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  • 摘要
  • 摘要
  • 研究方案
  • 讨论
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  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

协议牛痘感染的HeLa细胞和宿主和病毒基因的表达分析。

摘要

家庭

研究方案

第1部分:从RNA合成cDNA

  1. 使用Ambion公司氨基烯丙基MessageAmp II套件之前,建议量的100%的乙醇添加到洗缓冲区。
  2. 在PCR反应管中,加之间100ng的总RNA,以oligo(dT)引物的T7加入1μl5μg。把音量无核酸酶水至12μl。
  3. 孵育样品在70℃,在热循环10分钟。
  4. 删除从70℃,短暂离心的RNA样品。置于冰上。
  5. 准备的第一链合成预混,并保持在室温(10%的移液错误的盘盈)(见表 1)。
  6. 轻轻吸预混或轻弹混合,然后短暂离心。
  7. 将主结构8μl转移到每个RNA样品。混合移液器向上和向下的3-4倍。
  8. 在42 ° C孵育2小时在热循环。
  9. 离心机样本简要置于冰上。立即进行下一步的双链DNA合成。
  10. 准备在冰第二链的合成大师的组合(10%的移液错误的盘盈)(表 2)
  11. 轻轻吸预混或轻弹混合,然后短暂离心。
  12. 每个样品转移80μl,轻轻混匀移液器向上和向下的3-4倍。
  13. 在16℃孵育2小时在热循环。
  14. 经过2个小时的潜伏期,进行cDNA的清理步骤,或立即冻结在-20 ° C。

第2部分:双链cDNA清理

  1. 从冰箱中取出的cDNA纯,并允许它在使用前30分钟平衡至室温。摇动瓶子在使用前要充分重悬磁cDNA的约束力珠。
  2. 分装成1.5ml离心管,并在50-60 ° C孵育至少10分钟,在过去的2小时潜伏期无核酸酶水。
  3. 每个样品添加纯180μl的cDNA,并彻底混合向上和向下吹打。样品转移到一个96孔的圆底板。
  4. 继续混合样品至少2分钟,轻轻晃动轨道摇床板。
  5. 移动板磁性的立场,以捕获磁珠。留在板约6分钟的立场,或直到混合物变得透明和结合珠颗粒。
  6. 小心吸上清液真空抽吸,而不会干扰磁珠。另外,用移液器小心取出上清,弃上清。
  7. 删除从磁立场板。
  8. 加入150μlcDNA的洗涤缓冲液,每孔摇动1分钟,速度适中的轨道摇床板。珠不会分散在这一步,由于洗涤缓冲液的表面张力低。
  9. 移动板磁性的立场,以捕获磁珠。
  10. 小心吸上清液真空抽吸,而不会干扰磁珠。另外,用移液器小心取出上清,弃上清。
  11. 删除从磁立场板。
  12. 重复与150μlcDNA的洗涤缓冲液洗2 的时间。
  13. 之后的第2 洗,干燥摇晃以最快的速度为2分钟轨道摇床板的珠子。不要overdry!
  14. 每个样品加入18μl预热无核酸酶水洗脱珠的cDNA。
  15. 大力动摇盘3分钟轨道摇床,然后检查,以确保磁珠完全散去。如果没有,继续摇晃。
  16. 一旦磁珠完全散去,移动板磁性的立场,以捕获磁珠。
  17. 小心地转移到一个新的PCR板(或PCR管)洗脱的cDNA(〜16μl)。
  18. 直接进入下一步,或冻结在-20 ° C的cDNA

第3部分: 体外转录(IVT)

  1. 准备在室温下的IVT 预混(见表3
  2. 轻轻吸液管硕士的组合或轻弹混合,并短暂离心​​。
  3. 每个样品中加入24μl,轻轻混匀移液器向上和向下的3-4倍。
  4. 在37 ° C孵育14小时的热循环,然后保持在4 ° C,直到为下一步做好准备。

第4部分:ARNA干净后IVT

  1. 旋涡RNA结合珠简要地获取,使用前均匀混合。
  2. (见表4)这是可以做到提前准备ARNA绑定混合,在室温下-可以在室温下储存长达一个星期的准备约束力混合。
  3. 由涡旋混合。
  4. 分装成1.5ml离心管,并在50-60℃孵育至少10分钟的ARNA洗脱缓冲液。
  5. 添加ARNA约束力混合70μl每个样品中,拌匀移液器向上和向下的3-4倍。
  6. 样品PCR板转移到一个96孔的圆底板。
  7. 100%异丙醇每个样品中加入50μL拌匀移液器向上和向下的3-4倍。
  8. 轻轻摇动至少2分钟,轨道摇床板,彻底混合样品。
  9. 移动板磁性的立场,以捕获磁珠。离开盘上的立场,直到混合物变得透明和约束力珠颗粒。
  10. 小心吸上清液真空抽吸,而不会干扰磁珠。另外,用移液器小心取出上清,弃上清。
  11. 删除从磁立场板。
  12. 加入100μLARNA每口井的清洗液,摇动1分钟,速度适中的轨道摇床板。珠可能无法完全分散在这一步。
  13. 移动板磁性的立场,以捕获磁珠。
  14. 小心吸上清液真空抽吸,而不会干扰磁珠。另外,用移液器小心取出上清,弃上清。
  15. 删除从磁立场板。
  16. 重复100μLARNA清洗液洗了第二
  17. 之后的第2 洗,干燥摇晃以最快的速度为1分钟的轨道摇床板的珠子。不要overdry的样品!
  18. 每个样品加入40μl预热ARNA洗脱液洗脱珠ARNA。
  19. 大力动摇盘3分钟轨道摇床,然后检查,以确保磁珠完全散去。如果没有,继续摇晃。
  20. 一旦磁珠完全散去,移动板磁性的立场,以捕获磁珠。上清包含清理氨基烯丙基纳入ARNA。
  21. 洗脱ARNA小心地转移到一个新的PCR板(或PCR管)。
  22. (可选步骤)检查上NanoDrop分光光度计测量1.5μlRNA浓度的样品。
  23. 立即继续到下一个步骤,或存放于-80℃的ARNA ° C。

表1:cDNA的第一链合成预混

试剂 金额为1反应
10X第一链缓冲 2μL
dNTP混合液 4μL
核糖核酸酶抑制因子 1μL
阵列脚本 1μL

表2:cDNA的第二链合成预混

试剂 金额为1反应
核酸免费水 63μL
10X第二链缓冲 10μL
dNTP混合液 4μL
DNA聚合酶 2μL
核糖核酸酶H 1μL

表3:IVT中的master mix

试剂 金额为1反应
aaUTP解决方案(75毫米) 2μL
ATP,CTP,GTP的组合(25毫米) 12μL
T7 UTP解决方案(75毫米) 2μL
T7 10X反应缓冲液 4μL
T7酶混合物 4μL

表4:ARNA绑定混合

试剂 金额为1反应
核糖核酸*装订珠 10μL
珠再悬浮解决方案* 4μL
100%的异丙醇** 6μL
ARNA绑定缓冲液 50μL

*混合RNA结合珠与珠再悬浮溶液。
**添加异丙醇和拌匀之前加入ARNA结合缓冲液。

讨论

关键步骤

一个放大的第二轮,是不是表示已经观察到数组中的数据的偏差。仔细搅拌在每个酶一步( 第一第二链cDNA合成,IVT),取得了良好的扩增产量的关键,是在适当的温度孵化每个酶一步。一个可调节的热盖的PCR基因扩增仪是首选 - 甚至偏差,在IVT中为2-3度,空气杂交烘箱或水浴杂交小,可以显着影响产量的扩增产物。

应用程序/意?...

披露声明

The authors have nothing to disclose.

致谢

怀特黑德研究所的研究员基金

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Amino Allyl MessageAmp II aRNA amplification kitReagentApplied BiosystemsAM1753For 20 reactions
Amino Allyl MessageAmp II aRNA amplification kitReagentApplied BiosystemsAM1821For 100 reactions, in a 96-well format
NanoDrop ND-1000 UV-VIS spectrophotometerOtherNanoDropND-1000Or equivalent spectrophotometer

参考文献

  1. Rubins, K. H., Hensley, L. E., Bell, G. W., Wang, C., Lefkowitz, E. J., Brown, P. O., Relman, D. A. Comparative analysis of viral gene expression programs during poxvirus infection: a transcriptional map of the vaccinia and monkeypox genomes. PLoS ONE. 3 (7), e2628-e2628 (2008).
  2. Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. Kinetic analysis of a complete poxvirus transcriptome reveals an immediate-early class of genes. Proc. Natl. Acad. Sci. 105 (6), 2140-2145 (2008).
  3. Satheshkumar, P. S., Moss, B. Poxvirus transcriptome analysis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E62-E62 (2008).
  4. Assarsson, E., Greenbaum, J. A., Sundström, M., Schaffer, L., Hammond, J. A., Pasquetto, V., Oseroff, C., Hendrickson, R. C., Lefkowitz, E. J., Tscharke, D. C., Sidney, J., Grey, H. M., Head, S. R., Peters, B., Sette, A. A. Reply to Satheshkumar and Moss: Poxvirus transcriptome analysis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, E63-E64 (2008).
  5. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Muñoz, M., Harshman, K., Esteban, M. Cellular gene expression survey of vaccinia virus infection of human HeLa cells. J Virol. 77 (11), 6493-6506 (2003).
  6. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Conde, R., Pascual-Montano, A., Harshman, K., Esteban, M. Microarray analysis reveals characteristic changes of host cell gene expression in response to attenuated modified vaccinia virus Ankara infection of human HeLa cells. J Virol. 78 (11), 5820-5824 (2004).
  7. Guerra, S., López-Fernández, L. A., Pascual-Montano, A., Nájera, J. L., Zaballos, A., Esteban, M. Host response to the attenuated poxvirus vector NYVAC: upregulation of apoptotic genes and NF-kappaB-responsive genes in infected HeLa cells. J Virol. 80 (2), 985-998 (2006).
  8. Guerra, S., Nájera, J. L., González, J. M., López-Fernández, L. A., Climent, N., Gatell, J. M., Gallart, T., Esteban, M. Distinct gene expression profiling after infection of immature human monocyte-derived dendritic cells by the attenuated poxvirus vectors MVA and NYVAC. 81 (16), 8707-8721 (2007).

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