In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

يرتبط الهرمون المنبه للجريب (FSH) في مختلف الأنسجة والأعضاء الخارجية بالتسبب في أمراض متعددة. يمكن استخدام نموذج الفأر الذي تم استئصال المبيض ومعالجته ب FSH (OVF) لاستكشاف الإجراءات الخارجية ل FSH.

Abstract

أثناء الانتقال من مرحلة الإنجاب إلى المرحلة غير الإنجابية (انقطاع الطمث) ، تعاني العديد من النساء من تغيرات فسيولوجية ومرضية كبيرة ، بما في ذلك انخفاض كتلة العظام ، وزيادة نسبة الدهون في الدم ، وزيادة السمنة الحشوية. ترتفع مستويات الهرمون المنبه للجريب (FSH) أثناء فترة انقطاع الطمث. أظهرت العديد من الدراسات أن هرمون FSH في مختلف الأنسجة والأعضاء الخارجية يرتبط بالتسبب في أمراض متعددة. وبالتالي ، فإن بناء نموذج حيواني يمكن أن يساعد في دراسة التأثيرات المستقلة لهرمون FSH في الجسم الحي أمر مهم بشكل خاص. في هذه الدراسة ، تم استئصال المبيض من إناث الفئران C57BL / 6 واستكمالها بفاليرات استراديول (OVX + E2) للقضاء على تأثير محور الغدة النخامية والغدد التناسلية. تلقت الفئران OVX + E2 مذيب (N.S.) أو جرعات مختلفة من FSH المؤتلف عن طريق الحقن داخل الصفاق لإنشاء نموذج فأر (OVF) يتميز بهرمون الاستروجين المستقر نسبيا وارتفاع مستويات FSH. وهكذا ، نجحنا في إنشاء نموذج فأر تجريبي لتقليد المرحلة المبكرة من انتقال انقطاع الطمث ، والتي تتميز بارتفاع مستويات هرمون FSH في الدم. يتميز نموذج OVF بمزايا كونه مستقرا ومنخفض التكلفة وسهل التشغيل ، وهو مناسب للدراسات لاستكشاف الإجراءات الخارجية ل FSH. هنا ، نصف بروتوكولات مفصلة لنموذج OVF للماوس.

Introduction

ترتفع مستويات الهرمون المنبه للجريب (FSH) أثناء فترة انقطاع الطمث (تم تعريف مصطلح انتقال انقطاع الطمث في عام 2011 في مراحل ورشة عمل الشيخوخة الإنجابية (STRAW) + 10 نظام)1. خلال فترة انقطاع الطمث ، وهي فترة تتميز بارتفاع مستويات هرمون FSH وهرمون الاستروجين1 المستقر نسبيا ، تعاني النساء من تغيرات في الدورة الشهرية وتغيرات فسيولوجية كبيرة تشمل خلايا وأنسجة مختلفة. هذه التغييرات يمكن أن تؤثر بشكل خطير على نوعية حياة وصحة المرأة. قد يؤدي استكشاف آثار هرمون FSH إلى تحسين نوعية حياة المرأة وصحتها.

يفرز هرمون FSH من خلايا موجهة الغدد التناسلية في الغدة النخامية الأمامية وهو أمر بالغ الأهمية في التحكم في وظيفة الغدد التناسلية والتكاثر2. يتم التوسط في وظيفة هرمون FSH من خلال مستقبل الهرمون المنشط للحويصلة (FSHR)، الذي ينتمي إلى مستقبل البروتين المقترن G (GPCR)3. يتم التعبير عن FSHR بشكل عام في الغدد التناسلية ، وهي المبيض والخصية. لقد ثبت أن FSHR يتم التعبير عنه عالميا في العديد من الخلايا والأنسجة خارج الغدد التناسلية ، بما في ذلك الكبد4 ، الحصين5 ، الخلايا العظمية6 ، الخلايا الشحمية7 ، والخلايا البطانية8. كشفت الدراسات الناشئة عن إجراءات الغدد التناسلية الإضافية لهرمون FSH وأهميتها السريرية المحتملة في دسليبيدميا4 ، ومرض الزهايمر5 ، وهشاشة العظام9،10 ، وتصلب الشرايين11 ، والسمنة9 ، والسرطان12. وبالتالي ، فإن بناء نموذج حيواني يمكن أن يساعد في دراسة التأثيرات المستقلة لهرمون FSH في الجسم الحي مهم بشكل خاص في استكشاف تصرفات FSH وحدها.

