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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 研究方案
  • 讨论
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

这个视频演示从后期果蝇蛹大脑中的主要神经文化的准备。生活文化的视图显示突起生长的钙水平使用FURA - 2和成像。

摘要

在这段视频中,我们展示了从后期果蝇蛹大脑中的主要神经文化的准备。程序开始在70-78小时puparium形成后,从动物的大脑去除。木瓜蛋白酶,在无血清生长介质中的几个洗短暂的潜伏期后孤立的大脑。在盖玻片上一个媒体下降5 UL每个大脑的机械分离的过程说明。在解离附近的SOMA的有丝分裂后神经元的轴突和树突sheered但神经细胞开始再生电镀的几个小时内进程。图像显示,在2天的现场文化。神经元继续阐述在第一周在文化进程。使用GAL4线驱动组织特异性表达GFP或RFP,如荧光标记,可以识别特定的神经元的人口文化。全细胞记录已经证明,培养的神经元形成胆碱能和GABA能突触的功能,自发主动。一个简短的视频段说明使用FURA - 2作为钙指示剂监测自发性钙瞬变和一碟培养的神经元的尼古丁诱发的钙反应的培养神经元的钙动态。这些蛹脑文化是一个有用的模型系统,在其中的遗传和药理工具可以被用来确定中央突触的形成和功能的内在和外在因素影响。

研究方案

培养前一天的准备工作:

  1. 设为无菌解剖解决方案。
  2. 使无菌DMEM培养液,并保持在4 ° 10毫升分装在2个星期。
  3. 在1个月的50或100μL分装无菌DDM2补充和冻结。
  4. 使错那县/层粘连蛋白。
  5. 大衣盖玻片。
    可选:请无菌中国建材和存储长达4个月的冻结。

在培养一天

一,准备在层流罩酶解决方案(ES)

  1. 把解剖解决方案(DS)在15 mL离心管5毫升。
  2. 称取0.8毫克的L -半胱氨酸在0.6毫升的Eppendorf,加入150μL的DS。移液器向上和向下,直到晶体都不见了。
  3. DS /半胱氨酸的5毫升的DS加入150毫升拌匀。
  4. 添加木瓜蛋白酶50 U(单位)。
  5. 新增7毫升达到0.1 N娜OH拌匀。解决方案将在30分钟内清除。当被激活。
  6. 0.2毫米,进入无菌1.5毫升螺旋盖离心管注射器过滤器的过滤器酶液

    木瓜蛋白酶:想要在5毫升的DS 50 ü。每个批次略有不同,所以必须计算多少:
    37.3 mg / ml和28.3 U /毫克
    37.3 x 28.3 = 1055.59单位/毫升(1000毫升)
    50 U = 47.4毫升

二。请DDM2媒体

天的培养:添加下面的补充,使DDM2

到10毫升的DMEM添加补充,只是前培养:

  1. 100μL转
  2. 100μL腐胺
  3. 100μL硒
  4. 100μL孕酮
  5. 50μL胰岛素
  6. 加入10μl20 - 羟基

:所有计划中的文化(镀在一个单独的35毫米培养皿盖玻片,1.5毫秒/文化媒体每个大脑足够DDM2)

步骤III - VI族可以在完成非无菌实验室工作台上,并应在45分钟或更少完成。

三。蛹收集

  1. 在解剖显微镜下选择10-15小瓶双方蛹。
  2. 将蛹干35毫米培养皿的盖子。

:从蛹之间,我们一般使用55-78小时后puparium形成(APF)的大脑。它是从蛹年轻的脑解剖稍硬因为头部胶囊趋向崩溃,而突起生长的整体水平,是从最古老的蛹略有下降。在广- S的野生型菌株,这些阶段是公认的色素浅棕色,略微泛红的眼睛,其他地方很少颜料。

四。斩首显微镜下解剖

  1. 将两滴无菌解剖的解决方案,在培养皿的盖子,旁边以蛹。
  2. 用细镊子轻轻握住一个单一的蛹在左手和使用一个27号注射器针头,右手1毫升注射器在蛹前结束的角质层去除。
  3. 稍微挤压蛹钳和头部出现,使用27号针头割断颈部。
  4. 针或镊子尖,传输头下降解剖的解决方案。
  5. 重复,直到你在一个下降10-15头。

五,去除头部的大脑解剖显微镜下

  1. 每手举行了27号针头的1毫升注射器。
  2. 使用这些位置在下降解剖的解决方案,所以长鼻是面对你和背水面的头部是北飞头。
  3. 插入的长鼻留针针头部向下,使用权的针,右眼,从腹,背水面缝。
  4. 附近地区的长鼻左侧插入正确的针,然后用留针,轻轻地抑制角质层比左眼,右眼缝推向大脑。大脑应该出现在右边的狭缝,相对完整的,经常与两个光纤LOBES仍然附着,有时色素眼组织以及。
  5. 针转移到了一个新的无菌,35毫米培养皿无菌解剖生理盐水下降回推到大脑。
  6. 收集各基因型10-15脑筋。

六。视叶和酶处理去除

  1. 在每手按住1毫升注射器和27号针头与使用这些收集所有的大脑在一个小面积下降解剖解决方案
  2. 作为切削工具删除从每个大脑视叶,使组织文化其余是中央的大脑区域,使用注射器。
  3. 使用20 pipetmanμL,5μL,所有的大脑的一个单一的基因型转移到Eppendorf管中含有1毫升的无菌木瓜溶液。
  4. 大脑中的木瓜蛋白酶孵育10-15分钟在60 RPM的肩设置。
  5. 离心3分钟3000转。

其余的步骤在层流罩内应该做的无菌层流罩 - 所有的地方组织暴露于空气中的步骤。

七。洗涤

  1. 取出酶液,用无菌解剖液更换。
  2. 离心3分钟3000转。
  3. 用无菌解剖液洗一次,共3次。
  4. 删除解剖生理盐水取代DDM2。
  5. 离心机和洗共2次与DDM2。
  6. 大脑和媒体传输到无菌的35毫米培养皿。

八。解剖显微镜下Trituration和电镀

  1. 在盖玻片的中心广场5 DDM2 UL。
  2. 1脑转移,这有一个黄色的提示DDM2下降。
  3. 在显微镜下,使用27表针骰子成小块(应<1分钟)的大脑。
  4. 视觉引导下,打破玻璃吸管已使大块可以轻轻吸成吸管的尖端,并驱逐到中期回拉至一个细点的提示。我们用口吸痰管,来与100μL的血细胞比容毛细管玻璃标准。

    注意 :小心不要让媒体的气泡,您将需要凭经验确定使用的最佳尺寸吸管。好的,让你的大脑在大约30秒/脑,游离于一些单个细胞,仍有一些大团块。当你看看这些在更高的功率,大约有10-20%的神经元仍然有剩下的一些过程,仍然会有一些大的团块。如果游离于太多,那么所有的细胞是圆形的,他们将有这么多的持续损害,他们将无法生存。这一步需要实践和必须迅速完成,因为有一个大的表面体积比和DDM2下降的渗透压和pH值,可以迅速改变。组织需要尽快置于二氧化碳培养箱。

  5. 写在培养皿的盖子:“基因型,日期和时间”。
  6. 把35毫米100毫米培养皿培养皿(湿kimwipe)和30分钟,让在CO 2培养箱解决。
  7. 洪水1.5毫升DDM2的35毫米菜。
  8. 保持在5% 二氧化碳培养箱(23℃)孵化器的文化。

    注意 :如果你没有访问到冷却的CO 2培养箱,使用标准的哺乳动物组织培养的孵化器,要么把它在一个凉爽的房间和热至23 ° C,或在实验室中,临时关闭,并使用在孵化器底部的冰盘来调节周围环境温度。

九。喂养细胞

  1. 在第1天(第二天),加入0.5毫升的CNBM/B27(条件培养基),使3:1 DDM2:CNBM/B27。
  2. 第5天更换为3:1 DDM2 1毫升的媒体:CNBM/B27。
  3. 保持在3:1 DDM2与喂养细胞:CNBM/B27,每4-5天。

    :文化可非神经元的空调媒体没有增长,但神经元未免显得更加脆弱,更难以在电生理学实验中使用。

讨论

收获胚胎/产后的啮齿类动物的大脑的神经细胞可以生长在原代细胞培养,他们延长突起,形成功能性突触连接。这些文化的编制方法是建立在啮齿类动物的神经元文化的研究起到了关键作用,在确定基因和环境因素参与调节突触的形成和功能的银行家和Goslin,(1991)。虽然从各种不同的物种昆虫的神经元也可以培养,从果蝇(Rohrbough等,2003)所示,形成文化功能的突触连接的唯一的昆虫神经元。神经母细胞收?...

致谢

这项工作是由美国国立卫生研究院授予NS27501 DKOD支持。授予加州大学欧文分校在霍华德休斯医学研究所教授计划通过DKOD支持这项工作提供了额外的支持。

材料

涂布盖玻片:放置在一个60毫米的培养皿灭菌盖玻片。吸取5 UL CON /层粘连蛋白混合到每个盖玻片中心。在37℃培养箱中培养2小时。 100 UL的蒸压水冲洗3倍盖玻片。使用连接到无菌巴斯德吸管的真空。在最后一次冲洗,用血管钳拿起盖玻片和干燥双方。将盖玻片的35mm培养皿。在室温下储存长达一个月。

参考文献

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1991).
  2. Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and Modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).
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