A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.
وصفنا إجراء سهلا لتكملة الكروموسومات أحادية النسخة لجين مضخة التدفق باستخدام نظام تعبير صغير قائم على Tn7 في سلالة مهندسة تعاني من نقص التدفق من Acinetobacter baumannii. تسمح هذه الأداة الجينية الدقيقة بالتعبير الجيني الخاضع للرقابة ، وهو أمر أساسي لتوصيف مضخات التدفق في مسببات الأمراض المقاومة للأدوية المتعددة.
يتم التعرف على Acinetobacter baumannii كممرض صعب سالبة الجرام بسبب مقاومته الواسعة للمضادات الحيوية. من الأهمية بمكان فهم الآليات الكامنة وراء هذه المقاومة لتصميم خيارات علاجية جديدة وفعالة. لسوء الحظ ، فإن قدرتنا على التحقيق في هذه الآليات في A. baumannii يعوقها ندرة أدوات التلاعب الجيني المناسبة. هنا ، نصف طرق استخدام نظام قائم على الكروموسومات المصغرة Tn7 لتحقيق التعبير الجيني أحادي النسخة في سلالة A. baumannii التي تفتقر إلى آليات التدفق الوظيفية من نوع RND. يعد إدخال نسخة واحدة وتعبير مضخة التدفق المستحث مفيدا جدا ، حيث أن وجود operons تدفق RND على البلازميدات ذات العدد العالي غالبا ما تتحمله الخلايا البكتيرية بشكل سيئ. علاوة على ذلك ، فإن دمج متجهات التعبير الصغيرة Tn7 المؤتلفة في كروموسوم مضيف بديل A. baumannii مع زيادة حساسية التدفق يساعد على التحايل على التداخل من مضخات التدفق الأخرى. هذا النظام ذو قيمة ليس فقط للتحقيق في مضخات التدفق البكتيري غير المميزة ولكن أيضا لتقييم فعالية المثبطات المحتملة التي تستهدف هذه المضخات.
Acinetobacter baumannii هو أحد مسببات الأمراض ذات الأولوية القصوى لمنظمة الصحة العالمية نظرا لمقاومته الشاملة لجميع فئات المضادات الحيوية1. إنه ممرض انتهازي يؤثر في الغالب على الأشخاص في المستشفى أو المصابين أو الذين يعانون من نقص المناعة. A. baumannii يتهرب إلى حد كبير من المضادات الحيوية عن طريق مضخات التدفق ، وأكثرها صلة هي عائلة مصدري قسم المقاومة (RND)2. إن فهم كيفية عمل مضخات التدفق هذه ميكانيكيا سيسمح للمرء بتطوير خيارات علاجية مستهدفة.
إحدى الطرق الشائعة التي يمكن من خلالها تمييز العمليات الخلوية على وجه التحديد هي من خلال التلاعب الجيني. ومع ذلك ، فإن الأدوا....
1. التحضير التجريبي
يستغرق إجراء إدخال الكروموسومات 2 ساعة فقط إجمالا خلال 3 أيام لرؤية مستعمرات النتيجة تنمو على صفيحة أجار انتقائية (الشكل 1A-C). يعتمد العدد المتوقع للمستعمرات على لوحة التحويل على الإجهاد: يمكن للمرء أن يرى 20-30 أو حتى مئات المستعمرات حيث أن إدخال Tn7 في مواقع <.......
على الرغم من أن هذا الإجراء الخاص بالإدخال الكروموسومي لنظام التعبير الجيني أحادي النسخة القابل للحث في A. baumannii واضح تقنيا وليس كثيف العمالة ، إلا أن هناك بعض الخطوات المهمة التي يجب التأكيد عليها. أولا ، يجب أن يتم تحضير الخلايا المختصة على الجليد قدر الإمكان حيث تصبح الخلايا هشة أثن.......
ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.