في البروتوكول ، قدمنا الإجراء الخاص بإنشاء نموذج فأر مع هرمون الاستروجين المستقر نسبيا وارتفاع مستويات هرمون FSH13. يحاكي نموذج الفأر انتقال انقطاع الطمث عن طريق جراحة استئصال المبيض ثم يتم استكماله بفاليرات استراديول و FSH المؤتلف. نظرا لأن الفئران التي تم استئصال المبيض قد استكملت بالإستروجين الخارجي للحفاظ على مستويات هرمون الاستروجين المماثلة مع الفئران التي تعمل بالخداع ، كانت مستويات هرمون FSH الداخلي مستقرة بسبب ردود فعل هرمون الاستروجين في الغدة النخامية. في هذه الحالة ، يمكنه التحكم في مستويات هرمون FSH عن طريق إعطاء هرمون FSH خارجي المنشأ دون تغيير مستويات هرمون الاستروجين. وبالتالي ، يمكن لنموذج الماوس OVF استبعاد تأثير هرمون الاستروجين ومراقبة الآثار الفسيولوجية والمرضية الخارجية ل FSH. نعتقد أن الإجراء المفصل والمرئي مفيد للباحثين لإنشاء نموذج فأر OVF في مختبرهم وتطبيقه للتحقيق في التغيرات الفسيولوجية والمرضية أثناء انتقال انقطاع الطمث حسب الحاجة.

Protocol

امتثل البروتوكول التالي لجميع المبادئ التوجيهية الأخلاقية المؤسسية المتعلقة باستخدام الأبحاث وتمت الموافقة عليه من قبل لجنة أخلاقيات في مستشفى مقاطعة شاندونغ ، الصين. تم إجراء جميع عمليات التلاعب الجراحية تحت التخدير العميق ، ولم تعاني من الألم في أي مرحلة أثناء العملية.

1. التحضير قبل العملية

  1. تعقيم الصك
    1. تعقيم الأدوات الجراحية بالبخار في الأوتوكلاف (121 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة) قبل الجراحة. تحضير ما يكفي من الغرز والإبر التي يمكن التخلص منها.
  2. إعداد منصة الجراحة
    1. إجراء الجراحة في غرفة مخصصة للعمليات الجراحية. قم بتعيين مساحة مقعد لا تقل عن 60 سم × 60 سم للعملية. نظف سطح المنطقة بنسبة 75٪ كحول وقم بتغطيتها بمنشفة طبية يمكن التخلص منها ، ثم قم بتطهيرها بالأشعة فوق البنفسجية قبل 30 دقيقة (الشكل 1 أ).
  3. إعداد
    1. إيواء جميع في غرفة يتم التحكم في درجة حرارتها (20-25 درجة مئوية) مع ضوء 12 ساعة ، دورة مظلمة 12 ساعة. تأقلم أنثى الفئران C57BL / 6 البالغة من العمر 8 أسابيع مع مرفق السكن لمدة 1 أسبوع قبل الجراحة.
    2. وزن الفئران قبل الجراحة. تطبيق جميع إناث الفئران البالغة من العمر 9 أسابيع مع التخدير العام عن طريق الحقن داخل الصفاق من ثلاثي برومو إيثانول (280 ملغم/كغم)، لتحقيق عدم الألم في أي مرحلة من مراحل العملية. حقن ميلوكسيكام (2 ملغ / كغ) تحت الجلد ، حوالي 1 ساعة قبل العملية لتخفيف الألم.
    3. ضع مرهم العين لمنع جفاف القرنية أثناء الجراحة.
    4. ضع غسول إزالة الشعر على الظهر باستخدام قطعة قطن نظيفة. دع المستحضر يجلس على الماوس لمدة 3-5 دقائق ، ثم قم بإزالة الشعر باستخدام الشاش ومسحات القطن. كرر هذه الخطوة حتى تتم إزالة كل الشعر من الجزء الخلفي من الماوس.
    5. استخدم مسحات الشاش والقطن لتنظيف البشرة بنسبة 75٪ كحول. ثبت الماوس على منصة الجراحة احتياطيا باستخدام شريط مطاطي أو حبل قطني (الشكل 1 ب) وقم بتطبيق محلول اليودوفور لتنظيف الظهر.
      ملاحظة: تأكد من عمق التخدير عن طريق قرصة إصبع القدم قبل استئصال المبيض.

