凸出力显微镜: 一种量化细胞突起力的方法

摘要

在这里, 我们详细介绍了用于评估 podosomes 在兼容薄膜上应用的突出力的实验技术, 从薄膜的制备到地形图像的自动分析。

摘要

在许多生物学环境中, 动物细胞需要通过培养机械力来与环境相互作用。其中, 牵引力具有良好的特征, 但缺乏技术允许测量正交细胞所施加的凸出力。我们设计了一个实验装置来测量附着细胞在基板上施加的凸出力。在兼容的 Formvar 板上镀的细胞变形了这种基底, 由此产生的地形被原子力显微镜 (AFM) 在纳米尺度上映射。然后从基于突出细胞结构几何的变形剖面分析中提取力值。因此, 一个活细胞的个别凸出单位施加的作用力可以随着时间的推移而测量。这一技术将使研究的力量产生和它的调节, 在许多细胞过程涉及突出。在这里, 我们描述了它的应用, 以测量由人巨噬细胞形成的 podosomes 产生的突出力。

引言

动物细胞与基质和构成其环境的其他细胞在物理上相互作用¹。这是需要他们迁移, 内化机构, 获取外部信息, 或区分。在这种过程中, 细胞必须产生机械力, 正如近年来许多研究表明的那样, 细胞产生力量和探测其环境的能力会影响其生物学行为, 例如扩散或分化^2,3。反过来, 细胞力的测量是研究力量生成规律的主要辅助因素, 并了解它在细胞行为和组织命运^4,5中的意义。

最近几年目睹了许多技术的发展, 以测量细胞在其环境中所能发挥的力量⁶。大多数这些都有助于揭示细胞在移动探针或变形基板上施加的牵引力。然而, 在细胞外环境中所涉及的机械力缺乏测量技术, 至今尚无良好的特征。

为了克服这一限制, 我们提出了一种测量施加正交到基体上的力的方法。它包括在一个薄的弹性薄板上的电镀活细胞, 可以在正交方向上变形, 使其能够测量基底变形的细胞和推断所涉及的力量。用原子力显微镜测量基片的形貌, 用纳米尺度的分辨率测定, 变形力的评估依赖于突出细胞结构的几何知识^7,8,9。

在这里, 我们描述的设置和它的应用, 以测量 podosomes 产生的力量, 突出黏附结构形成的巨噬细胞为他们的间充质迁移在三维环境^{10,11, 12,13,14,15,16,17}。我们相信, 这一技术将促进理解的力量产生和它的调节, 在许多细胞过程涉及突出。

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研究方案

1. Formvar 涂层网格的制备

1. 清洁电子显微镜网格与纯丙酮和干燥他们在滤纸上。然后用纯乙醇清洁显微镜滑梯, 用透镜纸擦拭, 用鼓风机清除灰尘。
2. 将乙醇清洗过的玻璃垂直放在薄膜浇铸装置的漏斗上, 其中含有下部 Formvar 的溶液。覆盖漏斗顶部。
3. 将100毫升的 Formvar 溶液 (二氯化乙烯中的 0.5%) 与雾化灯泡泵浦, 直到水平达到滑动的两个以上。
4. 在解决方案中保留幻灯片1分钟。
5. 打开设备的阀门以在稳定的流中排出 Formvar 溶液。流速为10至15毫升/秒将产生一个 Formvar 膜 30-80 nm。薄膜的厚度是由 Formvar 溶液的浓度和排水速率决定的。
   注: 通过将阀门慢慢打开, 通过排气阀排出压力, 可以控制排水速率。排水越快, 胶片越厚。在实践中, 由于难以预测薄膜厚度从 Formvar 流速, 我们准备了几批 Formvar 薄膜和控制其厚度的 AFM (见步骤 2)。
6. 从腔室取出滑块, 并在滤纸上微妙地晾干, 以除去任何液体 Formvar。
7. 用剃刀刀片从 Formvar 胶片上剪下一个20毫米 x 50 毫米的长方形。
8. 用干净的蒸馏水填满烧杯, 慢慢地将幻灯片垂直地浸入水中漂浮在胶片上: 胶片应该漂浮在水面上。
9. 将干丙酮清洗的网格放在胶片上, 面朝上发亮。
10. 将圆形玻璃盖玻片 (直径12毫米) 放到几个网格上。此盖玻片将用于测量胶片厚度 (见步骤 2)。
11. 覆盖一个显微镜幻灯片与一个白色的标签调整大小, 以适应它。将幻灯片垂直倾斜在浮动 Formvar 胶片的边框上, 直到整个胶片粘附在幻灯片上。用滤纸把多余的水从滑梯上取出, 让它在室温下一夜之间晾干。

