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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
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  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

无论是衰老阻止或促进肿瘤的发生仍存在争议。由于化学治疗药物可以诱导癌细胞衰老,衰老研究提出的新疗法是必不可少的。然而,标准的和广泛使用的β-半乳糖苷酶测定的主要缺点。在这里我们提出一种快速,灵敏的基于流式细胞仪检测,以量化衰老。

摘要

人体细胞不会无限增殖。外部和/或内在线索后,细胞可能会死,或进入一个稳定的细胞周期阻滞,称为衰老。几个细胞的机制,如端粒缩短和有丝分裂原癌基因的异常表达,已被证明是导致衰老。衰老并不局限于对正常细胞也有报道癌细胞衰老。

化学治疗药物已被证明在肿瘤细胞中诱导衰老。但是,它仍然是有争议的衰老是否阻止或促进肿瘤的发生。因为它最终可能特定病人,一种快速,灵敏的方法将很快被要求评估在癌症细胞的衰老。

的是标准的β-半乳糖苷酶的测定中,目前使用的方法,为此,提出了主要的缺点:它是费时和不敏感。在这里我们提出一个基于流式细胞仪检测,以研究衰老对李VE细胞。本试剂盒提供的优点是快速,灵敏,可耦合到各种细胞标记物的免疫标记。

引言

海弗利克和穆尔黑德自六十年代初,它的发现,衰老仍然蜂窝的好奇心1。人体细胞不会无限增殖,衰老,海弗利克和穆尔黑德创造了细胞老化过程。衰老是一个稳定的细胞中,细胞周期阻滞保持代谢活跃,而不​​是细胞死亡。迄今为止,已经示出了4个细胞机制,诱导衰老:端粒缩短,DNA损伤,染色质的扰动,促有丝分裂原癌基因的异常表达2。这表明,不仅是正常的细胞,而且还能够接受衰老3癌细胞。事实上,癌症细胞衰老示出了进一步的肿瘤进展4-5构成障碍。然而,一些报告已经指出,在某些情况下,细胞衰老也可以促进恶性6-7。研究衰老癌症CELls是在癌症研究中,目前使用的化疗药物可导致癌细胞不仅在体外还是在体内 8衰老成为一种冲动。

主站的检测,以探讨衰老细胞的存在下,在酸性pH下的β-半乳糖苷酶测定。该组织化学法反映在溶酶体发生在大多数衰老细胞的生物合成增加。简单地说,外源X-gal的,适用于细胞,由衰老细胞的溶酶体中丰富的β-半乳糖苷酶裂解,从而产生蓝色9。蓝色衰老细胞,然后可以量化明场显微镜下。虽然很受欢迎,β-半乳糖苷酶检测提出了主要的缺点。首先,这对固定的细胞进行测定。第二,它是耗时的,因为它意味着衰老程度的量化,通过计算衰老细胞在显微镜下的一个显着高。第三,该法不敏感,衰老和非衰老细胞之间的歧视完全依赖于观察者。

我们在这里讨论的未开发,快速,敏感的流式细胞仪检测,以评估现场衰老细胞的存在。此法是基于水解的膜渗透分子的5 dodecanoylaminofluorescein的二-β-D-吡喃半乳糖苷(C 12 FDG),β-半乳糖苷酶在衰老细胞中富集。水解和激光激发后,在C 12 FDG发出绿色荧光,因此,可以通过流式细胞仪10,11检测到。衰老的细胞通过流式细胞仪的检测提供了快速,灵敏的巨大优势。此外,通过流式细胞术检测衰老细胞与其他细胞的标记物的检测可以耦合。本试剂盒可用于检测衰老细胞,用化疗治疗的癌细胞内的人口,可以常规设置组织切片,细胞分离后,在诊所。

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研究方案

1。巴弗洛霉素A1,C12FDG和细胞培养制备

  1. C 12的溶解在二甲亚砜(DMSO)中至最终浓度为20mM的葡萄糖粉。分装和储存在-20°C DMSO应采用适当的安全条件。
  2. 巴弗洛霉素A1粉溶解在DMSO中,使最终浓度为0.1mM。分装和储存在 - 20°C。巴弗洛霉素应采用适当的安全条件。
  3. RPMI 8226细胞系,或其他细胞系粘附或不培养,在含有10%小牛血清和1%的抗生素,在37℃,5%CO 2的介质。估计的实验所需的细胞数。在流式细胞仪分析,以便记录了足够数量的事件,5×10 5细胞是必需的。要确定三种细胞衰老细胞的百分比,样品要求:无标签样本,未经处理的细胞与C 12 FDG染色,染色处理过的细胞C 12 FDG。
  4. 种子细胞前24小时进行的实验,使细胞处于对数生长期的细胞增殖曲线。

2。诱导衰老

  1. 添加的化学治疗药物,诱导癌细胞衰老。药物浓度和治疗持续时间应适应测试的细胞类型。开始一个48小时处理,在多柔比星的最终浓度为50nM的细胞的浓度为约10 6个细胞/ ml。不要忘了,包括未经处理的样品(阴性对照)。

3。巴弗洛霉素A1治疗

  1. 检查细胞活力通过将细胞用台盼蓝(体积/体积),在先前步骤中所用的化学治疗药物可能会导致细胞凋亡。填写成Malassez室和蓝色细胞(死细胞)和白细胞(活细胞)数一数。生存能力如果百分比低于70%,死细胞,可能会对物已获批准使用适当的工具包,以确保不会死细胞偏置后续分析。
  2. 取出培养基和更换新鲜培养基预热。治疗的细胞与终浓度为100nM的巴弗洛霉素A1。巴弗洛霉素A1被用于中和酸性pH值的溶酶体。在37℃,5%CO 2中孵育1小时。

4。 C 12 FDG染色

  1. C 12葡萄糖溶解在预热的新鲜培养基中至终浓度为2mM。
  2. 的化合物加入到细胞中,使最终浓度为33μM,并孵育2小时,在37℃,5%CO 2。如果使用非粘附细胞,细胞以300×g离心5分钟,在4℃(可能具有的速度进行调整,以所使用的细胞类型),用PBS洗2倍。在500微升冷PBS重悬细胞沉淀。如果使用贴壁细胞,取出纸张,用PBS洗2倍。用胰蛋白酶溶液,离心,收获贴壁细胞细胞以300×g,5分钟,在4℃(可能具有的速度进行调整,以所使用的细胞类型)。在500微升冷PBS重悬细胞沉淀。在这两种情况下,细胞的浓度应为约10 6个细胞/ ml
  3. 执行合作进一步刻画人口的衰老细胞的免疫标记。

5。流式细胞仪分析

  1. 校准使用控制由生产商推荐的有孔玻璃珠的流式细胞仪的流式细胞仪。对于所有的步骤,至少10 4个事件被记录下来。
  2. 运行第一个样本含有未标记的细胞。准备一两个参数的图形显示前向散射信道(FSC)与侧向散射光通道(SSC)。设置在光电倍增管(光电倍增管),并定义一个感兴趣的区域不包括死亡的细胞和细胞碎片,在实验中,有可能出现。门这一地区的利益在一个参数直方图显示FL1日志规模的x轴方向和y轴的数目事件。事件的总数代表分析的细胞数。设置的PMT,使未标记细胞的对数刻度的x轴出现在第一个十年。确定如果有必要的细胞的自体荧光。
  3. 运行第二个样品含有未经处理的细胞。在单参数直方图显示FL1(荧光FDG C 12),将光标放置后昏暗标记的人口。这的门槛将允许非衰老细胞(昏暗标记细胞)和衰老细胞(明亮标记细胞)之间的歧视。
  4. 运行第三个样品含有处理过的细胞。明亮的标记的细胞, 衰老细胞出现在上一步中确定的阈值以上。评估衰老细胞的百分比除以明亮的事件,每个事件的总数的数量。如果需要的话,将β-半乳糖苷酶的活性也可以被估计平均荧光的强度。

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结果

多发性骨髓瘤,血液肿瘤,被用来评估的过程化学治疗诱导的衰老。要做到这一点市售MM细胞株(RPMI 8226)治疗与化学治疗药物阿霉素,2天。然后将细胞进行治疗巴弗洛霉素A1和C 12 FDG进一步培养。细胞,通过流式细胞术分析, 图1说明了不同的步骤和衰老细胞的百分比可确定在一天之内使用的C 12 FDG。首先运行未标记细胞在流式细胞仪。 如图2A中所示,一...

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讨论

这里,我们介绍一个基于流式细胞仪的方法来量化在肝癌细胞中的细胞衰老。这种方法是基于使用的膜透过性化合物中,C 12 FDG,因此,可以使用任何类型的细胞,并经过各种治疗方法,只要是采取了由细胞的化合物。细胞摄取后,C 12 FDG是由β-半乳糖苷酶,富含衰老细胞的溶酶体水解。激光激发后,化合物发出绿色荧光,使衰老细胞的定量。这种量化的绿色荧光可以通过流式细?...

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披露声明

没有利益冲突的声明。

致谢

我们感谢ICORE SF 4206(卡昂大学)为利用流式细胞设施。 JC收到博士后奖学金委员会辐射防护EDF和下诺曼底地区行政法院。这些数据国家法甲抗癌症 - ComitésDE L'奥恩等卡尔瓦多斯资助项目的一部分。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
5-dodecanoylaminofluorescein di-β-D-galactopyranoside InvitrogenD-2893
Dimethyl sulfoxide SigmaD2650
Bafilomycin A1SigmaB1793
DoxorubicinSandoz
Trypan blueSigmaT8154
RPMI 1640 cell culture mediumLonzaBE12-702
Fetal calf serumPAA Laboratories GmBHA15 101
AntibioticsGibco5290-018
Gallios flow cytometerBeckman CoulterA94291

参考文献

  1. Hayflick, L., Moorhead, P. S. The serial cultivation of human diploid cell strains. Experimental Cell Research. 25, 585-621 (1961).
  2. Campisi, J., d'Adda di Fagagna, F. Cellular senescence: when bad things happen to good cells. Nature Review Molecular Cell Biology. 8 (9), 729-740 (2007).
  3. Shay, J. W., Roninson, I. B. Hallmarks of senescence in carcinogenesis and cancer therapy. Oncogene. 23 (16), 2919-2933 (2004).
  4. Bartkova, J., Rezaei, N. Oncogene-induced senescence is part of the tumorigenesis barrier imposed by DNA damage checkpoints. Nature. 444 (7119), 633-637 (2006).
  5. Takacova, S., Slany, R., Bartkova, J., Stranecky, V., Dolezel, P., Luzna, P., et al. DNA damage response and inflammatory signaling limit the MLL-ENL-induced leukemogenesis in vivo. Cancer Cell. 21, 517-531 (2012).
  6. Krtolica, A., Parrinello, S., Lockett, S., Desprez, P. Y., Campisi, J. Senescent fibroblasts promote epithelial cell growth and tumorigenesis: a link between cancer and aging. Proceedings of the National Academy of Sciences. 98, 12072-12077 (2001).
  7. Coppe, J. P., Patil, C. K., Rodier, F., Sun, Y., Munoz, D. P., Goldstein, J., et al. Senescence-associated secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor. PLoS Biology. 6, 2853-2868 (2008).
  8. Roninson, I. B. Tumor cell senescence in cancer treatment. Cancer Research. 63 (11), 2705-2715 (2003).
  9. Dimri, G. P., Lee, X., et al. A biomarker that identifies senescent human cells in culture and in aging skin in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 92 (20), 9363-937 (1995).
  10. Kurz, D. J., Decary, S., Hong, Y., Erusalimsky, J. D. Senescence-associated (beta)-galactosidase reflects an increase in lysosomal mass during replicative ageing of human endothelial cells. Journal of Cell Science. 113, 3613-3622 (2000).
  11. Debacq-Chainiaux, F., Erusalimsky, J. D., Campisi, J., Toussaint, O. Protocols to detect senescence-associated beta-galactosidase (SA-betagal) activity, a biomarker of senescent cells in culture and in vivo. Nature Protocols. 4 (12), 1798-1806 (2009).
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