向上移动: 一个简单而灵活的体外三维入侵检测协议

摘要

该协议描述了一种倒置垂直入侵检测方法, 可用于量化三维环境中细胞的迁移和入侵能力, 同时保持细胞微环境。本试验适用于稀有和/或敏感细胞。

摘要

尽管已经开发了3D 种入侵检测, 但在不影响其微环境完整性的情况下研究细胞仍然是一个挑战。传统的3D 检测 (如博伊登室) 要求细胞从原始的文化位置迁移到新的环境中。这不仅扰乱了微环境固有的细胞过程, 而且常常导致细胞的丧失。这些问题在处理罕见的细胞, 或对其微环境极其敏感时尤其具有挑战性。在这里, 我们描述了一个3D 入侵检测的发展, 避免了这两个问题。在这个实验中, 细胞被镀在一个小井里, 一个含有趋化因子的 ECM 矩阵被放置在细胞之上。这不需要细胞移位, 并且允许细胞向上侵入母体。在这种检测中, 细胞侵袭以及细胞形态学可以在胶原凝胶内进行评估。利用这一方法, 我们对稀有和敏感细胞的侵袭能力进行了表征;由乳腺癌细胞 MCF7 和间充质/多向干细胞 (MSCs) 融合而成的混合细胞。

引言

细胞运动是细胞的正常发育和生理过程。然而, 细胞迁移和侵袭的模式和能力的变化与病理状况有关, 包括炎症性疾病和肿瘤转移^1,2,3。转移可以说是癌症中最不了解的方面。对于转移, 癌细胞必须降解额外的细胞基质 (ECM), 侵入局部组织和 intravasate。一旦循环, 癌细胞就会传播到远处的部位, extravasate 并形成次生肿瘤。因此, 细胞降解 ECM、迁移和入侵的能力与它们的转移电位有关。对细胞的迁移和入侵能力进行了分析和量化, 并提出了不同的方法。最常用的方法包括伤口愈合试验、时间推移显微镜和博伊登室化验。创伤愈合试验⁴和时间失效显微镜是简单和方便的化验, 将初步了解细胞迁移。但是, 这两种检测都是2D 检测, 不反映单元格存在体内的3D 环境。研究表明, 与2D 一个^5、6相比, 单元格对3D 环境的响应不同。此外, 伤口愈合化验难以重现, 并产生定量结果^7,8,9。细胞排斥区的检测, 这是一个3D 修改的伤口愈合化验, 是一个更生理学相关的化验, 但它不适合的细胞数低, 如混合细胞产生的细胞融合事件^10,11.

博伊登室化验是一项3维的化验, 为细胞研究提供相关的微环境。然而, 它要求细胞从原来的微环境中移除, 并存放到博伊登化验系统的上腔中, 以便向含有培养基的趋化因子迁移并向下侵入。此3D 方法不适用于分析易受其微环境影响的细胞的迁移和入侵能力, 并且/或限制在数字^10、11、12中。一个新的方法来分析细胞迁移和入侵是微流控梯度室化验¹³。虽然在迁移和入侵研究中, 这种方法是适当和可靠的, 但这种检测方法更昂贵, 在技术上对一个典型的实验室具有挑战性。这里我们描述了一个简单的倒置垂直入侵检测, 它与许多细胞类型兼容, 包括对其微环境敏感的细胞和/或数量限制。这项化验是根据霍普. et . 提出的协议改编的。¹⁴. 在本实验中, 细胞保持在原微环境中, 当它们在含有趋化因子¹¹的胶原凝胶中向上移动时, 它们的迁移和侵入受到监测。本试验重现性好, 在35毫米培养皿中进行了优化和验证。它可以适应不同的检测条件, 包括不同的细胞培养大小, 不同的基质或黏附力, 以及不同的趋化因子。这种检测可以作为一种体外平台, 用于药物发现过程的初步筛选。

研究方案

注意: 此协议在麦卡德尔et中描述。¹¹. 在图 1中提供了时间线。

1. 培养板的制备

1. 用1毫升1米盐酸 (HCl) 洗涤35毫米培养皿, 含10毫米的玻璃底井, 以降低玻璃底部的疏水性。
2. 用1毫升磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 洗两次培养板, 除去所有的 HCl。
3. 用1毫升70% 乙醇洗两次培养板。
4. 用1毫升的细胞特定培养基冲洗培养基 (在这里, 使用α-记忆补充10% 热灭活血清和1% 非必需氨基酸)。
   注意:包含培养基培养基的经处理的培养板可存储在 CO₂孵化器中, 其加湿器为37摄氏度, 至第二天。
5. 生长细胞 (MSCs 和 MCF-7 共培养) 在被处理的玻璃底部井的35毫米培养皿到100% 融合。共培养3.5万的 MSC 细胞和 7.5万 MCF7 细胞为 24 h。

2. 胶原凝胶的制备

1. 存储用于吹打胶原凝胶的微提示, 防止胶原蛋白在接触时聚合。
   注意:这是最关键的一步。
2. 根据胶原蛋白的浓度, 确定大鼠尾胶原的体积。制备100µL 胶原凝胶。
   注意:高浓度的大鼠尾胶原我的股票工作更好。确定 10x Dulbecco 的改性鹰培养基的体积, 以相应稀释胶原蛋白。
3. 结合冰鼠尾胶原蛋白 I (3.8 µg/毫升), 10x Dulbecco 的改良鹰的培养基和1x 细胞培养培养基补充2% 胎牛血清和适当的趋化蛋白, 以最终浓度的胶原2.4 毫克/毫升。
4. 加入4.5% 碳酸氢钠溶液的混合物中和胶原凝胶。
   注意:所添加的碳酸氢钠溶液的体积根据其他试剂的确切 pH 值可能会有所不同。最好是用 ph 条来测试混合物, 以确保中性溶液, 或者在培养基中使用 ph 指示剂。
5. 放置80µL 的胶原蛋白混合物在细胞内的玻璃底部井的文化菜。
6. 允许胶原凝胶在 CO₂孵化器中聚合30分钟, 加湿器为37摄氏度。
7. 用2毫升的细胞培养基与减少的血清 (2%) 覆盖胶原凝胶, 并在 CO₂孵化器中孵育37摄氏度的细胞, 其中有24、48或 72 h 的加湿器。
   警告:该钢板应小心处理, 以防止胶原凝胶从玻璃底部分离。

3. 用3.8 µg/毫升的大鼠尾胶原蛋白制备胶原凝胶的实例

1. 在冰上, 结合114.5 µL 的大鼠尾胶原蛋白, 16.6 µL 10x DMEM, 33.1 µL 的培养基中含有趋化因子。
2. 用14.0 µL 碳酸氢钠中和胶原蛋白混合物。
3. 继续执行步骤2.5。

4. 细胞的成像

1. 轻轻地从盘子中取出介质。
2. 用1毫升的 PBS 轻轻冲洗凝胶。
3. 用1毫升4% 多聚甲醛的细胞固定15分钟。
4. 用1毫升的 PBS 冲洗两次细胞。
5. 在室温下用 DAPI 溶液 (100 ng/毫升) 将细胞染色20分钟。
6. 在不同位置使用共聚焦显微镜对细胞进行图像处理, 并在16µm 步骤中拍摄每个位置的400µm z 叠加图像。使用的显微镜有一个磁盘扫描单元, 使共焦成像使用白光, 弧励磁源。使用20X 透镜, 数值孔径为0.75。
7. 重建图像。
   1. 打开一个给定的凝胶 (大约25图像) 的图像, 并通过点击图像→堆栈→图像堆叠创建图像栈。第一个图像对应于凝胶的底部 (z = 0 µm), 第二个图像对应于第一步在 z 方向 (z = 16 µm), 第三个图象对应了到第二个步在 z 方向 (z = 32 µm)。评估每个核在每个图像的深度和指定的深度, 核是最尖锐的焦点作为入侵深度的特定细胞。

结果

我们使用了一个35毫米培养皿与玻璃底部和鼠尾胶原 i 开发和优化体外3D 入侵检测协议。利用这一方法, 我们表明, 乳腺癌细胞 MCF7 和 MSC 细胞可能侵入胶原凝胶到平均距离 0.04 1.8 µm, 41.3 IGF1 76.0 µm 分别在 48 h 时 (18.6 ng/毫升) 被用作趋化因子 (图 2)。更重要的是, 我们表明, 从 MSC 和 MCF7 细胞的融合产品, 这是罕见的细胞, 可能侵入胶原凝胶以及。?...

讨论

在这里, 我们描述了一个简单的倒置垂直入侵检测, 这是方便的各种细胞类型, 包括细胞是罕见的和/或依赖于其微环境。在这3D 入侵检测中, 细胞保持在原微环境中, 并被含有趋化蛋白的胶原凝胶所覆盖。细胞然后迁移和侵入胶原蛋白。在这种化验中, 细胞可以被染色和容易地监测在凝胶内。该方法的简便、重现性使其成为研究3D 系统中癌细胞迁移和侵袭的方便工具。然而, 强烈的趋化因子似乎需要?...

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
MatTek P35G-1.5-10C	MatTek Corporation, Ashland, MA	P35G-1.5-10-C	mattek glass bottom dishes
Rat tail collagen I	Corning, Corning, NY, USA	354236	Collagen gel
Hydrochloric acid	Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA	H1758	HCl
Phosphate buffered saline	Thermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, USA	10010023	PBS
10X Dulbecco's Modified Eagle's Medium	Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA	D2429	10X DMEM
Sodium bicarbonate	Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178 USA	S5761	NaHCO3
Confocal Fluorescent microscope	Olympus America, Center Valley, PA, USA	Olympus IX81	Confocal  microscope
Defined Fetal Bovine Serum	GE Healthcare Life Sciences HyClone Laboratories, Utah, USA	SH30070.03	FBS
Ti:Sapphire multi-photon laser scanning microscope	Prarie Technologies, Sioux Falls, SD, USA	40x NA 0.8 objective	MPLSM
Imaris software	Bitplane Inc. Zurich, CH	Imaris 7.5.2	Imaris software
DAPI	Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, USA	D9542	DAPI
Paraformaldehyde	Thermo Fisher Scientific Inc., Whaltham, MA, USA	50980487	PFA
α-minimum essential medium	Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 63178, USA	M0894
MDA-MB-231	ATCC; Manassas, VA, USA	HBT-22
MSC	Trivedi and Hematti, 2007
20X lens UPLAPO	Olympus America, Center Valley, PA, USA	36-064	Olympus UPLSAPO 20X Objective