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  • 摘要
  • 摘要
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  • 参考文献
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摘要

使用定量PCR技术,我们展示了如何建立鸡胚CAM模型可用于定量分析的人类肿瘤细胞转移到远处器官。

摘要

在转移的癌细胞从原发肿瘤的传播,侵入到周围组织,并扩散到远处器官。转移是一个复杂的过程,可能涉及到许多的组织类型,变量跨度的时间段,经常发生深刻的内部器官,使其难以进行调查和量化。此外,转移过程中的疗效的影响使其难以评估单一的肿瘤细胞行为方面的贡献,在转移级联的多个步骤。因此,经常进行转移检测在实验动物提供了一定的现实背景下,在其中学习转移。不幸的是,这些模型进一步复杂,其复杂的生理。鸡胚是一个独特的体内模型,克服了很多的局限性研究转移,由于绒毛尿囊膜(CAM),一个良好的血管多余的胚胎组织位于下面的蛋壳,是接受了肿瘤细胞的xenografting无障碍(图1)。此外,由于鸡胚是自然免疫缺陷,CAM容易支持正常和肿瘤组织植入。最重要的是,禽流感的CAM成功地支持大多数癌症细胞的特点,包括生长,侵袭,血管生成,和微环境重塑。这使得模型特别有用的调查导致癌转移的途径,并预测转移性癌的新的潜在疗法的反应。物种的具体铝PCR检测细胞播散,使人们有可能定量评估,是殖民统治只有25细胞的转移器官。使用人类的表皮细胞株(HEp3),我们使用这个模型来分析癌细胞的自发转移到远处器官,包括鸡胚肝脏和肺。此外,我们使用ALU - PCR协议表明,作为一种工具来分析和定量转移的单个元素的血管内,逮捕,外渗,和殖民的灵敏度和可重复性的检测。

研究方案

1。准备xenografting鸡蛋(自发转移)

  1. 刚下岗的受精鸡蛋孵化在一个旋转的孵化器,在100 ° F和60%的湿度为10天。鸡蛋旋转四次,每一个小时。
  2. 发育10天的鸡蛋都放在一个鸡蛋机架就在自己身边。一个鹅颈灯或其他合适的光源是用蜡烛鸡蛋的蛋壳射入airsac是位于蛋的钝端的光。
  3. 位于绒毛尿囊静脉和标记。此静脉是位于顶部的蛋壳是几个大血管交界。在此分支点血管下降,离从CAM和重视的胚胎。一个1cm见方框用铅笔在蛋壳上绘制约1厘米远离静脉分支点。包括广场周围的区域,然后用棉签在碘浸泡清洗。
  4. 使用一个碳化硅研磨石(DREMEL部分#84922)是通过蛋的钝端钻一个洞到空气囊装有一个旋转刀具(DREMEL)。使用同样的工具,钻了一个洞以前绘制的正方形内的鸡蛋的顶部,阻止蛋壳膜。一个与上年底的罚款钻的25号注射器针头是用来做了一个小洞,在蛋壳膜,小心不要撕破底层的CAM。 CAM是后来脱离蛋壳膜平方米面积的使用温和的吸力创建具有自动吸液管对孔放置在airsac ¼英寸聚乙烯管件与安装的援助。申请吸后,气囊应该象征方孔下方的CAM已成功删除从蛋壳。凸轮下降后,在气囊和位于广场附近的绒毛尿囊静脉孔孔是密封的一块磁带的实验室磁带。卵随后放置在100 ° F和60%的湿度预期嫁接的肿瘤细胞,成一个固定的孵化器。顺序描述见图1。

2。准备用于静脉注射的鸡蛋(实验转移)

  1. 刚下岗的受精鸡蛋孵化12天,在100 ° F和60%的湿度在一个旋转的孵化器。鸡蛋旋转四次,每一个小时。
  2. 发育天12的鸡蛋都放在一个鸡蛋机架就在自己身边。一个鹅颈灯或其他合适的光源是用蜡烛鸡蛋的蛋壳射入airsac是位于蛋的钝端的光。
  3. 位于绒毛尿囊静脉和标记。 1厘米是一个0.5厘米的矩形绘制蛋壳直接静脉以上的铅笔。包括广场周围的区域,然后用棉签在碘浸泡清洗。
  4. 创建一个小窗口,在使用Dremmel钻头(#118)在绘制的位置蛋壳。在删除该窗口,露出底层的蛋壳膜,随后呈现透明的矿物油下降。见一个图形的描绘图5A。
  5. 此时空气囊和位于广场附近的绒毛尿囊静脉孔孔是密封的一块磁带的实验室磁带。卵随后放置在100 ° F和湿度60%,预计在注射肿瘤细胞成一个固定的孵化器。