2. استئصال المبيض

ملاحظة: يمكن الحفاظ على ثلاثي برومو إيثانول لمدة 30 دقيقة تقريبا ، مما يضمن اكتمال الجراحة قدر الإمكان.

  1. قم بعمل شق ظهري ~ 1.0 سم طوليا من قاعدة الفخذ إلى أعلى باستخدام مشرط يمكن التخلص منه ، مع التأكد من شق الجلد واللفافة تحت الجلد فقط وتجنب قطع الصفاق الخلفي في هذا الوقت.
  2. اسحب الشق إلى اليسار ، ويمكن رؤية وسادة دهنية بيضاء. قطع ~ 0.5 سم على طول وسادة الدهون البيضاء لفضح التجويف داخل الصفاق باستخدام ملقط دقيق ومقص.
  3. بعد قطع الصفاق الخلفي ، قم بإزالة وسادة الدهون البيضاء ببطء ورفق من التجويف داخل الصفاق باستخدام ملقط صغير. بلل على الفور الأنسجة الدهنية البيضاء مع محلول ملحي معقم 0.9 ٪ خارج الشاش المنقوعة. حافظ على ترطيب الأنسجة المكشوفة دائما أثناء تواجدها خارج تجويف البطن.
  4. يتم إرفاق مادة حبيبية وردية ، وهي المبيض ، بالجزء السفلي من وسادة الدهون البيضاء (الشكل 2 أ). ترتبط المبايض بقناة رفيعة ، وهي الرحم. استخدم 5-0 خيوط قابلة للامتصاص لربط نهاية المبيض للرحم وإزالة المبيض الأيسر (الشكل 2 ب).
  5. عند إزالة المبيض ، حافظ على الأنسجة الدهنية المحيطة قدر الإمكان. تجنب الاتصال المباشر بين الأدوات الجراحية والمبيضين ومنع زرع أنسجة المبيض داخل الصفاق.
  6. ضع بعناية وسادة الدهون البيضاء مرة أخرى في تجويف داخل الصفاق. قم بإجراء خياطة متقطعة بسيطة على الصفاق الخلفي بخياطة قابلة للامتصاص 5-0 (الشكل 2C). بعد اكتمال الخيط ، قم بتنظيف أي نزيف بشاش معقم منقوع بالمحلول الملحي بنسبة 0.9٪.
  7. اسحب شق الجلد إلى اليمين وقم بإزالة المبيض الأيمن باستخدام نفس الطريقة.
  8. قم بإجراء خياطة متقطعة باستخدام 4-0 خيوط غير قابلة للامتصاص ونظف أي نزيف بشاش معقم منقوع بالمحلول الملحي بنسبة 0.9٪ (الشكل 2 د).
  9. نظف الجرح بمحلول اليودوفور بعد الانتهاء من كلتا الغرزتين. حقن المضادات الحيوية واسعة الطيف داخل الصفاق.

3. مراقبة ما بعد العملية

  1. انقل الفئران إلى بطانية درجة حرارة ثابتة 37 درجة مئوية بعد الجراحة. حتى تتمكن الفئران من التحرك بحرية ، احتفظ بالحيوانات في قفصها الفردي. لا تترك دون مراقبة حتى يستعيد وعيه الكافي للحفاظ على الاستلقاء القصي.
  2. حقن ميلوكسيكام (2 ملغ/كغ) تحت الجلد بعد 24 ساعة من العملية لتخفيف الألم.
  3. راقب الفئران يوميا للتأكد من أن الجرح الجراحي يلتئم بشكل صحيح دون وجود أي علامات على حدوث مضاعفات (تفكك).

4. مكملات استراديول

  1. إعداد الأعلاف تستكمل مع استراديول فاليرات. استخدام 2.6 ملغ بيتا استراديول 17-فاليرات تستكمل لكل 1 كجم من العلف.
  2. في 3 أيام بعد الانتهاء من الجراحة ، إطعام الفئران مع استراديول فاليرات.