2. 薄膜厚度的测量

1. 用镊子把盖玻片周围的 Formvar, 从滑梯上分离出来。
2. 用钢笔在盖玻片下标记网格的位置。
3. 在标记的网格周围剪切 Formvar, 将其与盖玻片分离。因此, 在剩余的 Formvar 板上会有一个洞, 这将允许测量胶片的厚度。用 PBS 覆盖盖玻片, 并将其放在显微镜上的玻璃滑梯上。
4. 在 AFM 玻璃块上安装氮化硅悬臂, 确保金色条纹不被弹簧的尖端覆盖。
   注意: 悬臂的灵敏度和弹簧常数应该以前在 PBS 中校准过。
5. 将玻璃块安装到 AFM 模块上, 然后将该模块放到显微镜上。
6. 将 Formvar 涂层的盖玻片放在观察室上, 并盖上500µL PBS。
7. 用 AFM 在接触模式和 0.5 nN 力设定点扫描 Formvar 板孔的边界。
8. 使用玻璃盖玻片表面作为高度测量的参考, 并评估 Formvar 厚度为剖面的高度 (每 Formvar 批次至少执行10次测量)。

3. 在网格上播种细胞

1. 在无菌罩下, 在盖玻片上放置一个带 (12 毫米 x 3 毫米) 的双面胶带。
2. 用镊子剪掉一个 Formvar 的网格, 把它倒在胶条上 (只有网格的边缘需要附着在胶带上)。Formvar 电影需要面对盖玻片。
3. 把这个设备放在一个文化中。
4. 放置一个10µL 滴 RPMI 没有 FCS 含有 10⁴巨噬细胞分化为人单核细胞¹⁶。
   注意: 确保不要用吸管尖接触网格, 以防止损坏 Formvar 涂层。
5. 孵育30分钟 (37 °c, 5% CO₂) 让细胞坚持。
6. 用2毫升的含10% 的 RPMI 填充井。
7. 在37摄氏度和 5% CO₂上孵化设备2小时, 让细胞在 AFM 观察之前坚持。

4. Podosome 诱发变形的地形测量

1. 将两条双面胶带贴在玻璃底培养皿上。
   注: 两条线之间的距离应小于网格直径。
2. 小心地从胶带上分离出与巨噬细胞电镀的格子。
3. 将网格倒置, 使单元格面对玻璃, 并将栅格粘在两条粘合带之间。
4. 固定网格与两个新的双面胶条: 网格将因此被夹在两个胶条之间, 使网格的中心区域可进入 AFM 尖端。
   注意: 确保网格是固定的, 而不是扭曲的;否则, AFM 悬臂可能无法接近 Formvar 表面。
5. 用2毫升预加热的37°c 培养基 (RPMI 和 10% FCS) 填充培养皿, 辅以10毫米 HEPES (pH 7.4)。
6. 将养殖盘放在37摄氏度的盘子加热器上。
7. 在 AFM 阶段安装碟式加热器。
8. 让系统稳定在37摄氏度。
9. 在接触模式与 0.5 nN 力量, 使第一个全局图像定位 podosomes, 然后扫描 Formvar 地形在3赫兹与大约 20 nm 大像素。
   注意: 避免在网格边缘附近进行扫描。

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结果

上述协议描述了如何准备实验设置, 以量化在 Formvar 基板上应用巨噬细胞 podosomes 的突力。这是使用 AFM 实现的, 如图 1所示。

利用 JPK 数据处理软件对 podosomes 下凸起的地形图像进行分析时, 应独立地从每条扫描线中减去三度多项式拟合。可以通过在图像侧面添加 z 色刻度来评估 podosome 引起的颠簸的最大高...

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讨论

材料性能

可变形膜材料的选择, 在我们的案例中 Formvar, 需要满足一些要求。该材料必须是透明的可见光和展示有限的自动荧光, 以允许观察在明亮的领域和荧光显微镜。薄膜的粗糙度必须低于10纳米, 以避免任何地形对细胞黏附的影响, 并允许通过 AFM 成像清晰地观察细胞诱发的突起。最后, 根据杨氏模量和材料厚度的不同, 膜的刚度需要足够高, 以诱导 podosomes 的形...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
200 mesh nickel grids	Electron Microscopy Sciences	G200-Ni
Filter paper	Sigma-Aldrich	1001-055
Microscope slides	Fisher Scientific	10235612
White stickers 26 x 70 mm	Avery	DP033-100
Film casting device with valve in its outlet	Electron Microscopy Sciences	71305-01
Razorblades	Electron Microscopy Sciences	72000
Ethanol	VWR	1.08543.0250
Acetone	VWR	20066.321
Formvar 0.5% solution in ethylene dichloride	Electron Microscopy Sciences	15820
12 mm coverslips	VWR	631-0666
Inverted microscope	Carl Zeiss	Axiovert 200
Atomic Force Microscope	JPK Instruments	NanoWizard III
Temperature-controlled sample holder	JPK Instruments	BioCell
Silicon nitride cantilever with a nominal spring constant of 0.01 N/m	Veeco Instruments	MLCT-AUHW
PBS	Gibco	14190-094
Double-sided adhesive tape	APLI AGIPA	118100
RPMI 1640	Gibco	31870-025
FCS	Sigma-Aldrich	F7524
HEPES	Sigma-Aldrich	H0887
35 mm glass-bottom Petri dishes	WPI	FD35-100