在体内的器官型小鼠视网膜Wholemount文化

摘要

此视频文章演示器官视网膜wholemount文化和cytospin一个外生的诱导效应分析程序的建立。器官型视网膜wholemount文化模仿在体内情况，同时规避经典的小鼠动物模型的缺点，大大促进了实验操作的小鼠视网膜的无障碍。

摘要

消融基因动物模型分析的目标是招收特定视网膜基因功能的经典战略。然而，转基因，基因敲除小鼠模型的视网膜特定的或有条件的往往显示早期的杀伤力或遭受严重畸形，防止超越胚胎或产后早期阶段的分析。

原代细胞培养是一种替代，以探讨外源重组的因素，在受控环境中的基因或siRNA介导的基因敲除表达的影响。游离细胞培养已减少，到达靶细胞的内源性信号的优势，从而促进确定触发后药理操纵的外生影响。但是，重要的细胞间的相互作用是最初破坏酶消化或机械分离，即使重新^聚合 1 retinospheroid文化。

相比之下，器官视网膜wholemount文化提供系统在体内的情况接近的生理与神经元的相互作用和连接仍然^保留 2-5 。

在这个视频文章中，我们提供了一步一步的示范（1）建立体内器官包括视网膜清扫胚胎，产后和成年鼠的眼睛（2）进行分析的分离和cytospin神经过程的特殊性wholemount文化例如器官wholemounts视网膜细胞凋亡和细胞增殖，培养后的外源重组的因素存在。

研究方案

所有的设备和试剂必须购买无菌或需要加热或蒸汽消毒或用70％乙醇消毒。

作者状态，对动物的实验是根据欧洲共同体理事会指令（86/609/EEC），美国国立卫生研究院的机构动物所规定的实验程序和法规的动物护理和使用准则保养和使用委员会（IACUC）在杜伊斯堡 - 埃森大学（德国）。

第1部分：不同发育阶段的小鼠的眼睛剜除

剜除的胚胎眼睛

1. 一次怀孕交配设立和指定的女性交配检测阴道塞的一天上午妊娠0天。
2. 女性怀孕时，胚胎的发展已达到了预期的阶段（这里是：胚胎一天（五）15）和^蜡板6固定颈椎脱位处死。
3. 腹壁蘸70％乙醇，沿中线切开皮瓣是固定的横向引脚^6。
4. uterusses是从腹部，用冷PBS ⁶分离并转移到烧杯中删除。
5. 胚胎分离，转移到培养皿中，子宫壁和胚胎膜由使用镊子⁶小心删除。
6. 胚胎死于斩首。
7. 摘除眼睛是被罚款，弯钳的使用，“剥皮”的眼睛从眼窝。

剜除术，产后和成人的眼睛

1. 年轻的幼崽被杀害断头，年龄较大的幼崽和成人颈椎脱位。
2. P15产后阶段，要机械地使用镊子打开和扩大两个带弹簧剪刀眼睑横向削减的时间点时，小鼠睁开眼睛，眼睛开衩。
3. 眼睛被摘除弯钳的帮助下，施加压力的轨道。

注：在出生后第2天，眶骨软骨，重要的是不适用的压力太大，而试图消除眼睛。
相比之下，在成年小鼠，眶骨是坚定的。因此，为了enucleate的眼睛，它是足够的申请，恕不提前扩大眼开衩对轨道的压力。

第2部分：胚胎，产后和成年鼠的视网膜的解剖

剖析视网膜

1. 眼睛是放置在一个小的Petri菜用无菌PBS和周围的眼睛层下解剖镜下删除。
2. 为了消除外眼层，在产​​后阶段，成人的眼睛，视神经已被切断钳由春天的剪刀或挤压关闭的帮助下，尽量接近尽可能的基础。
3. 转动眼球，使视神经原先居住的孔的背面朝向您。输入之间的视网膜和视网膜色素上皮细胞与两个非常精细的视神经侵入眼层的地点钳的技巧空间。
   
   注：一般情况下，色素上皮细胞可以很容易地确定深色。这种色素层可能在一些小鼠突变株 - 尤其是在白化动物 - 然而，没有着色，因而可能不容易被检测到。
4. 通过仔细地向两侧撕裂两个钳，删除附加脉络膜膜和巩膜色素上皮细胞。
5. 剥离层角膜水平，然后打开眼罩，镜头一侧，消除色素上皮，脉络膜膜和巩膜角膜，而其余的视网膜杯其他镊子。
6. 小镜头掌握玻璃体和钳撕裂的同时，保持第二镊子视网膜wholemount。
   
   注：解剖胚胎的眼睛时，请务必彻底清除玻璃体下方的三角形，帐篷状毛细血管丛玻璃体。
   
   在成人眼，玻璃体需要双方在把握和护理钳提示应采取不捅破玻璃体，其内容是粘性和支镊子，阻碍了其去除。
7. 器官wholemount文化的视网膜的杯子收集在一个96孔的板含有200μL贝科改良Eagle培养基（见下文）。

注：个人的视网膜之间的清扫，保持96孔收集板含有培养基中，培养基的pH值在孵化器是由_碳酸盐系统通过触发的CO 2。

第3部分：小鼠器官视网膜wholemount文化

1. 准备中/加权7.8克贝科的修改鹰的营养混合物的F - 12火腿（DMEM）和碳酸氢钠_30.6克MiIliQ水都溶解在500毫升的文化。调整pH值至7.15。引擎盖下添加50毫克的apo - transferin，50μLputrescin（股票：60mg/ml），和2.5毫升的庆大霉素（200毫米），50μL亚硒酸钠（股票：：52μg/ml），孕酮（60μg/ml股票）。混合通过一个瓶子的顶部过滤器和过滤。使用前立即加入每毫升培养液中加入10μl谷氨酰胺（200毫米）。
   
   注：血清胰岛素无介质可以被保存在4 ° C至2周，并诱导细胞凋亡的实验中使用的，因为没有胰岛素抵消的影响。如果需要超过24小时潜伏期较长的wholemounts将不会评估和细胞死亡率，血清胰岛素（如小牛血清; FCS）或补充应补充，以提高生存率。
2. 开始之前的文化，视网膜wholemounts预孵育15分钟在37 ° C与200μL温，含有0.5mg/ml的透明质酸酶预消化包含内部和外部的限制并购LLER神经胶质细胞的细胞膜的透明质酸酶的酸碱平衡的DMEM细胞，促进外源物质的渗透。
3. 视网膜被转移到24孔板2毫升贝科化学定义的改良Eagle培养基几个尽可能和作为器官wholemounts培养的透明质酸。
   
   注：对于转让的视网膜，使用1毫升吸管和切割枪头几毫米，扩大开放。对于胚胎的眼睛，200μL枪头就足够了。切割边缘应理顺第二枪头插入和扭曲。
   24-48小时的短期文化，所有的步骤都可以在替补席上，但如果对文化的污染是一个问题，一个引擎盖下的工作。
4. 文化是保持在37 ° C 5％的CO ₂气氛中为24 - 48小时，如药物治疗与重组因素。

第4部分：解离培养的视网膜wholemounts

1. 所需的培养时间后，视网膜被收集在圆底2毫升的Eppendorf管含850μLPBS和50μL牛血清白蛋白（BSA; 30毫克/毫升）。
2. Eppendorf管与视网膜放置到一个加热块加热至37 ° C。
3. 每个Eppendorf管中加入25μl的胶原酶（200 U /毫升）和25μL透明质酸酶（20mg/ml），并开始解离成单细胞悬液3张通行证通过硅化巴斯德吸管视网膜。
4. 加入10μL胰蛋白酶（1mg/ml的），等待3-5分钟，然后慢慢地吸液管的3-5倍，并与硅化巴斯德吸管机械地分解组织。
5. 添加10μLDNA酶I（5mg/ml），再等待3-5分钟，然后慢慢的吸液管的3-5倍和硅化巴斯德吸管。
   
   注：酶解培养时间各不相同，取决​​于眼睛和发育阶段的大小，分别。检查通过向上和向下轻轻吹打组织酶消化阶段。
6. 如果细胞悬液现在不是同质，但仍然包含了主要的细胞聚集，添加额外的10μL胰蛋白酶和10μLDNA酶一
7. 当细胞悬液是同质的，停止消化的组织是由另外10μLEDTA（0.5米），Eppendorf管加热器和细胞悬浮液中删除除了1毫升新鲜，冰冷的8％多聚甲醛固定为1h （PFA）在室温旋转振动筛。

第5部分：游离细胞悬液洗涤

1. 细胞悬液，离心5分钟，4 ° C和0.2 RCF，在冷却离心机。
2. 被丢弃上清液，沉淀在1毫升PBS含有3mg/ml BSA重悬。
3. 沉淀两次重复这些洗涤步骤后，终于重新悬浮于500μLPBS中3mg/ml牛血清白蛋白，5MM EDTA和0.1％的叠氮化钠。

注：钠酸除了让数天在4 ° C储存的细胞悬液但是，如果免疫细胞化学染色将遵循， 不添加钠酸的再悬浮缓冲，染色质量损失结果。

第6部分：定量细胞凋亡和增殖分析细胞悬液Cytospin

1. 磨砂高端显微镜玻片上，一个cytospin过滤器与一个或两个孔和cytospin漏斗插入cytospin幻灯片剪辑。幻灯片剪辑关闭，并在cytospin转子的位置。
2. 匀浆向上和向下轻轻吹打分离的细胞悬液。
   
   注：根据视网膜的发育阶段，从解离过程中的细胞悬液可能需要用PBS稀释，获得的细胞计数。
3. 一个细胞悬液等份（100μL）是适用于一个cytospin漏斗。
   
   注意：当吹打细胞悬浮液漏斗，吸管的尖端应达到一路下降漏斗底部。重要的是通过吸液管的第二个压力点不推，因为这将创建气泡的cytospin后，这将是在细胞现货中可见，阻碍细胞计数。
4. 细胞悬液，发现在7分钟700转的幻灯片。
5. 细胞凋亡水平的外源因素的影响的决心，可染色与4',6 - Diamidino - 2 -苯基吲哚（DAPI;2μg/ml），用荧光安装介质安装。在细胞凋亡的变化，可通过计数cytospin细胞点至少1000个细胞（包括至少10 pycnotic核）和细胞死亡率细胞总数的^百分比计算计数3,4。
   
   注 ：此外，凋亡细胞核的分布，可以在体外培养的^视网膜 wholemounts flatmounts 3或低温恒温器sections4评估TdT介导的dUTP缺口末端标记法（ TUNEL）。
6. 检测细胞的增殖，BrDU（5微米）可以被添加6H的文化和BrdU掺入年底前，在可视化细胞匀浆cytospins由免疫细胞化学染色使用抗BrdU抗体（如发育研究杂交瘤细胞银行，爱荷华州，美国）。
7. 在不同的视网膜细胞类型的治疗效果，可在cytospins可视Brn3a（神经节细胞标记物）或视蛋白（感光器标记）和用DAPI counterstaining神经元特异性抗体。

第7部分：代表结果

图1：在小鼠器官视网膜wholemounts的准备步骤
双眼头的鼠标。B与镜头一侧的小鼠眼，仍然存在的所有层。C从鼠眼视神经背面还连着 。与鼠眼巩膜和色素上皮部分切除，E小鼠视网膜角膜，巩膜和色素上皮细胞完全清除，但仍然存在的镜头和玻璃体。F小鼠晶状体和玻璃体视网膜wholemount杯删除。请点击这里看到图1的放大版本。

图2：cytospin和部分器官视网膜的wholemount文化分析
分析细胞凋亡，细胞悬浮液的分离cytospins经DAPI染色和pycnotic原子核可以通过核碎裂或染色质凝聚的区别开来（在箭头）。另外，wholemount节（CE;小鼠视网膜日龄（P））或视网膜flatmount（F）的可承受一个TUNEL法检测，并用DAPI（五）counterstained 。在不同的视网膜细胞类型的治疗效果，可以可视化在cytospins 协鑫像标记Brn3a（在B 的箭头 ），神经节细胞神经元特异性抗体，神经节细胞层;。INL的，前瞻性的内核层。请点击这里看大图图2。

讨论

利用小鼠器官视网膜wholemount文化^2-5以上的解离，单层，retinospheroid或重新聚合的3D球体在保存神经元的相互作用和连接谎言文化，模仿体内的情况。 ²前报告相比，我们的视频的文章提供了一个在剜除小鼠的眼睛，包括晶状体和玻璃体切除不损害视网膜的不同发育阶段的视网膜剥离的特殊性详细演示。晶状体和玻璃体切除药理操作至关重要，既阻碍物质的视网膜层的访问。?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Mice	Animal	Charles River Laboratories
Dissection microscope	Tool	Carl Zeiss, Inc.
PBS	Reagent	Sigma-Aldrich		PBS should be cold (> 4°C) and sterile
Dulbecco`s modified eagle`s medium / nutrient mixture F-12 Ham	Reagent	Sigma-Aldrich	D 8900	DMEM / F-12
Apo-transferin	Reagent	Sigma-Aldrich	T 1147
Putrescin	Reagent	Sigma-Aldrich	P 5780
Sodium selenite	Reagent	Sigma-Aldrich	S 9133
Progesterone	Reagent	Sigma-Aldrich	P 6149
Gentamicine	Reagent	Invitrogen
L-Glutamine	Reagent	Invitrogen	25030-024	200 mM (100X), liquid
Bovine serum albumine (BSA)	Reagent	Carl Roth Gmbh	8076.3	30 mg/ml
Collagenase	Reagent	Sigma-Aldrich	C 0773	200 U/ml
Trypsin	Reagent	Sigma-Aldrich	T4799	From porcine pancreas; 1 mg/ml
Hyaluronidase	Reagent	Sigma-Aldrich	H 3884	200 mg/ml
DNase I	Reagent	Roche Group	1 284 932	10 mg/ml
EDTA	Reagent	Sigma-Aldrich	E 6511
Silicone solution	Reagent	SERVA Electrophoresis	35130
Paraformaldehyde (PFA)	Reagent	Sigma-Aldrich	P6148	8% PFA in 0.1M phosphate buffer (pH 7.4).
4’,6-diamidino-2-phenylindole dihydrochloride	Reagent	Sigma-Aldrich	D 0542	DAPI
Fluorescent Mounting Medium	Reagent	Dako	S3023
BrDU	Reagent	Sigma-Aldrich	B 9285
96-well plates	Tool	Falcon BD	3072
24-well plates	Tool	Falcon BD	3047
Pasteur pipettes	Tool	Brand GmbH	747720
Forceps DUMONT #5	Tool	Fine Science Tools	11252-30	bevelled very fine shanks (0.05 mm x 0.02 mm tip)
Forceps DUMONT #7	Tool	Fine Science Tools	11271-30	curved shanks (0.07 mm x 0.10 mm tip)
Spring scissors,straight, 8cm	Tool	Fine Science Tools	15000-00	fine, small straight blades
Standard scissors, straight, sharp/blunt	Tool	Fine Science Tools	14007-14	Use for decapitation or cervical dislocation
Eppendorf tubes	Tool	Eppendorf		2ml; round bottom for better precipitation of pellet during centrifugation /cytospin
Cooling centrifuge	Tool	Eppendorf
Rotation shaker	Tool	CAT
Cytospin	Tool	Thermo Fisher Scientific, Inc.