A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
* These authors contributed equally
يتم تنظيم التعبير الجيني من خلال تفاعلات محفزات الجينات مع العناصر التنظيمية البعيدة. هنا ، نحدد كيف يسمح انخفاض الإدخال Capture Hi-C (liCHi-C) بتحديد هذه التفاعلات في أنواع الخلايا النادرة ، والتي كانت غير قابلة للقياس في السابق.
يتم تنظيم النسخ الجيني الزماني المكاني بإحكام من خلال العناصر التنظيمية البعيدة ، مثل المعززات وكاتمات الصوت ، والتي تعتمد على القرب المادي مع مروجي الجينات المستهدفة للتحكم في النسخ. على الرغم من سهولة تحديد هذه العناصر التنظيمية ، إلا أنه من الصعب التنبؤ بجيناتها المستهدفة ، نظرا لأن معظمها خاص بنوع الخلية ويمكن فصلها بمئات الكيلوقواعد في تسلسل الجينوم الخطي ، متخطية الجينات الأخرى غير المستهدفة. لعدة سنوات ، كان Promoter Capture Hi-C (PCHi-C) هو المعيار الذهبي لربط العناصر التنظيمية البعيدة بجيناتها المستهدفة. ومع ذلك ، يعتمد PCHi-C على توافر ملايين الخلايا ، مما يحظر دراسة مجموعات الخلايا النادرة مثل تلك التي يتم الحصول عليها عادة من الأنسجة الأولية. للتغلب على هذا القيد ، تم تطوير Capture Hi-C (liCHi-C) منخفض المدخلات ، وهي طريقة فعالة من حيث التكلفة وقابلة للتخصيص لتحديد ذخيرة العناصر التنظيمية البعيدة التي تتحكم في كل جين من جينوم. يعتمد liCHi-C على إطار تجريبي وحسابي مماثل ل PCHi-C ، ولكن من خلال استخدام الحد الأدنى من التغييرات في الأنبوب ، وتعديل تركيز الكاشف وأحجامه ، وتبديل الخطوات أو إزالتها ، فإنه يمثل الحد الأدنى من فقدان المواد أثناء بناء المكتبة. بشكل جماعي ، يتيح liCHi-C دراسة تنظيم الجينات وتنظيم الجينوم الزماني المكاني في سياق علم الأحياء التنموي والوظيفة الخلوية.
يدفع التعبير الجيني الزمني تمايز الخلايا ، وفي النهاية ، تطور الكائن الحي ، ويرتبط تغييره ارتباطا وثيقا بعدد كبير من الأمراض1،2،3،4،5. يتم تنظيم النسخ الجيني بدقة من خلال عمل العناصر التنظيمية ، والتي يمكن تصنيفها على أنها قريبة (أي محفزات الجينات) وبعيدة (على سبيل المثال ، معززات أو كاتمات الصوت) ، وغالبا ما توجد الأخيرة بعيدا عن جيناتها المستهدفة وتتفاعل معها جسديا من خلال حلقات الكروماتين لتعديل التعبير الجيني6،7،8
لضمان الحد الأدنى من فقدان المواد ، (1) العمل مع أنابيب ونصائح منخفضة الارتباط بالحمض النووي (انظر جدول المواد) ، (2) ضع الكواشف على جدار الأنبوب بدلا من إدخال الطرف داخل العينة ، و (3) إذا أمكن ، امزج العينة عن طريق الانعكاس بدلا من سحب العينة لأعلى ولأسفل ، وقم بتدويرها لأسفل بعد ذلك لاستعادة العينة.
1. تثبيت الخلية
يوفر liCHi-C إمكانية إنشاء مكتبات تفاعلية عالية الجودة وعالية الدقة على مستوى الجينوم مع أقل من 50000 خلية53. يتم تحقيق ذلك عن طريق - إلى جانب التخفيض الحاد في أحجام التفاعل واستخدام الأواني البلاستيكية منخفضة الارتباط بالحمض النووي في جميع أنحاء البروتوكول - إزالة الخطوات غير الضر?.......
يوفر liCHi-C القدرة على إنشاء مكتبات تفاعلية عالية الدقة باستخدام إطار تجريبي مماثل من PCHi-C ولكن مع عدد خلايا مخفض بشكل كبير. يتم تحقيق ذلك بشكل كبير من خلال القضاء على الخطوات غير الضرورية ، مثل تنقية الفينول وإزالة البيوتين. في بروتوكول Hi-C الكلاسيكي للربط داخل النواة57 وتقنيته ا?.......
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
نشكر بقية الأعضاء من مختبر خافيير على ملاحظاتهم على المخطوطة. نشكر برنامج CERCA و Generalitat de Catalunya ومؤسسة Josep Carreras على الدعم المؤسسي. تم تمويل هذا العمل من قبل FEDER / وزارة العلوم والابتكار الإسبانية (RTI2018-094788-A-I00) ، والجمعية الأوروبية لأمراض الدم (4823998) ، والجمعية الإسبانية لمكافحة السرطان (AECC) LABAE21981JAVI. يتم تمويل BMJ من قبل مشروع القائد الصغير لمؤسسة La Caixa المصرفية (LCF / BQ / PI19 / 11690001) ، ويتم تمويل LR من خلال زمالة AGAUR FI (2019FI-B00017) ، ويتم تمويل LT-D من خلال زمالة FPI (PRE2019-088005). نشكر برنامج الدكتوراه في الكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية من جامعة برشلونة المستقلة على دعمها. لم يشارك أي من الممولين في أي و....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.4 mM Biotin-14-dATP | Invitrogen | 19524-016 | |
0.5 M EDTA pH 8.0 | Invitrogen | AM9260G | |
1 M Tris pH 8.0 | Invitrogen | AM9855G | |
10x NEBuffer 2 | New England Biolabs | B7002S | Referenced as restriction buffer 2 in the manuscript |
10x PBS | Fisher Scientific | BP3994 | |
10x T4 DNA ligase reaction buffer | New England Biolabs | B0202S | |
16% formaldehyde solution (w/v), methanol-free | Thermo Scientific | 28908 | |
20 mg/mL Bovine Serum Albumin | New England Biolabs | B9000S | |
5 M NaCl | Invitrogen | AM9760G | |
5PRIME Phase Lock Gel Light tubes | Qiuantabio | 2302820 | For phenol-chloroform purification in section 4 (DNA purification). Phase Lock Gel tubes are a commercial type of tubes specially designed to maximize DNA recovery after phenol-chloroform purifications while avoiding carryover of contaminants in the organic phase by containing a resin of intermediate density which settles between the organic and aqueous phase and isolates them. PLG tubes should be spun at 12,000 x g for 30 s before use to ensure that the resin is well-placed at the bottom of the tube |
Adapters and PCR primers for library amplification | Integrated DNA Technologies | - | Bought as individual primers with PAGE purification for NGS |
Cell scrappers | Nunc | 179693 | Or any other brand |
Centrifuge (fixed-angle rotor for 1.5 mL tubes) | Any brand | ||
CHiCAGO R package | 1.14.0 | ||
CleanNGS beads | CleanNA | CNGS-0050 | |
dATP, dCTP, dGTP, dTTP | Promega | U120A, U121A, U122A, U123A | Or any other brand |
DNA LoBind tube, 1.5 mL | Eppendorf | 30108051 | |
DNA LoBind tube, 2 mL | Eppendorf | 30108078 | |
DNA polymerase I large (Klenow) fragment 5000 units/mL | New England Biolabs | M0210L | |
Dynabeads MyOne Streptavidin C1 beads | Invitrogen | 65002 | For biotin pull-down of the pre-captured library in section 8 (biotin pull-down) |
Dynabeads MyOne Streptavidin T1 beads | Invitrogen | 65602 | For biotin pull-down of the post-captured library in section 11 (biotin pull-down and PCR amplification) |
DynaMag-2 | Invitrogen | 12321D | Or any other magnet suitable for 1.5 ml tubeL |
Ethanol absolute | VWR | 20821.321 | |
FBS, qualified | Gibco | 10270-106 | Or any other brand |
Glycine | Fisher BioReagents | BP381-1 | |