3。准备嫁接或注射的肿瘤细胞。

  1. xenografting,肿瘤细胞脱离他们的培养皿中,用胰蛋白酶/ EDTA,洗净,10卷的磷酸盐缓冲液(PBS),以除去残留的媒体,胰蛋白酶,或EDTA。
  2. 静脉注射,分离培养的细胞用非酶细胞分离解决方案,并与无血清DMEM洗。和)
  3. 细胞计数与hemacytometer为10-40万细胞/ ml的PBS重悬嫁接,或者在无血清DMEM悬浮在1万个细胞/毫升静脉注射。

4。接枝的新暴露的CAM(自发转移)肿瘤细胞

  1. 鸡蛋是从孵化器中删除和以前绘制的广场,在那里已形成新的空气袋的位置切一个小窗口。这是最容易与配备一个切割轮(#409圆切割轮的Dremel工具)旋转工具。尖嘴钳对用于去除蛋壳的一小部分,揭露底层凸轮。
  2. 使用棉签(费舍尔品牌#23-400-001)凸轮磨损的5倍。对棉花,一点血应该是明显。立即损害的CAM后,细胞悬液25μl放置到受损区域。最佳的细胞数量是确定发送mpirically但可以范围从0.5X10 5到1x10 6。鸡蛋中的窗口,是用胶带封紧,小鸡离开站立10-15分钟,为了让定居的细胞。鸡蛋15分钟后返回到静止的孵化器。
  3. 肿瘤是可以成长为5-8天,具体应用和性质的肿瘤细胞用线不同而有差异。顺序描述见图1。

5。静脉注射肿瘤细胞(实验转移)

  1. 使用30号胰岛素注射器100μL细胞悬液注入到每个胚胎的尿囊静脉,鸡蛋被退回到一个固定的孵化器,仍然有一个额外的1-7天。
  2. 在不同的时间点,肺或较低的CAM是从每个胚胎收获和处理的肿瘤细胞的检测,如下所述。

6。收获肿瘤和雏鸡组织

  1. 准备一个夹层面积。该试剂盒检测通过使用一个高度敏感的PCR方法定量分析人类的DNA转移细胞。因此,这是非常重要的,以防止外源DNA的污染。在一个专门的区域,并进行解剖,整个解剖的工具清洗在每个动物之间。为了防止您的样品交叉污染,整个解剖过程中的3套独立的工具是:一切蛋,删除除去内脏器官的原发灶和一组一组的。此外,四个洗容器用于连续冲洗每个动物之间的工具。在这些清洗顺序是:1)双蒸水,2)双蒸水,3)含氯漂白剂,以及4)70%的乙醇。
  2. 鸡蛋是从固定的孵化器,并置于冰上15分钟,麻醉和安乐死的动物。窗户打开,这样的肿瘤变得可见。打开窗户删除一些蛋壳更大可能是必要的的。从CAM切除原发肿瘤,称重,组织学处理。
  3. 从小鸡的蛋壳,切成相等的半壳径向。倒出从胚胎切割外壳,并转移到一个干净的权衡船一侧乳房上来。动物解剖用新鲜,清洁工具。动物是通过胸骨切割开。一旦胚胎是开放的,一个肝片,从左边或右边的叶收集。轻轻拉动连接到肫食道和切割采钰,连接机关内部器官随后被删除。为了收集肺切肋骨打开乳房板分离和心脏被删除。在这一点上,可能减少对肺周围的四个边(最接近头顶部沿左肋,附近的隔膜和沿气管右侧底部的左边)。为了一致性,相同的肺是收集在每个动物。采伐的组织样本保存在-20 ° C,以备以后使用,可以立即处理DNA提取。

7。基因组DNA提取和定量PCR分析

  1. 基因组DNA提取使用SYBR GREEN提取物 - N放大器组织PCR试剂盒(Sigma - Aldrich公司目录#XNATRG)的组织。提取的DNA可以被转移到一个干净的Eppendorf管中,并储存在-20 ° C,或立即使用。重要的是要在核酸自由水稀释前,在随后的PCR反应中使用的DNA 1:50。另外,DNA可以提取使用任何标准DNA提取协议(泽吉尔斯达 ,2002)。
  2. 人类DNA检测小鸡采用定量PCR技术对人类铝序列的具体组织。定量PCR使用ALU -特异性引物,从Exract N -放大器套件使用SYBR GREEN放大。 PCR试剂盒配备了一个2倍的反应,含有SYBR GREEN,缓冲区,盐dNTPS,Taq DNA聚合酶和Jumpstart的Taq酶抗体混合。反应混合物在终体积为15μl,引物各0.4μM。然而,对于大多数情况下,使用提取的DNA稀释1:50将提供定量数据,模板DNA的最佳数量可能需要优化经验。鸡GAPDH的引物用于PCR是在下列条件下运行,用于ALU序列作为内部控制:聚合酶激活在95 ° C为2分30个循环,在95 ° C为30秒,63 ° C第30 72 °秒,持续30℃鸡GAPDH的反应条件是相同的,用于ALU中所描述的,但是可能有必要延长40个循环的PCR。
  3. 转移定量分析比较实验组,对照组(Schmittgen和Livak,2008;使用ΔΔCT方法执行。泽吉尔斯达 ,2002)。或者使用人类肿瘤细胞提取使用提取N -放大器套件(泽吉尔斯达 ,2002)的系列稀释,可以生成标准曲线。统计的意义在于评估使用学生t检验或方差分析,对照组和实验组。