5. حقن FSH

  1. تحضير محلول FSH البشري المؤتلف. قم بإذابة مسحوق FSH البشري المؤتلف للحقن بمحلول ملحي معقم بنسبة 0.9٪ إلى 100 وحدة دولية / مل.
  2. مجموعة الفئران وفقا للخطط التجريبية وإعطاء المذيبات أو جرعات مختلفة من FSH المؤتلف عن طريق الحقن داخل الصفاق لمدة 2 أسابيع. وفقا للنشاط البيولوجي ل FSH المؤتلف ، استخدم جرعة حقن FSH في الفئران المكافئة لمستوى FSH في الدم لدى النساء خلال فترة انقطاع الطمث.
    ملاحظة: بناء على علاجات مختلفة ، تم تقسيم الفئران المكملة بالإستروجين المبيض عشوائيا إلى ثلاث مجموعات ، مجموعة المذيبات (NS) التي تتلقى مذيب 100 ميكرولتر / يوم ، ومجموعة FSH (L-FSH) منخفضة الجرعة تتلقى 15 وحدة دولية / كجم من وزن الجسم يوميا ومجموعة جرعة عالية من FSH (H-FSH) تتلقى 30 وحدة دولية / كجم من وزن الجسم يوميا.

النتائج

يحاكي نموذج الماوس OVF المرحلة المبكرة من انتقال انقطاع الطمث مع هرمون الاستروجين المستقر نسبيا وارتفاع مستويات هرمون FSH13. أولا ، بالنسبة لجراحة إزالة المبيض ، تم إعطاء إناث الفئران C57BL / 6 البالغة من العمر 9 أسابيع تخديرا عاما وخضعت إما لعملية وهمية (شام) أو استئصال المبيض الثنائي (OVX). نظرا لأن صور اللطاخة للخلايا الملطخة Papanicolaou حددت بوضوح مراحل proestrus و estrus و metestrus و diestrus من الدورة الشحمية ، فقدت الفئران OVX الدورة الشحمية (الشكل 3 أ) ، وأظهرت طريقة ELISA انخفاضا كبيرا في مستويات استراديول المصل (E2) (الشكل 3 ب). ثانيا ، تم استكمال الفئران OVX مع بيتا استراديول 17-فاليرات (OVX + E2) للحفاظ على هرمون الاستروجين في الدم في نفس مستوى مجموعة الشام. ثالثا ، تلقت الفئران OVX + E2 مذيب (N.S.) أو جرعات مختلفة من FSH المؤتلف عن طريق الحقن داخل الصفاق لإنشاء نموذج فأر (OVF) يتميز بهرمون الاستروجين المستقر نسبيا وارتفاع مستويات هرمون FSH (الشكل 4).

figure-results-1088
الشكل 1. البيئة الجراحية وموقف الفأر. (أ) مساحة مقعد لا تقل عن 60 سم × 60 سم للعملية. قم بتنظيف سطح المنطقة بنسبة 75٪ كحول وقم بتغطيتها بمنشفة طبية يمكن التخلص منها ، ثم قم بتطهيرها بالأشعة فوق البنفسجية قبل 30 دقيقة. (ب) ثبت الماوس على منصة الجراحة احتياطيا باستخدام شريط مطاطي أو حبل قطني. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-1755
الشكل 2. الخطوات الرئيسية للعملية الجراحية. أ: وضع المبيض، ب: استئصال المبيض، ج: خياطة الصفاق، د: شق الجلد بخياطة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2279
الشكل 3. علم الخلايا المهبلية. يمثل علم الخلايا المهبلية مراحل الدورة الشهوانية والإستروجين الداخلي في الفئران التي تم استئصال المبيض (OVX) وتلك التي تعمل بشكل وهمي (الشام ؛ ن = 12 لمجموعة الشام ؛ ن = 10 لكل مجموعات OVX). (أ) يمثل علم الخلايا المهبلية مراحل الدورة الشهوانية وفقا للوجود النسبي لكريات الدم البيضاء، والخلايا الطلائية المتقرنة، والخلايا الطلائية ذات النواة. تشمل مراحل الشبق الشحمي ، غلبة الخلايا الظهارية النواة. شبق ، غلبة الخلايا المتقرنة منزوعة النواة ؛ metestrus ، وجود الكريات البيض ، والخلايا الظهارية المتقرنة والنواة ؛ Diestrus ، غلبة الكريات البيض. شريط المقياس = 100 ميكرومتر. (ب) الإستروجين الداخلي في الفئران التي تم استئصال المبيض (OVX) والفئران التي تعمل بشكل زائف (الشام). يتم عرض البيانات كمتوسط ± SEM. يتم استخدام اختبار t للطالب للتحليل الإحصائي. ص< 0.001. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-3454
الشكل 4. نموذج OVF ومستويات هرمون المصل. (أ) نموذج OVF للمخطط الانسيابي. (ب) تحليل ELISA لتركيزات هرمون الاستروجين في الدم (E2) وتركيز FSH. يتم تمثيل البيانات كمتوسط ± SEM. تم استخدام ANOVA أحادي الاتجاه للتحليل الإحصائي. * ص< 0.05 و ** ص< 0.01. تم تعديل هذا الرقم من4. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Discussion

