JoVE Logo

登录

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

脂肪体是昆虫中央代谢器官。我们目前活体器官的文化系统,使用户能够研究分离的脂肪体组织对各种刺激的反应。

摘要

昆虫的脂肪体扮演主角在昆虫代谢和营养存储,镜像功能的肝脏和脂肪组织中的脊椎动物。昆虫的脂肪体组织通常分布在昆虫全身。然而,它往往是集中在腹部和附加到身体腹壁。

蚊子脂肪体是关键产蛋的蛋黄蛋白的唯一来源。因此,蚊子脂肪体组织的体外文化代表的蚊子生理学研究的重要制度代谢,并最终产蛋。肥胖的身体文化过程始于溶液和试剂,包括氨基酸股票解决方案、白纹伊蚊盐股票生理盐水 (APS)、 钙股票解决方案,以及脂肪体培养基的制备。脂肪体夹层,其次是实验性的治疗继续该过程。治疗后,可以执行各种不同的分析,包括 RNA 序列 (RNA Seq)、 qPCR、 西方墨水、 蛋白质组学、 代谢组学。

在我们的示例实验中,我们说明了通过切除和脂肪体文化协议从黄热病蚊子,,虫媒病毒包括登革热、 基孔肯亚热和 Zika 主矢。从已知的上调蛋黄蛋白与控制生理条件下培养的脂肪体 RNA 受到 RNA 序列分析,表明本程序用于基因表达调查潜在的效用。

引言

蚊子是破坏性的人类疾病,包括疟疾、 登革热、 基孔肯亚热和 Zika123向量。尽管激烈的国际努力来制止这些疾病的发生,控制传播疾病的蚊子,蚊子传染的疾病疫情是仍很常见,尤其是在发展中国家。有效的疫苗对抗许多这类疾病是不可用或效力有限的45。防止疫情的最有效途径是控制蚊子种群,主要使用杀虫剂处理。然而,杀虫剂的抗药性已在许多蚊子种群发展,成为一个共同的问题,围绕世界678。蚊子生理学研究的新型工具和战略,以控制疾病的发展至关重要。

蚊子脂肪体贮藏营养、 代谢平衡、 复制和异生分解代谢9101112中央的作用。它是甘油三酯、 糖原和形式的贮藏蛋白质中氨基酸的主要存储机构。它也可以作为大多数血淋巴蛋白和代谢产物合成的位置。肥胖的身躯在蚊子之后他们采取血粉1314, 发生在女性的卵黄蛋白生产的唯一来源。

肥胖的主要细胞类型是身体的大型、 多倍体的滋养细胞或脂肪细胞391012。脂肪体组织组织成裂片或鞘和可以见于所有身体部位的蚊子,与最大的部分,位于的腹部的脂肪体大裂片相连的身体腹壁。

这里介绍的蚊子脂肪体文化系统开发了在 70 年代和仍然是研究肥胖的身体生理10,尤其是在当前分析技术结合的有力工具。这种技术的基础基于身体腹壁和关联的脂肪体组织的隔离。腹部的角质层的疏水性质使其漂浮在培养基中,与附加的裂片的沉浸的腹部脂肪体的表面。气门和 tracheolar 结构进行维护,确保培养组织氧合。今后,我们将这些准备工作称为"脂肪体"。孤立的脂肪体存活超过 12 小时时孵化在适当的媒介 (未发表的结果)。脂肪体文化是一个宝贵的工具,已解决各种问题关于脂肪体内分泌学和生理学910121516 17

体外培养的脂肪体可以遭受各种实验和控制的处理,可由调查员后决定的时间。在年底的潜伏期,脂肪体可以收集和处理下游的分析,包括 qPCR16171819,印迹18 20、 蛋白质组学21或代谢组学22。可以在不同的尺度,从群体可以共同培养的几百个人脂肪体上执行实验。

这里包括代表结果来自脂肪体培养氨基酸和类固醇激素 20-羟基蜕皮激素来模拟卵黄1617,血粉激活 2324。我们进行了分析和比较基因差异表达的不激活与活化脂肪体通过下一代测序分析。

研究方案

1.制备溶液和试剂

  1. 氨基酸原液
    1. 准备 4 X 氨基酸原液 23 24 用称重和20 不同氨基酸添加浓度在 表 1 中给出的锥形瓶。
      注: 在某些情况下,amino acid(s) 可以排除在解决,取而代之的是等摩尔量的甘露醇,以保持平等的渗透调节物质含量。
    2. 添加适量的 ddH 2 O,生产所需的数量的解决方案。
    3. 以确保,氨基酸有完全溶解,文火加热时不断搅拌,直到液体已完全清除; 它将作出轻微的黄色色调。
      注意: 它可能需要降低 ph 值至 6 由加入盐酸,允许一些更加疏水性氨基酸,解散。
    4. 分装解决方案和无菌过滤使用注射器过滤器与 0.2 µ m 孔径大小。
    5. 存储在密封的容器,在-20 ° C 至 6 个月。
  2. AP
    注: 见 第 25
    1. 20 X 盐原液,结合 表 2 中列出在 50 毫升的水中的盐。搅拌,直到完全溶解。
      注意: 它可能需要稍热解决方案完全溶解盐。
    2. 无菌过滤器针头式过滤器用 0.2 微米孔径大小和存储解决方案在 50 毫升筒在-20 ° C.
  3. 钙股票解决方案
    1. X 钙股票溶液 50,将 0.90 g 氯化钙的添加到 100 毫升的水 (表 3); 搅拌,直到完全溶解。
    2. 无菌过滤器使用注射器带通滤波器的 0.2 微米孔隙大小,分装解决方案到 50 毫升管,并储存在-20 ° C.
  4. 三缓冲区 (pH 7.4)
    1. 为招聘缓冲,盐与 表 4 中列出的解决方案相结合,并添加 ddH 2 O 达 100 mL。
    2. 无菌过滤器使用注射器过滤 0.2 微米孔隙大小与分装进 50 毫升管溶液; 储存在室温。
  5. 脂肪体培养基
    1. 准备脂肪体培养基,准备上面列出的所有解决方案。
    2. 结合他们根据 表 5,使 200 毫升的脂肪体培养基中卷。
    3. 调节 pH 至 7.2 使用 NaOH 或 HCl。
    4. 无菌过滤解决方案使用注射器过滤器与 0.2 微米孔隙大小。
    5. 解决方案分为 15 毫升和储存在-20 ° C,6 个月。

2。准备清扫

  1. 准备体视显微镜 (10-20 倍放大) 的照明设备和布置两个超精细镊子和一把剪刀微解剖。
  2. 准备所有解决方案所需的实验。解冻至室温的脂肪体培养基。
    注意: 沉淀能溶解的轻轻该溶液加热到不高于 30 ° C.
  3. 与吸气,收集成年雌性蚊子 (3-7 天后出现) 和麻醉他们使用二氧化碳或冰
    注意: 一旦麻醉,蚊子应该根据 CO 2 最短的时间可能不超过 20 分钟,或者,蚊子可以在冰上麻醉和保持大约 30 分钟
  4. 准备与 AP 每口井的 3 毫升 6 孔板。

3。脂肪体夹层

  1. 集中夹层体视显微镜和调节到舒适的高度椅子。
  2. 凹玻片置于显微镜表面和向中心添加两滴 APS。
  3. 的一条腿,用镊子拿起一只蚊子并将它转移到 APS 表面显微镜幻灯片上。
  4. 仔细紧抓蚊子的腹部,左手,钳和旋转蚊子,使腹边向上。
  5. 同时胸部保持身体稳定,用镊子在右手里,抓住最后两个腹段,并将轻轻拉。
    注: 腹部的最后两段分开将腹部和附加的卵巢、 马氏管、 后肠和中肠;有时这种作物会滑出腹部。如果他们不被删除,提示关门的钳插入小孔创建和删除其余组织。
  6. 设置右钳放在一边,拿起弹簧剪刀。一个刀片式服务器滑进洞腹部到胸部以下的部分。轻轻地、 迅速地腹部纵向切。
    注意: 一旦取得了伤口,腹部应该开始扩大向外,虽然这可能不会立即发生。
  7. 继续进行第二个切口,将横向切割低于胸部,略低于第一次切割结束的地方。
    注: 腹部应该开放然后从胸部上的角质层与脂肪体侧沉浸在 APS 游离。这腹壁的身体是 体外 培养的脂肪体准备。
  8. 电梯从 AP 解决方案使用的镊子尖端脂肪体和将它们从溶液转移到含 AP 在室温的 6 孔板。允许组织推进到脂肪体文化之前休息大约 0.5 h。

4。肥胖的身体文化

  1. 孵育 AP 上的脂肪体,在室温下至少 0.5 h 来平衡他们。
  2. 传输使用的钳尖端的脂肪体和轻轻地将它们从 AP 溶液。降低提示脂肪体培养液中。
    注: 脂肪体应开放介质的表面上和自由浮动。肥胖的身体文化,通常会在 96 孔板,与介质在每口井的 150-200 微升。一个可以适合达三个人脂肪体,和他们都超过 12 小时 (未发表个人结果) 并不可行。
  3. 后潜伏期,转化为脂肪体从介质中包含适当的试剂为下游加工的 1.5 mL 离心管。
    注: 典型的分析包括 qPCR 16 17 18 19,印迹 18 20 26 转录组学、 蛋白质组学 21 或代谢组学 22

结果

作为一个例子,我们进行了脂肪体文化实验和刺激孤立的脂肪体通过孵化它们对一个包含所有二十种天然氨基酸和昆虫类固醇激素 20-羟基蜕皮 (10 µ M) 为 6 h 的平衡的混合物的解决方案.作为对照,脂肪体孵育在 AP 上相当长的时间。

孵化后总 RNA 是孤立使用三试剂27按照制造商的说明。提取的 RNA 样品的质量进行评估使用分光光度法、 荧光定量和琼脂糖凝胶电泳。RNA 序列库使用 4 μ g 的总 RNA 生成和进行量化使用两个不同的技术。随后,图书馆被送往商业供应商配对末端测序。

这次实验的结果是表 6所示。基因显示对氨基酸和 20-羟基蜕皮酮的最强转录反应是主要卵黄蛋白基因,与以前的结果11

图 1显示热地图指示的 1,256 基因的表达水平差异表达基因片段体外培养脂肪体后两种不同方法治疗。

figure-results-754
图 1.热图,基因表达在脂肪体文化。基于特定成绩单使用是 R 软件环境的一部分热图包28不同库中的每个基因数目计算热图。暗的阴影代表更高的基因表达。1,256 基因的表达显著变化 (Q 值 < 0.05) 显示。基因排序按照他们平均的表达水平,由树状图显示在左边 (而不是根据其亲缘关系) 表示。注意到大量的氨基酸 (AA) 与 20-羟基蜕皮酮 (20E) 刺激后向上或向下调控表达的基因。AP =白纹伊蚊生理盐水。基因和他们相对表达水平的列表,请参见补充文件 1 请点击这里查看此图的大版本。

氨基酸相对分子质量 g/molmM 浓度毫克 / 升300 毫升体积毫克
丙氨酸89.126.682377.19713.16
精氨酸174.226.684647.661394.3
天冬酰胺保单增加 150.126.684004.671201.4
天冬氨酸13326.683548.441064.53
半胱氨酸121.1610.681293.99388.2
谷氨酸147.126.683924.631177.39
谷氨酰胺14626.683895.281168.58
甘氨酸7553.3239991199.7
组氨酸155.168012412.83723.84
异亮氨酸13110.681399.08419.72
甜菜碱18326.684882.441464.73
亮氨酸13126.683495.081048.52
苯丙氨酸16510.681762.2528.66
脯氨酸11526.683068.2920.46
丝氨酸10553.325598.61679.58
苏氨酸11910.681270.92381.28
色氨酸20410.682178.72653.62
酪氨酸1815.32962.92288.88
缬氨酸11710.681249.56374.87
蛋氨酸14910.681591.32477.4

表 1。4 x 氨基酸原液。

组件在添加到 50 毫升 ddH2O 克重量
氯化钠8.0 g
氯化钾0.074 g
氯化镁2-6 H2O0.120 g
碳酸氢钠30.0250 g

表 2.20 X 盐股票解决方案。

组件重量在克加入 100 毫升 ddH2O
CaCl2-2 H2O0.90 g

g > 表 3。50 x 钙股票解决方案。

组件股票的溶液的浓度蓄积量为 100 毫升缓冲区的
三 pH8.01 米5 毫升
乙二胺四乙酸0.25 M2 毫升
氯化钠NA0.3 g
ddH2ONA到 100 毫升 (mL ~ 93)

表 4.三缓冲区。

组件蓄积量为 200 毫升
氨基酸原液150 毫升
盐原液10 毫升
钙股票解决方案4 毫升
工商业污水附加费缓冲区10 毫升
ddH2O26 毫升

表 5.脂肪体培养基

注释基因描述褶皱变化P 值
AAEL006138卵黄蛋白原 B34432.52E-112
AAEL006126卵黄蛋白原 C27958.64E-91
AAEL006563卵黄羧肽酶10022.17E-119
AAEL010434卵黄蛋白原 A2201.14E-27
AAEL006542卵黄羧肽酶1852.14E-65
AAEL012678AAEL003006-PA [白纹伊蚊 aegypti](65%)964.00E-70
AAEL000080假设蛋白826.69E-188
AAEL015312卵黄组织蛋白酶 B771.27E-15
AAEL009588核受体 3754.58E-56
AAEL010529假设蛋白661.32E-29

表 6.实验的结果。

补充文件 1。请点击这里下载此文件。

讨论

广泛用于昆虫器官培养研究昆虫内分泌学、 发展和代谢功能,探讨特定的器官与共生细菌293031,之间的相互作用 323334体外脂肪体器官培养专门用于研究氨基酸运输及卵黄蛋白生产的蚊子和其他双翅目161735规例 》,36.在卵黄发生的过程中,蚊子脂肪体使用数组的特异性高氨基酸转运载体从血淋巴,合成大量的卵黄蛋白12 导入血粉衍生的氨基酸193536。肥胖的身体文化是有助于在这方面18的脂肪体营养要求划定。

起始物料,雌性蚊子,质量是这些实验成功的关键。在下拥挤的环境中成长和通常对高营养饲喂蚊子幼虫产生最好的结果。有一些重要的变量,建立蚊子脂肪体文化条件在实验室在实验设计时要考虑。我们在以往的研究脂肪体基因表达存在显著差异取决于个人的生活史和营养状况的蚊子1122展示。蚊子文化条件应该是一致的以减少大小的变化程度和实验蚊子的营养储备。此外,应培训人员执行夹层动脉瘤,以确保快速、 准确,夹层动脉瘤的结果一致。可以使用不同染色方法3738检查孤立脂肪体内细胞活力。

肥胖的身体文化实验的实验设计应考虑到夹层动脉瘤的数量可能在给定的时间段。需要大量的脂肪体时,可能需要多个夹层会话或多个解剖器。有是今后申请体外脂肪体文化在蚊子和其他昆虫的种类繁多。它将用于测试潜在的候选药物来控制昆虫尤其有用。转基因技术在昆虫来表达特定的记者蛋白质脂肪体滋养层细胞中的使用将开放发展强大生物鉴定为脂肪体生理研究的新方法。

披露声明

我们没有什么可披露。

致谢

这项研究由美国国立卫生研究院授予 #SC1AI109055,支持 2014年的设计 HHMI 补助金 #52008103 和 NSF PGR 补助金 #1238731。我们感谢与会者设计春天 2015 BIOL302 分子方法类和地位巴蒂亚的脂肪体文化实验技术支持。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Scissors Fiskars83872
Fly padGenesee Scientific789060
Battery-powered aspirator w/ collection vialHausherrs Machine Works, Inc.3740-01-210-2368
Fine tip forcepsWorld Precision Instruments, Inc. 500085
Light microscope Leica Microsystems
96 well plate SigmaCL S3383
SucroseSigmaS9378
AlanineSigmaA7627
ArginineSigmaA5006
AsparagineSigmaA0884
Aspartic AcidSigmaA9256
CysteineSigmaW326305
Glutamic AcidSigmaG1251
GlutamineSigmaG3126
GlycineSigmaG2879
HistidineSigmaH6034
IsoleucineSigmaI2752
LysineSigmaL5501
LeucineSigmaL8000
PhenylalanineSigmaP2126
ProlineSigmaP0380
SerineSigmaS4500
ThreonineSigmaT8625
TryptophanSigmaT0254
TyrosineSigmaT3754
ValineSigmaV0500
MethionineSigmaM9625
NaClSigmaS7653
KClSigmaP9333
MgCl2-6H2OSigmaM2670
NaHCO3SigmaS5761
CaCl2-2H2OSigmaC8106
Tris pH8.0 SigmaT1503
EDTASigmaE6758
ddH2OSigmaW4502

参考文献

  1. Benelli, G., Mehlhorn, H. Declining malaria, rising of dengue and Zika virus: insights for mosquito vector control. Parasitol Res. 115 (5), 1747-1754 (2016).
  2. Newby, G., et al. The path to eradication: a progress report on the malaria-eliminating countries. Lancet. 387 (10029), 1775-1784 (2016).
  3. Clements, A. N. . The Biology of Mosquitoes. 2, (1992).
  4. Long, C. A., Zavala, F. Malaria vaccines and human immune responses. Curr Opin Microbiol. 32, 96-102 (2016).
  5. Mendis, K. N., David, P. H., Carter, R. Human immune responses against sexual stages of malaria parasites: considerations for malaria vaccines. Int J Parasitol. 20 (4), 497-502 (1990).
  6. Frings, S., Lindemann, B. Odorant response of isolated olfactory receptor cells is blocked by amiloride. J Membr Biol. 105 (3), 233-243 (1988).
  7. Froese, A., Szyszka, P., Menzel, R. Effect of GABAergic inhibition on odorant concentration coding in mushroom body intrinsic neurons of the honeybee. J Comp Physiol A Neuroethol Sens Neural Behav Physiol. 200 (3), 183-195 (2014).
  8. Yewhalaw, D., et al. Multiple insecticide resistance: an impediment to insecticide-based malaria vector control program. PLoS One. 6 (1), e16066 (2011).
  9. Arrese, E. L., Soulages, J. L. Insect fat body: energy, metabolism, and regulation. Annu Rev Entomol. 55, 207-225 (2010).
  10. Raikhel, A. S., Deitsch, K. W., Sappington, T. W., Crampton, J. M., Beard, C. B., Louis, C. . The Molecular Biology of Insect Disease Vectors: A Methods Manual. , 507-522 (1997).
  11. Price, D. P., et al. The fat body transcriptomes of the yellow fever mosquito Aedes aegypti, pre- and post- blood meal. PLoS One. 6 (7), e22573 (2011).
  12. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Rodriguez, S. D., Drake, L. L. Four-way regulation of mosquito yolk protein precursor genes by juvenile hormone-, ecdysone-, nutrient-, and insulin-like peptide signaling pathways. Front Physiol. 5, 103 (2014).
  13. Raikhel, A. S., Dhadialla, T. S. Accumulation of yolk proteins in insect oocytes. Annu Rev Entomol. 37, 217-251 (1992).
  14. Raikhel, A. S., et al. Molecular biology of mosquito vitellogenesis: from basic studies to genetic engineering of antipathogen immunity. Insect Biochem Mol Biol. 32 (10), 1275-1286 (2002).
  15. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Chandrasekar, R. Ch. 6. Short Views on Insect Molecular Biology. , (2009).
  16. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Park, J. H., Peng, Q., Raikhel, A. S. Target of rapamycin-mediated amino acid signaling in mosquito anautogeny. Proc Natl Acad Sci USA. 101 (29), 10626-10631 (2004).
  17. Hansen, I. A., Attardo, G. M., Roy, S. G., Raikhel, A. S. Target of rapamycin-dependent activation of S6 kinase is a central step in the transduction of nutritional signals during egg development in a mosquito. J Biol Chem. 280 (21), 20565-20572 (2005).
  18. Attardo, G. M., Hansen, I. A., Shiao, S. H., Raikhel, A. S. Identification of two cationic amino acid transporters required for nutritional signaling during mosquito reproduction. J Exp Biol. 209 (Pt 16), 3071-3078 (2006).
  19. Carpenter, V. K., et al. SLC7 amino acid transporters of the yellow fever mosquito Aedes aegypti and their role in fat body TOR signaling and reproduction. J Insect Physiol. 58 (4), 513-522 (2012).
  20. Attardo, G. M., Higgs, S., Klingler, K. A., Vanlandingham, D. L., Raikhel, A. S. RNA interference-mediated knockdown of a GATA factor reveals a link to anautogeny in the mosquito Aedes aegypti. Proc Natl Acad Sci USA. 100 (23), 13374-13379 (2003).
  21. Hugo, L. E., et al. Proteomic biomarkers for ageing the mosquito Aedes aegypti to determine risk of pathogen transmission. PLoS One. 8 (3), e58656 (2013).
  22. Price, D. P., Schilkey, F. D., Ulanov, A., Hansen, I. A. Small mosquitoes, large implications: crowding and starvation affects gene expression and nutrient accumulation in Aedes aegypti. Parasit Vectors. 8, 252 (2015).
  23. Uchida, K., et al. Induction of oogenesis in mosquitoes (Diptera: Culicidae) by infusion of the hemocoel with amino acids. J Med Entomol. 38 (4), 572-575 (2001).
  24. Uchida, K., Ohmori, D., Yamakura, F., Suzuki, K. Changes in free amino acid concentration in the hemolymph of the female Culex pipiens pallens (Diptera: Culicidae), after a blood meal. J Med Entomol. 27 (3), 302-308 (1990).
  25. Hayes, E. Determination of a physiological saline solution for Aedes aegypti .(L). J Econ Entomol. 46 (4), 624-627 (1953).
  26. Price, D. P., et al. The Fat Body Transcriptomes of the Yellow Fever Mosquito Aedes aegypti, Pre- and Post Blood Meal. Plos One. 6 (7), e22573 (2011).
  27. Chomczynski, P., Mackey, K. Short technical reports. Modification of the TRI reagent procedure for isolation of RNA from polysaccharide-and proteoglycan-rich sources. Biotechniques. 19 (6), 942-945 (1995).
  28. Fujiwara, T., Kazawa, T., Haupt, S. S., Kanzaki, R. Postsynaptic odorant concentration dependent inhibition controls temporal properties of spike responses of projection neurons in the moth antennal lobe. PLoS One. 9 (2), e89132 (2014).
  29. Larsen, W. P. Growth in an insect organ culture. J Insect Physiol. 13 (4), 613-619 (1967).
  30. Judy, K. J., et al. Isolation, Structure, and Absolute Configuration of a New Natural Insect Juvenile Hormone from Manduca sexta. Proc Natl Acad Sci USA. 70 (5), 1509-1513 (1973).
  31. Marks, E. P. The action of hormones in insect cell and organ cultures. Gen Comp Endocrinol. 15 (2), 289-302 (1970).
  32. Hughes, G. L., Pike, A. D., Xue, P., Rasgon, J. L. Invasion of Wolbachia into Anopheles and Other Insect Germlines in an Ex vivo Organ Culture System. PLoS One. 7 (4), e36277 (2012).
  33. Postlethwait, J. H., Handler, A. M. Roles of Juvenile-Hormone and 20-Hydroxy-Ecdysone during Vitellogenesis in Isolated Abdomens of Drosophila melanogaster. J Insect Physiol. 25 (5), 455-460 (1979).
  34. Spielman, A., Gwadz, R. W., Anderson, W. A. Ecdysone-initiated ovarian development in mosquitoes. J Insect Physiol. 17 (10), 1807-1814 (1971).
  35. Boudko, D. Y., et al. Substrate specificity and transport mechanism of amino-acid transceptor Slimfast from Aedes aegypti. Nat Commun. 6, 8546 (2015).
  36. Fleischer, J., Bumbalo, R., Bautze, V., Strotmann, J., Breer, H. Expression of odorant receptor Olfr78 in enteroendocrine cells of the colon. Cell Tissue Res. 361 (3), 697-710 (2015).
  37. Jones, K. H., Senft, J. A. An improved method to determine cell viability by simultaneous staining with fluorescein diacetate-propidium iodide. J Histochem Cytochem. 33 (1), 77-79 (1985).
  38. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr Protoc Immunol. A3B, (2001).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

126

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。