8。代表性的成果:

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图1。鸡胚转移模型。 A)四个面板图说明了该模型的的关键步骤,在横截面的外观: 1。经过10天的潜伏期。 CAM已达到接近最大尺寸。对鸡蛋的顶部位置的尿囊静脉动脉和静脉明显可见。 2。后立即鸡蛋在蛋壳上钻两个孔:到airsac和一个相邻的尿囊静脉的附着点。 3。后一种轻微的真空外观已用于疏散airsac和下降的CAM。肿瘤细胞(蓝色)适用于下降的CAM。 4。使嫁接的肿瘤细胞生长后,连同从鸡胚胎组织肿瘤的收获进行分析B)模型的序列描述: 1。孵蛋,2。这标志着尿囊静脉的位置,3。在蛋壳上钻洞,4。滴药凸轮,5。切割肿瘤嫁接细胞,6开幕。将肿瘤细胞,7。在冰上冷却鸡蛋事先收集组织,8。收获后肿瘤生长7天。

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图2。CAM的肿瘤组织学。从荷瘤绒毛尿囊膜组织被固定在福尔马林,切片,与三色染色处理。一)HEp3肿瘤后7天在CAM的增长。 B和C显示放大显示肿瘤和基质地区。 D)法线的CAM。

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图3。纵向分析定量转移 。高或低的转移能力(HEp3 M(高)和HEp3 M(低)分别)的头部和颈部癌HEp3的变种进行了分析,他们有能力传播使用铝PCR。十大动物进行了分析,在每个时间点为7天的时间。对这些样本进行了量化的标准曲线,并随后表示#cells/50mg组织。

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图4。在动物体内自发转移细胞的抑制与转移抑制抗体1A5的治疗。使用5X10 5到10天的胚胎CAM应用的HEp3细胞形成肿瘤。申请一半的动物治疗的肿瘤细胞与抗CD151抗体1A5后三天。从荷瘤动​​物的肺,两天后收获和实时定量ALU PCR扩增。相反实时定量PCR的chGAPDH被用来确认相当于宿主基因组DNA的数量(ΔΔCT方法被用于定量比较两组(二)存在。

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图5。在转移性级联评估逮捕,生长和血管内 。从根本上说,转移到次要器官的定义是由三个方面的贡献:逮捕,生长速度,血管内率。这些可以量化的实验转移(A)和自发转移(二)结合使用。使用实验转移(a)逮捕定义为细胞数量检测注射后2小时。被捕细胞的生存和发展确定为细胞数量的变化24小时后注射。被定义为在天3-7扩散率增长。血管内确定使用(B)在intravasated细胞的数量是7天的转移负担,目前,超过该值由目前的第6天的转移性负担的增长预测中定义的自发转移。

figure-protocol-4961
图6。 CAM中的可视化扩张的转移 。 HEp3细胞表达GFP发育12天的静脉注射。在第1天,3和5,一个鸡蛋被牺牲的CAM部分是用荧光体视显微镜成像。创建的深绿色背景是由蛋壳,血管可见的黑线,和肿瘤细胞可见的明亮的绿色斑点。

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讨论

鸡胚CAM已使用了几十年,作为一个模型系统,研究各方面的癌症生物学和转移性进展。原则上转移能力的评估已经在这个模型中进行的各种团体,包括休眠分析阿吉雷Ghiso等,1999; Ossowski和帝国,1983年),组织重塑 (Deryugina等,2005; 。哈恩Dantona ,1999),和转移(泽吉尔斯达 ,2008;泽吉尔斯达 ,2002)。它仍然是一个非常有吸引力的癌症生物学的,因为?...

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披露声明

没有利益冲突的声明。

致谢

我们要认识到泰森食品公司慷慨地提供受精卵。莎娜阿诺德在本议定书的拍摄。帕尔默Trenis露丝属Kirschstein国家研究服务奖(F31的美国国家癌症研究所)是由美国国立卫生研究院的支持下。部分支持这项工作是由CCSRI格兰特#700537 JDL和NIH / NCI授予#CA120711 - 01A1和CA120711 - 01A1对AZ。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
试剂名称公司目录编号评论(可选)
1X贝科改良Eagle培养基(DMEM) Invitrogen公司 11995073
贝科的磷酸盐缓冲生理盐水(D - PBS)(1X),液体 Invitrogen公司 14190250 pH值7.4
胰蛋白酶,0.05%与EDTA 4Na(1X),液体 Invitrogen公司 25300054
运动员出雏贝里山 1550HA 这些孵化器是一些最容易获得的。但是,视频将表现出不同的设备。
运动员孵化器贝里山 1502EA
DREMEL旋转工具 DREMEL
DREMEL截止车轮没有。 36 DREMEL 409
便携式移液器援助费舍尔 1368115E
棉尖喷枪费舍尔 23-400-001)
受精卵各种可用于许多不同的供应商。鸡蛋应约35-55克。母鸡,规定他们应在36和55周龄之间。
血球 Hausser科学,VWR 15170-090
光纤显微镜照明灯 Amscope HL250 - AY 150W
25号针
SYBR绿色提取N -安培组织PCR试剂盒 Sigma - Aldrich公司 XNATRG

参考文献

  1. Ghiso, A. guirre, Kovalski, J. A., K,, Ossowski, L. Tumor dormancy induced by downregulation of urokinase receptor in human carcinoma involves integrin and MAPK signaling. J Cell Biol. 147, 89-104 (1999).
  2. Chambers, A. F., Shafir, R., Ling, V. A model system for studying metastasis using the embryonic chick. Cancer research. 42, 4018-4025 (1982).
  3. Chambers, A. F., Wilson, S. M., Tuck, A. B., Denhardt, G. H., Cairncross, J. G. Comparison of metastatic properties of a variety of mouse, rat, and human cells in assays in nude mice and chick embryos. In Vivo. 4, 215-219 (1990).
  4. Deryugina, E. I., Zijlstra, A., Partridge, J. J., Kupriyanova, T. A., Madsen, M. A., Papagiannakopoulos, T., Quigley, J. P. Unexpected effect of matrix metalloproteinase down-regulation on vascular intravasation and metastasis of human fibrosarcoma cells selected in vivo for high rates of dissemination. Cancer Res. 65, 10959-10969 (2005).
  5. Hahn-Dantona, E., Ramos-DeSimone, N., Sipley, J., Nagase, H., French, D. L., Quigley, J. P. Activation of proMMP-9 by a plasmin/MMP-3 cascade in a tumor cell model. Regulation by tissue inhibitors of metalloproteinases. Ann N Y Acad Sci. 878, 372-387 (1999).
  6. Kim, J., Yu, W., Kovalski, K., Ossowski, L. Requirement for specific proteases in cancer cell intravasation as revealed by a novel semiquantitative PCR-based assay. Cell. 94, 353-362 (1998).
  7. Leong, H. S., Steinmetz, N. F., Ablack, A., Destito, G., Zijlstra, A., Stuhlmann, H., Manchester, M., Lewis, J. D. Intravital imaging of embryonic and tumor neovasculature using viral nanoparticles. Nat Protoc. 5, 1406-1417 (2010).
  8. Lewis, J. D., Destito, G., Zijlstra, A., Gonzalez, M. J., Quigley, J. P., Manchester, M., Stuhlmann, H. Viral nanoparticles as tools for intravital vascular imaging. Nat Med. 12, 354-360 (2006).
  9. Ossowski, L., Reich, E. Changes in malignant phenotype of a human carcinoma conditioned by growth environment. Cell. 33, 323-333 (1983).
  10. Schmittgen, T. D., Livak, K. J. Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T) method. Nat Protoc. 3, 1101-1108 (2008).
  11. Testa, J. E., Brooks, P. C., Lin, J. M., Quigley, J. P. Eukaryotic expression cloning with an antimetastatic monoclonal antibody identifies a tetraspanin (PETA-3/CD151) as an effector of human tumor cell migration and metastasis. Cancer Res. 59, 3812-3820 (1999).
  12. Zijlstra, A., Lewis, J., Degryse, B., Stuhlmann, H., Quigley, J. P. The Inhibition of Tumor Cell Intravasation and Subsequent Metastasis via Regulation of In Vivo Tumor Cell Motility by the Tetraspanin CD151. Cancer Cell. 13, 221-234 (2008).
  13. Zijlstra, A., Mellor, R., Panzarella, G., Aimes, R. T., Hooper, J. D., Marchenko, N. D., Quigley, J. P. A quantitative analysis of rate-limiting steps in the metastatic cascade using human-specific real-time polymerase chain reaction. Cancer Res. 62, 7083-7092 (2002).

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