أثناء الانتقال من مرحلة الإنجاب إلى المرحلة غير الإنجابية (انقطاع الطمث) ، تعاني العديد من النساء من تغيرات فسيولوجية ومرضية كبيرة. ترتفع مستويات هرمون FSH أثناء فترة انقطاع الطمث1. كشفت الدراسات الناشئة أن هرمون FSH في مختلف الأنسجة والأعضاء خارج الغدد التناسلية أمر بالغ الأهمية في التسبب في أمراض متعددة ، بما في ذلك دسليبيدميا4 ، ومرض الزهايمر5 ، وهشاشة العظام9،10 ، وتصلب الشرايين11 ، والسمنة9 ، والسرطان12. وبالتالي ، فإن بناء نموذج حيواني يمكن أن يساعد في دراسة التأثيرات المستقلة لهرمون FSH في الجسم الحي أمر مهم بشكل خاص. يحاكي نموذج الماوس OVF المرحلة المبكرة من انتقال انقطاع الطمث مع هرمون الاستروجين المستقر نسبيا وارتفاع مستويات هرمون FSH وهو مناسب بشكل خاص للدراسات لاستكشاف الإجراءات الخارجية لهرمون FSH.

في هذه الطريقة ، تم إجراء استئصال المبيض باستخدام شق ظهري واحد ، حوالي 1 سم من قاعدة الفخذ إلى أعلى (الشكل 1 ب). تم قطع الجلد تقريبا مع العضلات الظهرية باستخدام مقص تشريح حاد ، وبالتالي تم الوصول إلى التجويف البريتوني. بعد العملية ، لم يتطلب شق العضلات أي خياطة ، وتم إغلاق جرح الجلد بشكل ثنائي بخياطة واحدة (الشكل 2). العملية أسهل تقنيا وأقل استهلاكا للوقت وأقل ضررا لإناث الفئران مقارنة بالطرق الأخرى المستخدمة.

بعض التفاصيل التي يجب الاهتمام بها أثناء إجراء الجراحة. أولا ، يجب أن تبقى جميع العمليات الجراحية نظيفة ومعقمة قدر الإمكان لتقليل خطر الإصابة بالعدوى بعد العملية الجراحية. ثانيا ، نظرا لأن أنسجة المبيض هشة للغاية ، لا يمكن للأدوات الجراحية الاتصال بالمبايض مباشرة أثناء استئصال المبيض ، لتجنب الزرع داخل الصفاق. ثالثا ، بعد الجراحة ، تم نقل الفئران إلى بطانية درجة حرارة ثابتة 37 درجة مئوية أثناء التعافي لمنع انخفاض حرارة الجسم بعد العملية الجراحية مما يؤدي إلى الوفاة.

أثبتت دراسة سابقة أن هرمون الاستروجين الداخلي يتم تصنيعه في خلايا ثيكا المبيض للنساء قبل انقطاع الطمث أو الخلايا الدهنية الدهنية للثدي لدى النساء بعد انقطاع الطمث وبكميات صغيرة في الأنسجة المحيطية14. انخفض هرمون الاستروجين في الدم بشكل حاد للفئران التي تم استئصال المبيض ولكن لا يمكن القضاء عليها (الشكل 3 ب). ومع ذلك ، فإن هرمون الاستروجين الداخلي المنشأ الذي يتم تصنيعه في الأنسجة الخارجية لا يؤثر على استقرار مستويات هرمون الاستروجين في نموذج OVF (الشكل 4B).

هناك بعض القيود في نموذج OVF. بمجرد أن تكون العملية الجراحية غير دقيقة وتؤدي إلى زرع المبيض داخل الصفاق ، فقد يؤدي ذلك إلى فشل النموذج. في هذه الحالة ، لا ينخفض هرمون الاستروجين في الدم بشكل حاد ويتقلب خلال مراحل مختلفة من الدورة الشحمية. بعد الإدارة الخارجية للإستروجين و FSH ، يستغرق حوالي 1 أسبوع حتى يصل الجسم إلى التوازن. وبالتالي ، فإن التغيرات المرضية لنموذج OVF التي تحدث في غضون 1 أسبوع لا يمكن أن تشير إلى آثار FSH.

في الختام ، يتميز نموذج OVF بمزايا كونه مستقرا ومنخفض التكلفة وسهل التشغيل. يمكن ملاحظة التأثيرات الجهازية لهرمون FSH عالي المستوى بعد الحقن داخل الصفاق ل FSH. أي أن نموذج OVF مناسب للدراسات التي تستكشف الإجراءات الخارجية ل FSH. ومع ذلك ، فإن متطلبات الجراحة النموذجية وإجراءات الحقن داخل الصفاق مرتفعة للغاية. إذا كان التمويل كافيا ، فإن نماذج خروج المغلوب المحددة هي الخيار الأفضل.

Disclosures

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

نود أن نشكر مختبر في مستشفى مقاطعة شاندونغ على الدعم الفني. تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (NSFC 82101645) ، ومؤسسة العلوم الطبيعية بمقاطعة شاندونغ ، الصين (ZR2020QH088) ، وخطة دعم العلوم والتكنولوجيا لابتكار الشباب في الكليات في مقاطعة شاندونغ (2021KJ051).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
beta-estradiol 17-valerateMacklinE829824
Estradiol sensitive ELISADemeditecDE4399
Hematoxylin Staining SolutionBeyotimeC0107
MeloxicamAladdinM129228
recombinant human Follicle-stimulating hormoneMerck SeronoN19Z8803G
TribromoethanolSigmaT48402Aliphatic name: 2,2,2-Tribromoethanol

References

  1. Harlow, S. D., et al. Executive summary of the Stages of Reproductive Aging Workshop + 10: addressing the unfinished agenda of staging reproductive aging. Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 97 (4), 1159-1168 (2012).
  2. Ulloa-Aguirre, A., Zariñán, T. The Follitropin Receptor: Matching Structure and Function. Molecular Pharmacology. 90 (5), 596-608 (2016).
  3. Franks, S., Stark, J., Hardy, K. Follicle dynamics and anovulation in polycystic ovary syndrome. Human Reproduction Update. 14 (4), 367-378 (2008).
  4. Guo, Y., et al. Blocking FSH inhibits hepatic cholesterol biosynthesis and reduces serum cholesterol. Cell Research. 29 (2), 151-166 (2019).
  5. Xiong, J., et al. FSH blockade improves cognition in mice with Alzheimer's disease. Nature. 603 (7901), 470-476 (2022).
  6. Sun, L., et al. FSH Directly Regulates Bone Mass. Cell. 125 (2), 247-260 (2006).
  7. Liu, X. M., et al. FSH regulates fat accumulation and redistribution in aging through the Gαi/Ca(2+)/CREB pathway. Aging Cell. 14 (3), 409-420 (2015).
  8. Maclellan, R. A., et al. Expression of Follicle-Stimulating Hormone Receptor in Vascular Anomalies. Plastic and Reconstructive Surgery. 133 (3), 344e-351en (2014).
  9. Liu, P., et al. Blocking FSH induces thermogenic adipose tissue and reduces body fat. Nature. 546 (7656), 107-112 (2017).
  10. Ji, Y., et al. Epitope-specific monoclonal antibodies to FSHβ increase bone mass. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (9), 2192-2197 (2018).
  11. El Khoudary, S. R., et al. Trajectories of estradiol and follicle-stimulating hormone over the menopause transition and early markers of atherosclerosis after menopause. European Journal of Preventive Cardiology. 23 (7), 694-703 (2016).
  12. Radu, A., et al. Expression of Follicle-Stimulating Hormone Receptor in Tumor Blood Vessels. The New England Journal of Medicine. 363 (17), 1621-1630 (2010).
  13. Sowers, M. R., et al. Endogenous hormones and bone turnover markers in pre- and perimenopausal women: SWAN. Osteoporosis International. 14 (3), 191-197 (2003).
  14. Kristensen, V. N., Kure, E. H., Erikstein, B., Harada, N., Børresen-Dale, A. L. Genetic susceptibility and environmental estrogen-like compounds. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 482 (1), 77-82 (2001).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

C57BL 6 FSH

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved