغازية والتهاب السحايا. على الرغم من إدخال لقاحات مختلفة يجب أن تكون وقائية ضد النمط المصلي 1 ، في إفريقيا ، لا يزال هذا النمط المصلي قادرا على التسبب في تفشي الأمراض التي تؤدي إلى ارتفاع م...

Disclosures

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

نود أن نشكر الصندوق الاستئماني لالتهاب السحايا و MRC على توفير التمويل لهذا العمل.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AccuPrime Pfx DNA polymeraseInvitrogen12344024Used for amplification of the fragments
Ampicillin sodium saltSigma AldrichA9518Used for bacterial selection on stage 1(pSD1)
Blood Agar BaseOxoidCM0055Used to plate S. pneumoniae transformants
Bovine Serum Albuminesigma55470used for S. pneumoniae Transformation
Brain Heart InfusionOxoidCM1135used to grow S. pneumoniae cells
Calcium Chloride Cacl2Sigma449709used for S. pneumoniae Transformation
Competence stimulating peptide 1AnaSpecAS-63779used for S. pneumoniae Transformation
Luria Broth AgarGibco22700025used for plating and selection of pSD1 and pSD2
Luria Broth Base (Miller's formulation)Gibco12795027used for plating and selection of pSD1 and pSD2
Monarch Gel Extraction KitNEBT1020SUsed to extract the bands from the DNA gel
Monarch Plasmid Miniprep KitNEBT1010SUsed to extract plasmid from the cells
pGEM T-easyPromegaA1360used as suicide plasmid
S.O.C.Invitrogen15544034used for recovery of cells after transformation
Sodium Hydroxide (NaOH)SigmaS0899used for S.pneumoniae Transformation
Spectinomycin HydrochlorideSigmaAldrichPHR1426Used for bacterial selection
Subcloning Efficiency DH5α Competent CellsInvitrogen18265017used for the creation of pSD1 and pSD2

References

  1. Bentley, S. D., et al. Genetic Analysis of the Capsular Biosynthetic Locus from All 90 Pneumococcal Serotypes. PLoS Genetics. 2 (3), 31 (2006).
  2. Calix, J. J., Nahm, M. H. A new pneumococcal serotype, 11E, has a variably inactivated wcjE gene. The Journal of Infectious Diseases. 202 (1), 29-38 (2010).
  3. Park, I. H., Pritchard, D. G., Cartee, R., Brandao, A., Brandileone, M. C. C., Nahm, M. H. Discovery of a New Capsular Serotype (6C) within Serogroup 6 of Streptococcus pneumoniae. Journal of Clinical Microbiology. 45 (4), 1225-1233 (2007).
  4. Jin, P., et al. First Report of Putative Streptococcus pneumoniae Serotype 6D among Nasopharyngeal Isolates from Fijian Children. The Journal of Infectious Diseases. 200 (9), 1375-1380 (2009).
  5. Oliver, M. B., vander Linden, M. P. G., Küntzel, S. A., Saad, J. S., Nahm, M. H. Discovery of Streptococcus pneumoniae Serotype 6 Variants with Glycosyltransferases Synthesizing Two Differing Repeating Units. Journal of Biological Chemistry. 288 (36), 25976-25985 (2013).
  6. Calix, J. J., et al. Serological Characterization of Two Capsule Subtypes among Streptococcus pneumoniae Serotype 20 Strains. Journal of Biological Chemistry. 287 (33), 27885-27894 (2012).
  7. Park, I. H., et al. and Serological Characterization of a New Pneumococcal Serotype, 6H, and Generation of a Pneumococcal Strain Producing Three Different Capsular Repeat Units. Clinical and Vaccine Immunology. 22 (3), 313-318 (2015).
  8. O'Brien, K. L., et al. Burden of disease caused by Streptococcus pneumoniae in children younger than 5 years: global estimates. The Lancet. 374 (9693), 893-902 (2009).
  9. Henriques-Normark, B., Tuomanen, E. I. The Pneumococcus: Epidemiology, Microbiology, and Pathogenesis. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 3 (7), 010215 (2013).
  10. Leimkugel, J., et al. An Outbreak of Serotype 1 Streptococcus pneumoniae Meningitis in Northern Ghana with Features That Are Characteristic of Neisseria meningitidis Meningitis Epidemics. The Journal of Infectious Diseases. 192 (2), 192-199 (2005).
  11. Yaro, S., et al. Epidemiological and Molecular Characteristics of a Highly Lethal Pneumococcal Meningitis Epidemic in Burkina Faso. Clinical Infectious Diseases. 43 (6), 693-700 (2006).
  12. Antonio, M., et al. Molecular epidemiology of pneumococci obtained from Gambian children aged 2-29 months with invasive pneumococcal disease during a trial of a 9-valent pneumococcal conjugate vaccine. BMC Infectious Diseases. 8 (1), 81 (2008).
  13. Kwambana-Adams, B. A., et al. An outbreak of pneumococcal meningitis among older children (≥5 years) and adults after the implementation of an infant vaccination programme with the 13-valent pneumococcal conjugate vaccine in Ghana. BMC Infectious Diseases. 16 (1), 575 (2016).
  14. Antonio, M., et al. Seasonality and outbreak of a predominant Streptococcus pneumoniae serotype 1 clone from The Gambia: Expansion of ST217 hypervirulent clonal complex in West Africa. BMC Microbiology. 8 (1), 198 (2008).
  15. Staples, M., et al. Molecular characterization of an Australian serotype 1 Streptococcus pneumoniae outbreak. Epidemiology and Infection. 143 (2), 325-333 (2015).
  16. Gessner, B. D., Mueller, J. E., Yaro, S. African meningitis belt pneumococcal disease epidemiology indicates a need for an effective serotype 1 containing vaccine, including for older children and adults. BMC Infectious Diseases. 10 (1), 22 (2010).
  17. Hill, P. C., et al. Nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae in Gambian infants: a longitudinal study. Clinical Infectious Diseases. 46 (6), 807-814 (2008).
  18. Ebruke, C., et al. Temporal changes in nasopharyngeal carriage of Streptococcus pneumoniae serotype 1 genotypes in healthy Gambians before and after the 7-valent pneumococcal conjugate vaccine. PeerJ. 3, 90 (2015).
  19. Adegbola, R. A., et al. Serotype and antimicrobial susceptibility patterns of isolates of Streptococcus pneumoniae causing invasive disease in The Gambia 1996-2003. Tropical Medicine and International Health. 11 (7), 1128-1135 (2006).
  20. Marks, L. R., Reddinger, R. M., Hakansson, A. P. High Levels of Genetic Recombination during Nasopharyngeal Carriage and Biofilm Formation in Streptococcus pneumoniae. mBio. 3 (5), (2012).
  21. Ritchie, N. D., Mitchell, T. J., Evans, T. J. What is different about serotype 1 pneumococci. Future Microbiology. 7 (1), 33-46 (2012).
  22. Harvey, R. M., et al. The variable region of pneumococcal pathogenicity island 1 is responsible for unusually high virulence of a serotype 1 isolate. Infection and Immunity. 84 (3), 822-832 (2016).
  23. Horton, R. M., Cai, Z. L., Ho, S. N., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. BioTechniques. 8 (5), 528-535 (1990).
  24. Alioing, G., Granadel, C., Morrison, D. A., Claverys, J. P. Competence pheromone, oligopeptide permease, and induction of competence in Streptococcus pneumoniae. Molecular Microbiology. 21 (3), 471-478 (1996).
  25. Lund, E. . Enumeration and description of the strains belonging to the State Serum Institute, Copenhagen Denmark. , (1951).
  26. Barany, F., Tomasz, A. Genetic transformation of Streptococcus pneumoniae by heterologous plasmid deoxyribonucleic acid. Journal of Bacteriology. 144 (2), 698-709 (1980).
  27. Terra, V. S., Homer, K. A., Rao, S. G., Andrew, P. W., Yesilkaya, H. Characterization of novel β-galactosidase activity that contributes to glycoprotein degradation and virulence in Streptococcus pneumoniae. Infection and Immunity. 78 (1), (2010).
  28. Terra, V. S., Zhi, X., Kahya, H. F., Andrew, P. W., Yesilkaya, H. Pneumococcal 6-phospho-β-glucosidase (BglA3) is involved in virulence and nutrient metabolism. Infection and Immunity. 84 (1), (2015).
  29. Harvey, R. M., Ogunniyi, A. D., Chen, A. Y., Paton, J. C. Pneumolysin with Low Hemolytic Activity Confers an Early Growth Advantage to Streptococcus pneumoniae in the Blood. Infection and Immunity. 79 (10), 4122 (2011).
  30. Terra, V. S., Plumptre, C. D., Wall, E. C., Brown, J. S., Wren, B. W. Construction of a pneumolysin deficient mutant in Streptococcus pneumoniae serotype 1 strain 519/43 and phenotypic characterisation. Microbial Pathogenesis. 141, 103999 (2020).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

163 1

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved