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摘要

脂质是已知在细胞功能中起重要作用。在这里,我们描述了一种方法,以确定嗜中性粒细胞的脂质组合物,重点对胆固醇水平,同时使用HPTLC和HPLC纯化,获得更好的理解嗜中性粒细胞的胞外圈闭形成的基本机制的。

摘要

通过高效薄层层析(HPTLC)进行脂质分析是分析各种脂质的相对简单的,成本有效的方法。脂质( 例如,在宿主-病原体相互作用或主机条目)的功能已被报道在细胞过程中起关键作用。在这里,我们示出了方法来确定脂质组合物,具有相比于高效液相色谱法(HPLC)的聚焦初级血液衍生的中性粒细胞的胆固醇水平,通过HPTLC。的目的是调查脂质/胆固醇改变的嗜中性粒细胞的胞外陷阱(母语)的形成中的作用。 NET版本被称为宿主防御机制,以防止病原体的宿主内蔓延。因此,血液来源的人中性粒细胞用甲基β环糊精(MβCD)处理以诱导脂质改变的细胞。使用HPTLC和HPLC,我们已经表明,MβCD处理的细胞导致脂质与小区中的胆固醇含量降低显著相关联的改造。与此同时,MβCD治疗嗜中性粒细胞的导致母语的形成,如通过免疫荧光显微术。总之,在这里我们提出一个具体的方法来研究在嗜中性粒细胞脂质改变和渔网的形成。

引言

脂质已经被证明在细胞稳态,细胞死亡,宿主-病原体相互作用,和细胞因子释放1〜发挥重要作用。随着时间的推移,利息和知识脂质在宿主 - 病原体相互作用或炎症的影响有所增加,一些出版物确认某些脂质的核心作用,尤其是类固醇胆固醇在细胞反应。他汀类药物,其通过阻断3-羟基-3-甲基 - 辅酶-A还原酶用作胆固醇生物合成的抑制剂的药理学治疗(HMG辅酶A还原酶),可以通过降低白细胞介素的血清水平充当抗炎剂6和C反应蛋白2。胆固醇和鞘糖脂富集结构可以通过几种病原体,如细菌和病毒一起使用,作为一个网关到主机3,4,5,类= "外部参照"> 6。鞘脂( 例如,鞘磷脂)已经显示出由病原体被用来促进其致病性7。在巨噬细胞,分枝杆菌使用富含胆固醇的用于输入单元域;胆固醇的耗尽抑制分枝杆菌的摄取8。此外, 土拉弗朗西斯菌,负责兔热病人畜共患剂(也被称为兔热病)9,巨噬细胞的感染导致当胆固醇从膜10耗尽该被废除的感染。类似地,通过富含脂质的结构的宿主细胞大肠杆菌的侵袭被证明是胆固醇依赖性4。此外,上皮细胞的鼠伤寒沙门氏菌感染的实验表明,胆固醇是病原体进入细胞11是必不可少的。胆固醇消耗明显抑制ð沙门氏菌11的摄取。此外,最近的一项研究Gilk 。表明,胆固醇起着贝氏burnetti 12摄取了重要的作用。此外,TUONG 。发现,25-羟基胆固醇起着由脂多糖(LPS)在吞噬作用至关重要的作用刺激的巨噬细胞13。当巨噬细胞药理学上处理以消耗胆固醇14吞噬功能降低。因此,胆固醇和其他脂质似乎起到感染和炎症的重要作用,因为它们消耗可以从多种病原体10,11,12减少入侵的风险。

最近,我们能够证明脂质的改变,尤其是从细胞胆固醇消耗,诱导中性粒细胞产胞外的形成ř陷阱(母语)在人血液来源的嗜中性粒细胞15。由于网在2004年发现的,它们已被证明在细菌截留中发挥重要作用,从而阻碍在16感染,17的蔓延。母语由具有组蛋白,蛋白酶,和抗微生物肽16相关联的DNA主链的。的母语的嗜中性粒细胞的释放可通过入侵病原体18,19和化学物质如佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯(PMA)或他汀类药物16,20进行诱导。然而,详细的细胞机制,尤其是在这个过程中脂类的作用,仍然是不完全清楚。脂质的分析可能会导致更好地了解参与多种细胞过程和相互作用,如教师的释放机制。 CholesteROL和鞘磷脂是细胞膜脂质微,在那里他们增加稳定性,并促进参与蛋白质运输和信号事件21蛋白的聚集的重要组成部分。调查某些脂质,两亲性的药理学试剂,如环状寡糖甲基β环糊精(MβCD)的机械作用,可用于改变细胞的脂质组成,并减少在体外 15胆固醇。这里,我们提出的方法使用HPTLC分析嗜中性粒细胞的脂质组合物响应于MβCD。采用高效液相色谱法确认胆固醇在嗜中性白细胞群体的水平。此外,我们描述可视化响应于MβCD教师的在人血液来源的嗜中性粒细胞免疫荧光显微镜的形成的方法。

研究方案

外周血中此协议的集合是经当地人类研究伦理委员会。所有的人类受试者提供书面知情同意书。

1.通过密度梯度离心分离人血液来源的中性粒细胞

  1. 人血源性中性粒细胞的分离
    1. 层〜20毫升的血液20上毫升附近的火焰和没有混合泛影钠/葡聚糖溶液。
    2. 离心机在470×g离心30分钟,不制动。
    3. 除去单核细胞和血浆淡黄色层。传送多形核细胞(PMN)相(第2相具有累积的细胞; 图1 2)到一个新的50毫升管中并填充它高达50毫升用1X磷酸缓冲盐水(PBS)。
    4. 离心机在470×g下与制动器10分钟。
    5. 去除上清,重悬沉淀在5毫升的无菌水中FO个R 5以裂解红细胞。
    6. 立即填充至50mL用1×PBS和离心机在470×g下10分钟。
    7. 除去上清液。沉淀应该是白色。如果它仍然是红色,重复步骤1.1.5和1.1.6。
    8. 在重悬的Roswell Park纪念研究所(RPMI)中的1000微升沉淀。使用台盼蓝染色用血细胞计数器在光学显微镜下计数细胞数目。
    9. 以2×10 6 / mL的浓度制备在RPMI细胞悬浮液。约2.5×10 7嗜中性粒细胞可以从20毫升的血液中收获。
  2. 嗜中性粒细胞脂质分析的药物治疗
    1. 使用5×10 7细胞从步骤1.1.9。调整在300μL的在1.5mL反应管的总体积中在10mMMβCD或25nM的PMA的存在或不存在纯Hank's平衡盐溶液(HBSS)中的细胞数。
    2. 孵育的样品反应管在37℃下2小时和5%CO 2。
    3. 离心机在470×g下与制动器10分钟。
    4. 除去上清,悬浮于HBSS中的300μL细胞沉淀。
    5. 离心机在470×g下与制动器10分钟。
    6. 通过进出到1mL注射器10倍抽吸样品,用26-G套管之均匀,将样品储存在-20℃:重悬在1mL氯仿/甲醇的细胞沉淀(11)。
  3. 嗜中性粒细胞的药物治疗,免疫荧光定量NET
    1. 制备聚-L-赖氨酸包被的48孔板用玻璃盖玻片。
      1. 放置一个8毫米的玻璃盖玻片在各孔中,添加无菌0.01%聚-L-赖氨酸的55μL,并孵育〜在室温(RT)20分钟。
    2. 用1x PBS的200微升洗两次。存储与每孔200μL的1×PBS中的板在冰箱中,直到需要。
    3. 汽车efully从步骤1.1.9每孔在每个盖玻片的中心加入100微升细胞悬浮液(2×10 5 /100μL)的。
    4. 添加每任一最终的10mMMβCD或最终25nM的PMA的孔100μL。
    5. 离心机在370×g下与制动器5分钟。
    6. 孵育在37℃下2小时和5%CO 2。
    7. 离心机在370×g下与制动器5分钟。
    8. 固定细胞用PFA 155μL的4%,在塑料薄膜石蜡包装它们,并把它们在4℃下或在室温下10分钟过夜储存。
      注:有关由MβCD诱导NET形成的数据,参见Neumann 等。 15。

2.脂质分离和人血源性中性粒细胞的分析

  1. 隔离基于Bligh和Dyer的22和Brogden 人外周血来源粒细胞中的脂质 23
    1. 从步骤1.2.6以嗜中性粒细胞,将它们放在冰上。
    2. 在冰上,移液管将嗜中性粒细胞(存在于甲醇和氯仿溶液)至15mL螺旋盖玻璃管用聚四氟乙烯(PTFE)密封件和通过摇动1分钟均质化它们。用玻璃管,以防止脂质的结合到塑料表面。使用PTFE上限,以防止从橡胶/塑料污染。
    3. 加甲醇的2mL的随后1分钟后加入1毫升氯仿中。 1分钟再摇晃。
    4. 旋转在RT玻璃管和50rpm下30分钟。
    5. 通过离心在7℃下的溶液中,1952×g离心10分钟,沉淀蛋白级分。
    6. 小心倒出上清液到新的15个姆·格拉斯螺旋盖管中,留下含有蛋白质的沉淀物的后面。在-20℃下以供将来量化存储沉淀。
    7. 加入1毫升氯仿中,等待1分钟,加入1毫升的双蒸水,和与样品30秒反转玻璃螺丝帽管中。
    8. 离心机在7℃和1952×g离心10分钟并弃去上层相,向下,但不包括该浑浊层。
    9. 如果需要,执行由重复步骤2.1.8任选进一步的纯化步骤。
    10. 在真空中干燥浓缩样品在60℃,并将其在-20存储℃直至需要。
  2. 高效薄层层析(HPTLC)到半量化几个脂质,包括胆固醇,磷脂,鞘磷脂和的量
    1. 准备以下四个运行的解决方案和染色溶液。
      1. 溶液1:将乙酸乙酯(26.6%),1-丙醇(26.6%),氯仿(26.6%),甲醇(26.6%),和氯化钾(9.6%)。通过0.25克氯化钾溶解在100mL HPLC级水制备的KCl。
      2. 溶液2:将正己烷(73%),乙醚(23%)和柠檬酸(2%)。
      3. 解决方案3:100%正己烷。
      4. 准备用染色液与7.5克硫酸铜混合蒸馏水(90mL)中,然后添加10mL的磷酸。
    2. 填充在单独的玻璃腔室的各溶液为5毫米。添加任何一种过滤纸,以提高运行速度。在每个腔室。
    3. 直到运行溶液到达板的顶部预孵育在所述第一运行溶液20×10cm的HPTLC硅胶60玻璃板。然后干燥它在110℃10分钟。
      注意:这些板可以被存储在铝箔将来使用,并且在110℃下在使用前干燥10分钟。
    4. 溶于氯仿/甲醇的200μL从步骤2.1.10中获得的脂质颗粒(1:1)溶液中并在37℃孵育15分钟以溶解。
    5. 用尺子和软铅笔标记样品所需数量的装载点,再加上至少一个标准。标记的行驶距离在约4cm和6厘米为第一和第二行驶溶液,分别。
    6. 加载样品,洗10μL注射器3倍于氯仿/甲醇(1:1)加载的每个新样品之前。负载10μL各样品逐滴的,试图专心小的面积尽可能的样品。样品应至少一式两份加载。
    7. 放置板垂直地进入第一腔室与运行溶液1(步骤2.2.1.1)。确保板平行于该玻璃室的壁以获得均匀的迁移速度。
    8. 一旦溶剂线已达到第一标记,取出板,甩干,并将其放置在所述第二溶液中。重复第二和第三行驶的解决方案类似的步骤;离开板在溶液中直到溶剂前沿到达板的顶部,然后进行1分钟取出,干燥它在室温。
    9. 置于硫酸铜溶液板7秒。取出板,彻底干燥,并烘烤的烘箱中在170℃下7分钟。等待板冷却。
    10. USI纳克薄层色谱法和凝胶分析的软件,以及一个图象处理软件,扫描和通过Brogden 等人先前所描述的分析 23。
  3. 高效液相色谱法(HPLC)定量胆固醇的量
    1. 附加一个100×4.6mm柱,以5微米/4.6毫米保护柱和其加热到32℃。使用甲醇作为流动相在65巴的1毫升/分钟的流速和在202纳米的UV检测器测量来定量各样品中胆固醇的量。
    2. 洗HPLC机器之前彻底分析样品,执行以下步骤:清洗泵,洗涤针,漂洗罐,吹扫注射器,和洗涤泵净化。用清水洗净所有。最后,以5mL / min的流速为5分钟执行与甲醇的系统吹扫。
    3. 建立了胆固醇的标准曲线,制备至少4个浓度范围为0.05毫克/毫升至2mg /胆固醇在氯仿/甲醇中的溶液(1:1)24。
    4. 重悬在500微升的氯仿/甲醇中,从步骤2.1.10中获得的样品(1:1)与螺旋盖的红色PTFE /白色硅胶盖的琥珀色1.5毫升玻璃瓶中。
    5. 量化使用在步骤2.3.3制备的标准中的胆固醇浓度。
      注:填写采样协议,从至少一个标准和一个阴性对照,接着是样本。
    6. 表示结果的曲线下面积和使用任何统计软件合适的样品之间进行比较。
      注:测定结果,也可以根据标准曲线定量并且可以被表示为每毫升中的总胆固醇量,g或细胞的数目。标准曲线方程应当通过使用在步骤2.3.3中获得的值来计算。

教师的3.可视化和量化

  1. 可见教师的ualization
    注:网的可视化是基于Neumann 以前发表的作品 15。
    1. 从步骤1.3.8 3次用1×PBS的200μL洗涤固定的样品。
    2. 块和用100μL2%BSA,0.2%的Triton X-100透化在PBS中,每孔在RT下45分钟。
    3. 加入第一抗体的100μL:小鼠单克隆抗DNA组蛋白1抗体(稀释股票与2.2毫克/毫升1:5000在含有2%BSA和0.2%PBS的Triton X-100)或针对髓过氧化物酶的多克隆抗体(MPO;兔抗MPO;稀释1:在含有2%BSA和0.2%的Triton X-100)的PBS 300。在4℃下孵育过夜。
    4. 用1×PBS的200μL洗涤3次。
    5. 添加100μL的次级抗体(荧光标记的山羊抗 - 小鼠; 1:1000在BSA-PBS-的Triton X-100和山羊抗 - 兔; 1:1000 BSA-PBS-的Triton X-100)在1个小时RT在黑暗中。
    6. 用200&#洗3次181,L 1×PBS中。
    7. 使用镊子除去盖玻片并面朝下与含在载玻片上DAPI封固剂的3μL。
    8. 检查使用装备有PL HCX APO 40X 0.75-1.25油浸物镜15共焦倒基础荧光显微镜的样品。
  2. 净释放核的定量
    1. 打开图像处理软件( 例如,ImageJ的)和拖放感兴趣的图片放到工具栏。
    2. 点击"插件","分析"和"细胞计数"。
    3. 按在计数器窗口中的"初始化"按钮并选择计数器类型( 例如,点击7红色NET-释放细胞和8以黄色非释放细胞,如显示于图6B-III)。
      注:NET阳性细胞的标准:积极染绿核+密度较小胞核S(分叶的损失)或核的圆形形状+核的尺寸增大,或一个不同的胞外偏离拍的发生的损失。
    4. 点击每一个细胞附着于上述标准,写所计数的细胞数成分析软件的一个数据表。
    5. 计算使用NET-释放和非释放细胞的计数的细胞数NET-释放细胞的百分比。

结果

人血液来源的嗜中性粒细胞通过密度梯度离心( 图2)中分离。为了研究嗜中性粒细胞上的脂质改变的效果,将细胞用10mMMβCD,其从细胞耗尽胆固醇处理。随后,将脂质从通过Bligh和Dyer的( 图1,左图)的样品中分离,如通过Brogden 等人描述 23。将制备的脂质样品加载到使用三溶液协议,它已被优化,以分离和可视...

讨论

这里描述的方法可用于分析特定脂质,如胆固醇,通过HPTLC或HPLC,并调查药理脂质改变对教师的形成的影响(参见Neumann 15)。

HPTLC是分析大量样品的宽范围的脂质的相对成本有效且简单的方法。该方法已在许多研究领域,包括抗生素量化25,在溶酶体贮积症26脂质贮积,和胆固醇和cholesterylglucoside水平的上皮细胞<...

披露声明

作者什么都没有透露。

致谢

由Akademie的献给Tiergesundheit(AFT)和博士课程,奖学金的奖学金"动物和人畜共患病,"兽医,德国汉诺威大学,提供给阿恩·纳曼的这项工作得到了支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Neutrophil isolation, NET staining and quantification
Alexa Flour 633 goat anti-rabbit IgGInvitrogenA-21070
Anti-MPOα antibodyDakoA0398
BSASigma-Aldrich3912-100G
Marienfeld-Neubauer improved counting chamberCeleromicsMF-0640010
Confocal microscope TCS SP5 AOBS with tandem scannerLeicaDMI6000CS
Dulbecco´s PBS 10xSigma-AldrichP5493-1LDilute 1:10 in water for 1x working solution
Dy Light 488 conjugated highly cross-absorbedThermo Fisher Scientific35503
ExcelMicrosoft2010
DNA/Histone 1 antibodyMilliporeMAB3864
ImageJNIH1.8http://imagej.nih.gov/ij/
Light microscopeVWR630-1554
Methyl-β-cyclodextrinSigma-AldrichC4555-1G
PFACarl Roth0335.3dissolve in water, heat up to 65 °C and add 1 N NaOH to clear solution
PMASigma-AldrichP8139-1MGStock 16 µM, dissolved in 1x PBS
Poly-L-lysineSigma-AldrichP4707
PolymorphprepAXIS-SHIELDAN1114683
ProLong Gold antifade reagent with DAPIInvitrogenP7481
Quant-iT PicoGreen dsDNA ReagentInvitrogenP7581
RPMI1640PAAE 15-848
HBSS with CaCl and MgSigmaH6648
Triton X-100Sigma-AldrichT8787-50ml
TrypanblueInvitrogen15250-0610.4% solution
WaterCarl Roth3255.1endotoxin-free
NameCompanyCatalog Number Comments
Lipid isolation and analysis
1-propanolSigma-Aldrich33538
10 µL syringeHamilton701 NR 10 µl
Diethyl etherSigma-Aldrich346136
Ethyl acetateCarl Roth7336.2
Canullla 26 GBraun4657683
Copper(II)sulphatepentahydrateMerck1027805000
ChloroformCarl Roth7331.1
CP ATLAS softwareLazarsoftware2.0
Chromolith HighResolution RP-18 endcapped 100-4.6 mm columnMerck152022
High Performance Liquid Chromatograph ChromasterHitachiHITA 892-0080-30YParamaters are dependent on individual HPLC machine
HPLC UV DetectorHitachi5410
HPLC Column OvenHitachi5310
HPLC Auto SamplerHitachi5260
HPLC PumpHitachi5160
MethanolCarl Roth7342.1
n-HexaneCarl Roth7339.1
Phosphoric acidSigma-Aldrich30417
Potassium chlorideMerck49,361,000
PottersLAT Garbsen5 ml
SDSCarl RothCN30.3
HPTLC silica gel 60Merck105553
Vacufuge plus basic deviceEppendorf22820001
Corning Costar cell culture 48-well plate, flat bottomSigmaCLS3548
CoverslipThermo Fisher Scientific1198882
Glass slideCarl Roth1879
BD Tuberculin Syringe Only 1 mLBD Bioscience309659

参考文献

  1. Riethmuller, J., Riehle, A., Grassme, H., Gulbins, E. Membrane rafts in host-pathogen interactions. Biochim Biophys Acta. 1758 (12), 2139-2147 (2006).
  2. Shahbazian, H., Atrian, A., Yazdanpanah, L., Lashkarara, G. R., Zafar Mohtashami, A. Anti-inflammatory effect of simvastatin in hemodialysis patients. Jundishapur J Nat Pharm Prod. 10, e17962 (2015).
  3. Bavari, S., et al. Lipid raft microdomains: A gateway for compartmentalized trafficking of Ebola and Marburg viruses. J Exp Med. 195, 593-602 (2002).
  4. Zaas, D. W., Duncan, M., Rae Wright, ., J, S. N., Abraham, The role of lipid rafts in the pathogenesis of bacterial infections. Biochim Biophys Acta. 1746 (3), 305-313 (2005).
  5. Rohde, M., Muller, E., Chhatwal, G. S., Talay, S. R. Host cell caveolae act as an entry-port for group A streptococci. Cell Microbiol. 5 (5), 323-342 (2003).
  6. Grassme, H., et al. Host defense against Pseudomonas aeruginosa requires ceramide-rich membrane rafts. Nat Med. 9 (3), 322-330 (2003).
  7. Heung, L. J., Luberto, C., Del Poeta, M. Role of sphingolipids in microbial pathogenesis. Infect Immun. 74 (1), 28-39 (2006).
  8. Gatfield, J., Pieters, J. Essential role for cholesterol in entry of mycobacteria into macrophages. Science. 288 (5471), 1647-1650 (2000).
  9. Rapini, R. P., Bolognia, J. L., Jorizzo, J. L. . Dermatology 2-Volume Set. , (2007).
  10. Tamilselvam, B., Daefler, S. Francisella targets cholesterol-rich host cell membrane domains for entry into macrophages. J Immunol. 180 (12), 8262-8271 (2008).
  11. Garner, M. J., Hayward, R. D., Koronakis, V. The Salmonella pathogenicity island 1 secretion system directs cellular cholesterol redistribution during mammalian cell entry and intracellular trafficking. Cell Microbiol. 4 (3), 153-165 (2002).
  12. Gilk, S. D., et al. Bacterial colonization of host cells in the absence of cholesterol. PLoS Pathog. 9 (1), e1003107 (2013).
  13. Tuong, Z. K., et al. Disruption of Rorα1 and cholesterol 25-hydroxylase expression attenuates phagocytosis in male Roralphasg/sg mice. Endocrinology. 154 (1), 140-149 (2013).
  14. Bryan, A. M., Farnoud, A. M., Mor, V., Del Poeta, M. Macrophage cholesterol depletion and its effect on the phagocytosis of Cryptococcus neoformans. J Vis Exp. (94), (2014).
  15. Neumann, A., et al. Lipid alterations in human blood-derived neutrophils lead to formation of neutrophil extracellular traps. Eur J Cell Biol. 93 (8-9), 347-354 (2014).
  16. Brinkmann, V., et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 303 (5663), 1532-1535 (2004).
  17. von Köckritz-Blickwede, M., Nizet, V. Innate immunity turned inside-out: antimicrobial defense by phagocyte extracellular traps. J Mol Med. 87 (8), 775-783 (2009).
  18. Fuchs, T. A., et al. Novel cell death program leads to neutrophil extracellular traps. J. Cell Biol. 176 (2), 231-241 (2007).
  19. Lauth, X., et al. M1 Protein Allows Group A Streptococcal Survival in Phagocyte Extracellular Traps through Cathelicidin Inhibition. J Innate Immun. 1 (3), 202-214 (2009).
  20. Chow, O. A., et al. Statins Enhance Formation of Phagocyte Extracellular Traps. Cell Host Microbe. 8 (5), 445-454 (2010).
  21. Simons, K., Vaz, W. L. Model systems, lipid rafts, and cell membranes. Annu Rev Biophys Biomol Struct. 33, 269-295 (2004).
  22. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 37, 911-917 (1959).
  23. Brogden, G., Propsting, M., Adamek, M., Naim, H. Y., Steinhagen, D. Isolation and analysis of membrane lipids and lipid rafts in common carp (Cyprinus carpio L). Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. 169, 9-15 (2014).
  24. Saldanha, T., Sawaya, A. C., Eberlin, M. N., Bragagnolo, N. HPLC separation and determination of 12 cholesterol oxidation products in fish: comparative study of RI, UV, and APCI-MS detectors. J Agric Food Chem. 54 (12), 4107-4113 (2006).
  25. Hubicka, U., Krzek, J., Woltynska, H., Stachacz, B. Simultaneous identification and quantitative determination of selected aminoglycoside antibiotics by thin-layer chromatography and densitometry. J AOAC Int. 92 (4), 1068-1075 (2009).
  26. Maalouf, K., et al. A modified lipid composition in Fabry disease leads to an intracellular block of the detergent-resistant membrane-associated dipeptidyl peptidase IV. J Inherit Metab Dis. 33 (4), 445-449 (2010).
  27. Correia, M., et al. Helicobacter pylori's cholesterol uptake impacts resistance to docosahexaenoic acid. Int J Med Microbiol. 304 (3-4), 314-320 (2014).
  28. Gorudko, I. V., et al. Lectin-induced activation of plasma membrane NADPH oxidase in cholesterol-depleted human neutrophils. Arch Biochem Biophys. 516 (2), 173-181 (2011).
  29. Masoud, R., Bizouarn, T., Houée-Levin, C. Cholesterol: A modulator of the phagocyte NADPH oxidase activity - A cell-free study. Redox Biol. 3, 16-24 (2014).
  30. Knight, J. S., et al. Peptidylarginine deiminase inhibition is immunomodulatory and vasculoprotective in murine lupus. J Clin Invest. 123 (7), 2981-2993 (2013).
  31. Reichel, M., et al. Harbour seal (Phoca vitulina) PMN and monocytes release extracellular traps to capture the apicomplexan parasite Toxoplasma gondii. Dev Comp Immunol. 50 (2), 106-115 (2015).
  32. Chuammitri, P., et al. Chicken heterophil extracellular traps (HETs): novel defense mechanism of chicken heterophils. Vet Immunol Immunopathol. 129, 126-131 (2009).
  33. Palic, D., Ostojic, J., Andreasen, C. B., Roth, J. A. Fish cast NETs: Neutrophil extracellular traps are released from fish neutrophils. Dev Comp Immunol. 31 (8), 805-816 (2007).
  34. Ng, T. H., Chang, S. H., Wu, M. H., Wang, H. C. Shrimp hemocytes release extracellular traps that kill bacteria. Dev Comp Immunol. 41 (4), 644-651 (2013).
  35. Hawes, M. C., et al. Extracellular DNA: the tip of root defenses?. Plant Sci. 180 (6), 741-745 (2011).
  36. Brinkmann, V., Zychlinsky, A. Neutrophil extracellular traps: is immunity the second function of chromatin?. J Cell Biol. 198 (5), 773-783 (2012).
  37. Xu, T., et al. Lipid raft-associated β-adducin is required for PSGL-1-mediated neutrophil rolling on P-selectin. J Leukoc Biol. 97 (2), 297-306 (2015).
  38. Ermert, D., et al. Mouse neutrophil extracellular traps in microbial infections. J Innate Immun. 1 (3), 181-193 (2009).
  39. Metzler, K. D., Goosmann, C., Lubojemska, A., Zychlinsky, A., Papayannopoulos, V. A myeloperoxidase-containing complex regulates neutrophil elastase release and actin dynamics during NETosis. Cell Rep. 8 (3), 883-896 (2014).
  40. McGee, D. J., et al. Cholesterol enhances Helicobacter pylori resistance to antibiotics and LL-37. Antimicrob Agents Chemother. 55 (6), 2897-2904 (2011).

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