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摘要

Here the method to establish a syngeneic mouse model of orthotopic bladder tumour to evaluate the anti-tumour efficacy of the bacterial protein HP-NAP is described.

摘要

Bladder cancer is one of the most common malignancies of the urogenital tract. Intravesical injection of Bacillus Calmette-Guérin (BCG) is the gold standard treatment for the high-grade non-muscle invasive bladder cancer (NMIBC). However, since the treatment-related side effects are relevant, newer biological response modifiers with a better benefit/side effects ratio are needed.

The tumour microenvironment can influence both tumour development and therapy efficacy. In order to obtain a good model, it is desirable to implant tumour cells in the organ from which the cancer originates.

In this protocol, we describe a method for establishing a tumour in the bladder cavity of female mice and subsequent delivery of therapeutic agents; the latter are exemplified by our use of Helicobacter pylori neutrophil activating protein (HP-NAP). A preliminary chemical burn of the mucosa, followed by the injection of mouse urothelial carcinoma cell line MB49 via urethral catheterization, enables the cells to attach to the bladder mucosa. After a period, required to allow an initial proliferation of the cells, mice are treated with HP-NAP, administrated again via catheterization. The anti-tumour activity of HP-NAP is evaluated comparing the tumour volume, the extent of necrosis and the degree of vascularization between vehicle- and HP-NAP-treated animals.

引言

膀胱癌是泌尿生殖道的最常见的癌症之一,每年有近75000例新病例,在美国1。高复发率需要终身随访,这使得膀胱癌治疗的最昂贵的癌症之一。金标准治疗的高档NMIBC是经尿道切除术,随后膀胱内免疫卡介苗。虽然卡介苗的抗肿瘤活性的确切机制仍有待完全阐明,人们公认的富含T辅助(TH)1和细胞毒性T(Tc)的1细胞的细胞介导的​​免疫应答的激活是关键治疗2的成功。

尽管卡介苗仍然NMIBC选择的治疗的事实,高比例的患者不给治疗的反应;此外,它可能会导致一些副作用:约70%的治疗的肿瘤的一段时间后,复发和〜15%的进展到的肌肉侵入形式疾病。 BCG与治疗有关的其他副作用包括排尿困难,膀胱炎,肾感染3-6。

新的治疗策略的发展必须考虑使用临床前模型中,下列初始体外评估;这是肿瘤微环境的可它们的发展和响应显著影响到治疗尤为重要。

在过去十年中,我们已经解决的HP-NAP,由幽门螺杆菌产生的蛋白质的免疫调节活性的多个方面,初步确定为能够促进多形核细胞(中性粒细胞)7的内皮粘附的。在结构上,HP-NAP属于下饥饿条件(DPS)家族8的DNA的保护蛋白质,由布置在一个十二聚体壳12相同的亚基。

我们已经表明,HP-NAP是Toll样受体(TLR)2激动剂,与负责驱动T的分化强烈免疫调节活性淋巴细胞朝向Th1细胞表型,无论是在体外体内 9-10。借助此活动的,HP-NAP是能够重定向Th2免疫应答成过敏性哮喘11的鼠模型的更有利的Th1应答。

为了评价HP-NAP的Th1细胞依赖性抗肿瘤潜力,我们采取了膀胱癌的小鼠模型开发了数年前由奥唐奈和同事12用于评估BCG给药的影响的优点。

有了这个协议,我们证明了HP-NAP具有抗膀胱癌具有很强的抗肿瘤潜力,HP-NAP管理的有效性平行Th1和Tc1​​的淋巴细胞产生干扰素的显著积累,肿瘤及区域淋巴结内,( IFN)-γ13 。肿瘤从HP-NAP处理的小鼠中分离表现出更多的坏死和比未处理对口血管较少。

本报告提供一个分步协议,详细介绍了动物的制备方法,其导尿,所需细胞附着到膀胱粘膜的化学燃烧,并在注射肿瘤细胞。我们还描述的HP-NAP可被视为对膀胱癌的治疗开发的任何治疗剂的原型的局部给药。通过比较肿瘤从控制和HP-NAP处理的动物中分离得到的证据不仅强调一个事实,即HP-NAP可能是一个很好的候选为膀胱癌免疫疗法,而且实验设置的常规效力。

研究方案

所有的程序,动物处理已批准由意大利卫生部(DM二千○一十一分之二百○四-B)。

1.动物

  1. 生长C57BL6 / J雌性小鼠8周龄在单独通风笼了显微过滤器。
    注:女性是首选,因为其外部泌尿生殖设备的解剖形态呈现比男性导尿更容易。

2.细胞培养

  1. 保持小鼠尿路上皮癌的细胞系MB49在RPMI 1640培养基中在潮湿的5%CO 2中在补充有10%热灭活的胎牛血清和50μg/ ml庆大霉素,37℃。
  2. 生长在T-75烧瓶至80%汇合MB49细胞。 Trypsinize重悬在0.5×10 5 -植入小鼠前0.5×10 6细胞每150微升PBS中。

3.膀胱肿瘤植入

  1. 麻醉使用的麻醉剂zoletil和xylor的混合物(33毫克/公斤和20毫克/公斤,分别)小鼠,腹膜内注射。
  2. 将动物仰卧位和固定后腿利用胶带垫。爪子已被充分分开,以使尿道口以及可见和对导管的插入很方便。
  3. 注:对于导尿,一个24克小儿静脉导管适合8至10周大的老鼠。导管的选择是,为了避免液体的尿道壁和导管之间的泄漏很重要。较大的孔导管必须用于更大或更老的小鼠。
  4. 用一个小镊子,捏尿道外部分的一个边缘和扭曲它轻轻地向"前端"的老鼠。这个动作暴露尿道口。
  5. 取出导管的内部针和插入后者在尿道以45°的角度,略微取向对老鼠的"尾部"。不要强迫导管的入口;在遇阻力,只是扭动导管轻轻地,直到它滑倒尿道内。当导管为约0.5-0.8厘米是在尿道,小心地将平行导管给小鼠的尾部并完全插入。
  6. 使用1ml注射器,针,其中,必须在导管插入时,通过注入200-300微升无菌PBS洗涤从残余尿膀胱和吸从膀胱所有的液体。
  7. 注意:当注射的PBS,膀胱将填满和肿胀将小鼠的后腿之间可见;这证实了导尿是正确的。大多数导管有必须计算进样量时,被认为是一个死体积。
  8. 使用无菌1ml注射器,注入200微升的0.1N HCl中。填补了膀胱,以燃烧的整个墙面。经过10秒,除去所有的酸,并立即neutrali泽通过注入200微升0.1N NaOH中,用无菌注射器。在注射的最高数目的细胞(0.5×10 6)的,则不需要酸化步骤。
  9. 抽吸所有的残余液体,并立即冲洗腔用300μl无菌PBS中。
  10. 排空膀胱吸,并注入150微升PBS含MB49细胞(范围0.5×10 5 - 0.5×10 6)进入膀胱。离开组装到导管,以避免细胞的泄漏的注射器。最好是通过将其固定在利用胶带垫以固定注射器。
  11. 1小时后,轻轻地从尿道中提取的导管,然后将小鼠在笼下的白炽灯,直到他们醒着:这通常发生1至2小时的治疗结束后。

HP-NAP 4.膀胱交货

  1. 注:细胞滴注后至少3天,有可能开始治疗。
  2. 导尿与步骤3.1至3.4中所述。在这个阶段,没有必要用HCl烧膀胱壁。
  3. 使用1ml注射器,通过注入200-300微升无菌PBS洗涤从残余尿膀胱和吸从膀胱所有的液体。
  4. 注入50%的150微升PBS HP-NAP微克进入膀胱。离开装在导管的注射器,以避免该蛋白质溶液的泄漏。将它固定在用透明胶带固定垫注射器。
  5. 1小时后,轻轻地提取从尿道导管,然后将小鼠在笼下的白炽灯,直到他们清醒。

5.肿瘤外植体及组织学分析

  1. 在治疗结束时,牺牲的动物,将它们放置在仰卧位置并固定后腿用透明胶带垫。
  2. 使用外科手术刀,通过皮肤和使一个纵切口约1.52厘米长的腹膜,从正上方外生殖器的"前端"的老鼠。为了尽量减少破坏膀胱的风险,特别注意的切削深度。
  3. 膀胱将被定位在切口的中间偏左和肿瘤会是可见的,为暗粉红色/紫色的质量。在其切除,使整个膀胱组织学笼和石蜡包埋前在10%缓冲福尔马林固定。
  4. 对于组织学和免疫组织化学分析,准备使用标准切片膀胱(46微米厚)的连续切片。
  5. 染色用苏木精/曙红的部分,并继续进行与肿瘤大小(D xd的2),并确定每使用计算机辅助图像分析仪截面积坏死的百分比的计算。
  6. 对于血管计数,通过进行染色的部分为血管内皮标记CD31 / PECAM,使用标准的免疫过氧化物酶技术。扫描的部分的吨低功率(4×),以确定最高血管密度的区域。在这个区域,算上五个独立的随机领域的个人微血管在高功率(20×)。

结果

图1示出了导管插入术;鼠标插入导管和滴注0.5×10 6 MB49细胞。治疗与HP-NAP开始注射肿瘤细胞后3天,以使它们能够连接至膀胱壁和增殖。所有属于控制组动物发展肿瘤;他们中的一些13天期限结束之前可能死于尿道的阻塞。

在第一次注射与HP-NAP后,对动物进行治疗,每三天,总共四次注射。在实验结束时,在13天,将动物处死,取出气囊收集用于组织学和免?...

讨论

多数在癌症治疗的进展的需要测试在动物模型开始临床试验之前。研究肿瘤生物学体内 ,以动物模型的优势的可能性,表示为研究人员研究癌症发病机制,使不同的治疗方法的评估的一个重要工具。由于大量的细胞系可用于建立肿瘤模型和原位模型保持黄金标准14-15,一方面是因为它们模拟天然存在的肿瘤16的环境。

此外,设置的癌原位模型在同系小?...

披露声明

作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

致谢

这项工作是由意大利ASSOCIAZIONE每拉RICERCA SUL巨蟹座,大学意大利和研究部,首席项目和PROGETTI迪RICERCA雅典耀迪,给予N°CPDA137871,基金会Cariplo支持,给予N°2011-0485到MDB,并通过Finanziamento乔瓦尼Studiosi,帕多瓦大学,盖亚Codolo。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Materials
C57BL/6J female miceHarlan Italy (Udine, Italy)
MB49 CellsObtained from Prof. O'Donnel, University of Iowa Carver College of Medicine, Iowa, USA
RPMISigma-Aldrich (St. Louis, Missouri, USA)R8758
FBSSigma-AldrichF7524
PBSSigma-AldrichD140810X, to be diluted in apyrogenic water
FlaskBecton Dickinson (Franklin Lakes, New Jersey, USA)353135
Syringe 1mlBecton Dickinson301358
TrypsinLife Technologies (Waltham, Massachusetts, USA)
GentamycinLife Technologies15710-049
XilorBio 98 s.r.l. (Milano, Italy)2% Xylazin
ZoletilVirbac (Carros, France)3597133019925% Zolazepam + 5% Tiletamine
24G CatheterTerumo (Rome, Italy)SR+DM2419PX
HClCarlo Erba Reagents (Milano, Italy)403871Liquid
NaOHJT Baker (Center Valley, Pennsylvania, USA)10095011Powder
Equipment
Surgical ScalpelAlbion Surgical Limited (Sheffield, England)
MicrotomeLeica Microsystem ( Wetzlar, Germany)RM2235
Microscope SlidesVWR International (Radnor, Pennsylvania, USA)631-0108
Image AnalyzerZeiss (Jena, Germany)Cyres System

参考文献

  1. Siegel, R., Ma, J., Zou, Z., Cancerstatistics Jemal, A. . CA Cancer J Clin. 64, 9-29 (2014).
  2. Saint, F., et al. Prognostic value of a T helper 1 urinary cytokine response after intravesical bacillus Calmette-Guerin treatment for superficial bladder cancer. J Urol. 167, 364-367 (2002).
  3. Shahin, O., Thalmann, G. N., Rentsch, C., Mazzucchelli, L., Studer, U. E. A retrospective analysis of 153 patients treated with or without intravesical bacillus Calmette-Guerin for primary stage T1 grade 3 bladder cancer: recurrence, progression and survival. J Urol. 169, 96-100 (2003).
  4. Lamm, D. L. Complications of bacillus Calmette-Guerin immunotherapy. Urol Clin North Am. 19, 565-572 (1992).
  5. De Jager, R., et al. Long-term complete remission in bladder carcinoma in situ with intravesical TICE bacillus Calmette Guerin. Overview analysis of six phase II clinical trials. Urology. 38, 507-513 (1991).
  6. Dovedi, S. J., Davies, B. R. Emerging targeted therapies for bladder cancer: a disease waiting for a drug. Cancer Metastasis Rev. 28, 355-367 (2009).
  7. Evans, D. J., et al. Characterization of a Helicobacter pylori neutrophil-activating protein. Infect Immun. 63, 2213-2220 (1995).
  8. Grant, R. A., Filman, D. J., Finkel, S. E., Kolter, R., Hogle, J. M. The crystal structure of Dps, a ferritin homolog that binds and protects DNA. Nat Struct Biol. 5, 294-303 (1998).
  9. Amedei, A., et al. The neutrophil-activating protein of Helicobacter pylori promotes Th1 immune responses. J Clin Invest. 116, 1092-1101 (2006).
  10. Bernard, M., D'Elios, M. M. The immune modulating activity of the Helicobacter pylori HP-NAP: Friend or foe. Toxicon. 56, 1186-1192 (2010).
  11. Codolo, G., et al. The neutrophil-activating protein of Helicobacter pylori down-modulates Th2 inflammation in ovalbumin-induced allergic asthma. Cell Microbiol. 10, 2355-2363 (2008).
  12. Gunther, J. H., et al. Optimizing syngeneic orthotopic murine bladder cancer (MB49). Cancer Res. 59, 2834-2837 (1999).
  13. Codolo, G., et al. HP-NAP inhibits the growth of bladder cancer in mice by activating a cytotoxic Th1 response. Cancer Immunol Immunother. 61, 31-40 (2012).
  14. Chan, E., Patel, A., Heston, W., Larchian, W. Mouse orthotopic models for bladder cancer research. BJU Int. 104, 1286-1291 (2009).
  15. Kubota, T. Metastatic models of human cancer xenografted in the nude mouse: the importance of orthotopic transplantation. J Cell Biochem. 56, 4-8 (1994).
  16. Loi, M., et al. The use of the orthotopic model to validate antivascular therapies for cancer. Int J Dev Biol. 55, 547-555 (2011).
  17. Miyazaki, K., et al. Preconditioning methods influence tumor property in an orthotopic bladder urothelial carcinoma rat model. Mol Clin Oncol. 2, 65-70 (2014).
  18. Horiguchi, Y., et al. Establishment of orthotopic mouse superficial bladder tumor model for studies on intravesical treatments. Hum Cell. 21, 57-63 (2008).

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