GlycoBlue Coprecipitant | Invitrogen | AM9515 | Used for DNA coprecipitation in section 4 (DNA purification) |
HiCUP | 0.8.2 | ||
HindIII, 100 U/µL | New England Biolabs | R0104T | |
IGEPAL CA-630 | Sigma-Aldrich | I8896-50ML | |
Klenow EXO- 5000 units/mL | New England Biolabs | M0212L | |
Low-retention filter tips (10 µL, 20 µL, 200 µL and 1000 µL) | ZeroTip | PMT233010, PMT252020, PMT231200, PMT252000 | |
M220 Focused-ultrasonicator | Covaris | 500295 | |
Micro TUBE AFA Fiber Pre-slit snap cap 6 x 16 mm vials | Covaris | 520045 | For sonication in section 6 (sonication) |
NheI-HF, 100 U/µL | New England Biolabs | R3131M | |
Nuclease-free molecular biology grade water | Sigma-Aldrich | W4502 | |
PCR primers for quality controls | Integrated DNA Technologies | - | |
PCR strips and caps | Agilent Technologies | 410022, 401425 | |
Phenol: Chloroform: Isoamyl Alcohol 25:24:1, Saturated with 10 mM Tris, pH 8.0, 1 mM EDTA | Sigma-Aldrich | P3803 | |
Phusion High-Fidelity PCR Master Mix with HF Buffer | New England Biolabs | M0531L | For amplification of the library in sections 9 (dATP-tailing, adapter ligation and PCR amplification) and 11 (biotin pull-down and PCR amplification) |
Protease inhibitor cocktail (EDTA-free) | Roche | 11873580001 | |
Proteinase K, recombinant, PCR grade | Roche | 3115836001 | |
Qubit 1x dsDNA High Sensitivity kit | Invitrogen | Q33230 | For DNA quantification after precipitation in section 4 (DNA purification) |
Qubit assay tubes | Invitrogen | Q32856 | |
rCutsmart buffer | New England Biolabs | B6004S | |
RPMI Medium 1640 1x + GlutaMAX | Gibco | 61870-010 | Or any other brand |
SDS - Solution 10% for molecular biology | PanReac AppliChem | A0676 | |
Sodium acetate pH 5.2 | Sigma-Aldrich | S7899-100ML | |
SureSelect custom 3-5.9 Mb library | Agilent Technologies | 5190-4831 | Custom designed mouse or human capture system, used for the capture |
SureSelect Target Enrichment Box 1 | Agilent Technologies | 5190-8645 | Used for the capture |
SureSelect Target Enrichment Kit ILM PE Full Adapter | Agilent Technologies | 931107 | Used for the capture |
T4 DNA ligase 1 U/µL | Invitrogen | 15224025 | For ligation in section 3 (ligation and decrosslink) |
T4 DNA ligase 2000000/mL | New England Biolabs | M0202T | For ligation in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation and PCR amplification) |
T4 DNA polymerase 3000 units/mL | New England Biolabs | M0203L | |
T4 PNK 10000 units/mL | New England Biolabs | M0201L | |
Tapestation 4200 instrument | Agilent Technologies | For automated electrophoresis in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation, and PCR amplification) and section 11 (Biotin pull-down and PCR amplification). Any other automated electrophoresis system is valid | |
Tapestation reagents | Agilent Technologies | 5067-5582, 5067-5583, 5067-5584, 5067-5585, | For automated electrophoresis in section 9 (dATP-tailing, adapter ligation, and PCR amplification) and section 11 (Biotin pull-down and PCR amplification). Any other automated electrophoresis system is valid |
Triton X-100 for molecular biology | PanReac AppliChem | A4975 | |
Tween 20 | Sigma-Aldrich | P9416-50ML |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionExplore More Articles
This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved