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摘要

在这个视频中,我们展示的CD40从C57BL / 6小鼠的脾细胞,它可以用来作为模型抗原提呈细胞(APC)的研究免疫诱导小鼠的B细胞的活化和扩大的过程。

摘要

有研究表明,B细胞CD40的激活提高其抗原提呈能力。当白细胞介素4和CD40配体(CD40L)的刺激下,没有非常大量高纯度的CD40 - B细胞(14天之内的困难,从少量外周血的可扩展人类B细胞> 10

研究方案

协议分为两个部分:第一部分为一代小鼠CD40激活的B细胞(脾mCD40B)一个演示小鼠CD40配体(CD40L)表达HeLa细胞(tmuCD40L HeLa细胞),这将被用作板准备束缚饲养层细胞。 B部分介绍了实际的小鼠CD40 - B的文化。

A.制备饲养细胞(HeLa细胞tmuCD40L)

tmuCD40L HeLa细胞是一个附着的人类上皮细胞系,这不应该成为完全融合。因此,这些细胞被劈裂每周两次。超过6周以上的培养,不推荐。

  1. 从小学文化的老媒体取出,用无菌吸管和10 mL 1X PBS中洗细胞。吸的PBS洗涤后。
  2. 添加4毫升1X胰蛋白酶/ EDTA,在一个75厘米 2瓶10-15分钟,在37 ° C。使用温柔攻分离的细胞。
  3. 野生型中添加10毫升,并轻轻旋转停止用胰酶消化。
  4. 转移到50 mL试管细胞悬液,用无菌吸管和旋转265 7分钟XG的细胞。
  5. 去除上清,重悬细胞沉淀在野生型中的10毫升。计数细胞悬液等分的细胞数,并准备适当数量的细胞50毫升管:
    1. 2.5 × 10 6细胞对亚文化
    2. 0.4 × 10 6细胞/孔照射小鼠CD40 - B细胞培养使用
    3. 其余冻结(如需要)。
  6. 旋转细胞在265 7分钟XG。
  7. 去除上清。
    1. 传代培养:重悬于2.5 × 10 6细胞10毫升,75厘米2细胞培养瓶中的选择培养基(细胞密度为2.5 × 10 5细胞/ mL)孵育细胞在37℃,5%的CO 2 。每周两次分裂的细胞。
    2. 对于小鼠CD40 - B细胞文化:您需要2.4 × 10 6 6孔板细胞。在野生型中重悬tmuCD40L HeLa细胞密度0.2 × 10 6细胞/ mL,他们在78 Gy的照射。板2毫升细胞悬液,每口井,并在37℃,5%的CO 2。使用B -细胞的刺激,这准备板块tmuCD40L HeLa细胞是贴壁时(至少4个小时:用显微镜检查坚持;不要等到超过24 h开始的B细胞刺激)。 (继续与B)

B.小鼠CD40 - B细胞培养

一,制备脾细胞CD40的刺激(0天):

请注意:在继续之前确定,饲养层细胞是贴壁。随时添加新的解决办法小鼠白细胞介素- 4,β-巯基乙醇和环孢素A的生长介质,使用前。

  1. 剖析的C57BL / 6小鼠(H - 2B单体)的脾和10-20毫升的DMEM洗两次辅以庆大霉素[15μg/mL]一个10毫升吸管尖从一个管到另一个传输。避免使用鼠标的传输污染物(例如头发)。切碎脾细胞通过一个过滤器(100微米)通过,并与其他10毫升的中型冲洗过滤器。降速在室温下为7分钟在265 XG脾,重悬在7ML muCD40 - B细胞中,并Ficoll密度离心分离淋巴细胞。没有在室温下刹车,这样做的5毫升鼠标Pancoll(在室温预热)在15毫升管和离心30分钟XG 450层细胞。
  2. 绘制关闭最上层,离开淋巴细胞在界面层不受干扰。淋巴细胞层转移到一个新的50 mL试管中,用30毫升,庆大霉素[15μg/mL] DMEM培养液一旦被旋转265 7分钟XG删除其他细胞。弃上清,重悬细胞mCD40 - B的清洗介质在10毫升的。确定细胞的细胞悬液分装数。确定由计数的细胞悬液等分细胞数。
  3. 离心7分钟在265 XG的细胞所需的金额。对于6孔板5 × 10 6细胞/孔的需要,因此30 × 10 6细胞每盘。
  4. 取出上清液,重悬mCD40 - B的文化与1 U /白细胞介素4毫升新鲜培养基中的淋巴细胞,在1.25 × 10 6细胞/ mL,生长因子,100微米,β-巯基乙醇和0.63微克/毫升,环孢素A,以防止T细胞的生长(由于浓度是指一毫升培养液!)。
  5. 取出从6孔板与tmuCD40L HeLa细胞预孵育中的上清。
  6. 轻轻地添加4毫升的淋巴细胞悬液(1.25 × 10 6细胞/ mL)以及每6孔板。
  7. 板在37℃,5%的CO 2。
  8. 第3天reculture细胞(二.1继续)。

二。 mCD40B细胞传代培养的(第3天,然后每周两次):

  1. 收获mCD40B大力移液10毫升到50毫升管的移液器和池他们向上和向下的细胞群。
  2. 离心7分钟在265 XG,并完全取代mCD40 - B的清洗介质的上清。虽然计数细胞数量的等分,旋转265 XG细胞为7分钟。 mCD40B悬浮细胞mCD40 - B的培养基中,在0.75 × 10 6细胞/ ml的浓度。
  3. 小鼠白细胞介素4的新鲜的解决方案中添加一个1 U /毫升,100μMβ-巯基乙醇和0.63μg/ mL的中期环孢素A的浓度。
  4. 取出从6孔板与照射tmuCD40L HeLa细胞预孵育中的上清。
  5. 轻轻地添加4毫升每6孔板以及mCD40B细胞悬液(0.75 × 10 6细胞/ mL)。
  6. 孵育板在37℃,5%的CO 2。
  7. 再次传代培养的细胞,每隔3-4天,以高纯度的小鼠CD40的B细胞激活后的14天总。

C.故障排除:CD40的B细胞,如果不长呢?

  1. 你有检查饲养层细胞的CD40的配体表达?
  2. 板约束馈线用于刺激超过24h以上的细胞?
  3. 是否有支原体污染吗?
  4. 是白细胞介素- 4解决方案,为补充新鲜解冻,并有相应的生物活性?
  5. 是β-巯基乙醇和环孢素A中添加正确的浓度?

figure-protocol-2898
图1a。

figure-protocol-3014
图1b。

figure-protocol-3132
图1d。

figure-protocol-3250
图2。

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讨论

本协议的修改是可能的,尤其是关于CD40的刺激和使用的小鼠品系类型的起源,也高产高效代小鼠CD40激活的B细胞。艾哈迈迪等人。表明小鼠CD40的配体转染小鼠成纤维细胞类似的结果。可以肯定地排除在这种异种抗原的背景下演示,但在体内的安全性和毒性的深入研究了在此设置使用人类转染的HeLa细胞的炎症或自身免疫反应的迹象。然而,最好的替代代表与激活和增殖活动在同一时间,这?...

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披露声明

实验是按照实验动物饲养的国家和欧洲的指引。在谈到德国的动物福利法,动物是由当局控制的定期的。

致谢

我们诚恳地感谢克莱门斯Wendtner博士提供tmuCD40配体HeLa细胞株。

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材料

A.媒体的制备:

NameCompanyCatalog NumberComments
直属细胞野生型中 馈线小区选择培养基
试剂 集中 试剂 集中
RPMI 1640培养 RPMI 1640培养
L -谷氨酰胺 300微克/毫升 L -谷氨酰胺 300微克/毫升
胎牛血清 10% 胎牛血清 10%
HEPES 10毫米 HEPES 10毫米
庆大霉素 15微克/毫升庆大霉素 15微克/毫升
潮霉素B 0.2毫克/毫升。
mCD40 - B的清洗介质 mCD40 - B的培养基
试剂 集中 试剂 集中
D - MEM
D - MEM
L -谷氨酰胺 580微克/毫升 L -谷氨酰胺 580微克/毫升
血糖 4.5毫克/毫升血糖 4.5毫克/毫升
HEPES 10毫米 HEPES 10毫米
庆大霉素 15微克/毫升庆大霉素 15微克/毫升


纪念 0.1MM(1X)


胎牛血清 10%

B.其它试剂:

试剂 公司 订单号
RPMI 1640培养 Invitrogen公司Gibco公司楼盘21875
D - MEM Invitrogen公司Gibco公司楼盘41965
Dulbeccos PBS(10X) 临时机场管理局猫没有H15 - 011
Gencin 三角洲选择货号7395800
胎牛血清龙沙猫没有DE14 - 802C
HEPES缓冲液临时机场管理局猫没有S11 - 001
MEM NEAA Invitrogen公司Gibco公司楼盘11140
潮霉素B 临时机场管理局猫没有P02 - 015
重组小鼠白细胞介素4 Immunotools CAT无12340045
环孢素A 诺华公司猫没有NDC 0078-0109-01
胰蛋白酶/ EDTA(10X) Invitrogen公司Gibco公司楼盘15400-054

C.杂项用品:

试剂 公司 订单号
无菌移液器 Sarstedt
6孔板 NUNC CAT没有140675
50毫升锥形管 BD猎鹰™ CAT没有352070
组织培养瓶 Sarstedt CAT没有83.1813.002

参考文献

  1. Schultze, J. L. CD40-activated human B cells: an alternative source of highly efficient antigen presenting cells to generate autologous antigen-specific T cells for adoptive immunotherapy. J Clin Invest. 100 (11), 2757-2765 (1997).
  2. Wiesner, M. Conditional immortalization of human B cells by CD40 ligation. PLoS ONE. 3, e1464-e1464 (2008).
  3. Kondo, E. Efficient generation of antigen-specific cytotoxic T cells using retrovirally transduced CD40-activated B cells. J Immunol. 169 (4), 2164-2171 (2002).
  4. Liebig, T. M., Fiedler, A., Zoghi, S., Shimabukuro-Vornhagen, A., Bergwelt-Baildon, M. S. Generation of human CD40-activated B cells. J Vis Exp. 32, (2009).
  5. von Bergwelt-Baildon, M. CD40-activated B cells express full lymph node homing triad and induce T-cell chemotaxis: potential as cellular adjuvants. Blood. 107 (7), 2786-2789 (2006).
  6. Lapointe, R., Bellemare-Pelletier, A., Housseau, F., Thibodeau, J., Hwu, P. CD40-stimulated B lymphocytes pulsed with tumor antigens are effective antigen-presenting cells that can generate specific T cells. Cancer Res. 63 (11), 2836-2843 (2003).
  7. Ahmadi, T., Flies, A., Efebera, Y., Sherr, D. H. CD40 Ligand-activated, antigen-specific B cells are comparable to mature dendritic cells in presenting protein antigens and major histocompatibility complex class I- and class II-binding peptides. Immunology. 124 (1), 129-140 (2008).
  8. Bergwelt-Baildon, M. S. von Human primary and memory cytotoxic T lymphocyte responses are efficiently induced by means of CD40-activated B cells as antigen-presenting cells: potential for clinical application. Blood. 99 (9), 3319-3325 (2002).
  9. Kondo, E. CD40-activated B cells can be generated in high number and purity in cancer patients: analysis of immunogenicity and homing potential. Clin Exp Immunol. 155 (2), 249-256 (2009).
  10. Schultze, J. L., Grabbe, S., von Bergwelt-Baildon, M. S. DCs and CD40-activated B cells: current and future avenues to cellular cancer immunotherapy. Trends Immunol. 25 (12), 659-664 (2004).
  11. Mayr, C. Chromosomal translocations are associated with poor prognosis in chronic lymphocytic leukemia. Blood. 107 (2), 742-751 (2006).
  12. Mason, N. J. RNA-loaded CD40-activated B cells stimulate antigen-specific T-cell responses in dogs with spontaneous lymphoma. Gene Ther. 15 (13), 955-965 (2008).

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