تم دعم هذا العمل من خلال منحة اكتشاف من مجلس العلوم الطبيعية والهندسة في كندا إلى AK. يتم إنشاء المخططات المستخدمة في الأشكال باستخدام BioRender.com.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR tube | VWR | 20170-012 | For colony boil preparations and PCR reactions |
1.5 mL microfuge tubes | Sarstedt | 72-690-301 | General use |
13-mL culture tubes, Pyrex | Fisher | 14-957K | Liquid culture vessels |
6x DNA loading buffer | Froggabio | LD010 | Agarose gel electrophoresis sample loading dye |
Acetic acid, glacial | Fisher | 351271-212 | Agarose gel running buffer component |
Agar | Bioshop | AGR003 | Solid growth media |
Agarose | BioBasic | D0012 | Electrophoretic separation of PCR reaction products; used at a concentration of 0.8–2% |
Agarose gel electrophoresis unit | Fisher | 29-237-54 | Agarose gel electrophoresis; separation of PCR reaction products |
Carbenicillin | Fisher | 50841231 | Selective media |
Culture tube closures | Fisher | 13-684-138 | Stainless steel closure for 13-mL culture tubes |
Deoxynucleotide triphosphate (dNTP) set | Biobasic | DD0058 | PCR reaction component; supplied as 100 mM each dATP, dCTP, dGTP, dTTP; mixed and diluted for 10 mM each dNTP |
Dry bath/block heater | Fisher | 88860023 | Isotemp digital dry bath for boil preparations |
Electroporation cuvettes | VWR | 89047-208 | 2 mm electroporation cuvettes with round cap |
Electroporator | Cole Parmer | 940000009 | 110 VAC, 60 Hz electroporator |
Ethidium bromide | Fisher | BP102-1 | Visualization of PCR reaction products and DNA marker in agarose gel |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR | CA-EM4050 | Agarose gel running buffer component |
Gentamicin | Biobasic | GB0217 | For the preparation of selective media |
Glycerol | Fisher | G33 | Preparation of bacterial stocks for long-term storage in an ultra-low freezer |
Incubator (shaking) | New Brunswick Scientific | M1352-0000 | Excella E24 Incubator Shaker for liquid culture growth |
Incubator (static) | Fisher | 11-690-550D | Isotemp Incubator Oven Model 550D for solid (LB agar) culture growth |
Inoculation loop | Sarstedt | 86.1562.050 | Streaking colonies onto agar plates |
Inoculation spreader | Sarstedt | 86.1569.005 | Spreading of culture onto agar plates |
Lysogeny broth (LB) broth, Lennox | Fisher | BP1427 | Liquid growth media (20 g/L: 5 g/L sodium chloride, 10 g/L tryptone, 5 g/L yeast extract) |
Microfuge | Fisher | 75002431 | Sorvall Legend Micro 17 for centrifugation of samples |
Mini-centrifuge | Fisher | S67601B | Centrifugation of 0.2 mL PCR tubes |
Petri dishes | SPL Life Sciences | 10090 | For solid growth media (agar plates): 90 x 15 mm |
Pipettes | Mandel | Various | Gilson single channel pipettes (P10, P20, P200, P1000) |
Power supply | Biorad | 1645050 | PowerPac Basic power supply for electrophoresis |
Primers | IDT | NA | PCR reaction component; specific to gene of interest; prepared at 100 μM as directed on the product specification sheet |
Sucrose | BioBasic | SB0498 | For the preparation of counterselective media for removal of the pFLP2ab plasmid from transformed A. baumannii |
Taq DNA polymerase | FroggaBio | T-500 | PCR reaction component; polymerase supplied with a 10x buffer |
Thermal cycler | Biorad | 1861096 | Model T100 for PCR |
Toothpicks | Fisher | S24559 | For patching colonies onto agar plates |
Trizma base | Sigma | T1503 | Agarose gel running buffer component |
Ultrapure water | Millipore Sigma | ZLXLSD51040 | MilliQ water purification system: ultra pure water for media and solution preparation, and cell washing |
Wide range DNA marker | Biobasic | M103R-2 | Size determination of PCR products on an agarose gel |
Wooden inoculating sticks | Fisher | 29-801-02 | Inoculating cultures with colonies from agar plates |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionExplore More Articles
This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved