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Method Article
在这里, 我们提出一个协议, 制造一个肾脏皮层胞外基质衍生的水凝胶保留原生肾脏细胞外基质 (ECM) 结构和生化成分。介绍了制造工艺及其应用。最后, 讨论了利用该水凝胶支持肾脏特异细胞和组织再生和生物工程的观点。
细胞外基质 (ECM) 提供重要的生物物理和生化线索, 以维持组织稳态。目前的合成水凝胶为体外细胞培养提供了强有力的机械支撑, 但缺乏必要的蛋白质和配体成分, 从而引起细胞的生理行为。本手稿描述了一种肾脏皮质 ECM 衍生的水凝胶的制备方法, 具有适当的机械鲁棒性和辅助生化成分。水凝胶是由机械均匀化和增溶脱细胞人肾皮质 ECM 制备而成。基质保留了原生肾皮质 ECM 蛋白比值, 同时也使凝胶化对生理机械刚度。水凝胶作为基质, 可在生理条件下维持肾脏皮层衍生细胞。此外 , 水凝胶的组成可以纵 , 以建立一个病态的环境 , 使未来的肾脏疾病的研究。
细胞外基质 (ECM) 提供重要的生物物理和生化线索, 以维持组织稳态。复杂的分子组成调节组织的结构和功能性质。结构蛋白为细胞提供了空间意识, 并允许粘附和迁移1。束缚配体与细胞表面受体相互作用以控制细胞行为2。肾脏 ECM 含有大量的分子, 其组成和结构根据解剖位置、发育阶段和疾病状态3,4而变化。综述的复杂性是研究肾源性细胞体外的一个关键方面。
以往复制 ECM 微环境的尝试都专注于 decellularizing 整个组织, 以创建能够 recellularization 的支架。去细胞已使用化学洗涤剂, 如烷基硫酸钠 (SDS) 或非离子洗涤剂进行, 它利用整个器官灌注或浸泡和搅拌方法5,6,7 ,8,9,10,11,12,13。这里提供的支架保存在本组织 ECM 中发现的结构和生化线索;此外, 与捐助者特定细胞的 recellularization 在重建手术中具有临床意义14、15、16、17、18、 19. 然而, 这些脚手架缺乏结构灵活性, 因此与用于体外研究的许多现有设备不相容。为了克服这一局限性, 许多集团已进一步处理脱细胞 ECM 到水凝胶20,21,22,23,24。这些水凝胶与注射成型和 bioink 兼容, 可绕过脱细胞支架放置在细胞上的微米尺度空间约束。此外, 在原生 ECM 中发现的分子组成和比值保持3,25。在这里, 我们演示了一种制备从肾脏皮层 ECM (kECM) 的水凝胶的方法。
本议定书的目的是产生一个水凝胶, 复制肾脏皮质区的微环境。肾皮质组织在 1% SDS 溶液中脱细胞, 在恒定搅动下去除细胞物质。SDS 通常用于 decellularize 组织, 因为它能够快速去除免疫细胞材料6,7,9,26。然后 kECM 的机械均质化和冻干5、6、9、11、26。在强酸与胃蛋白酶的增溶导致最终的水凝胶库存溶液20,27。对结构支持和信号传导非常重要的原生 kECM 蛋白保留3、25。水凝胶也可以在原生人肾皮质28、29、30的一级范围内胶体。该基质提供了一种生理环境, 用于维持肾脏特定细胞的平静与其他基质蛋白的水凝胶相比。此外 , 矩阵组合物可以纵 , 例如 , 通过添加胶原 I , 模型疾病环境的研究肾脏纤维化和其他肾脏疾病31,32。
在器官采购组织协会制定的道德准则的指导下, 贝洛奥里藏特西北隔离了人类肾脏。本议定书遵循华盛顿大学所概述的动物保育和细胞培养指南。
1. 人体肾脏组织的制备
2. 水凝胶库存溶液的制备
3. 水凝胶凝胶
kECM 水凝胶为肾脏细胞培养提供了基质, 其化学成分与原生肾脏微环境相似。为了制造水凝胶, 肾脏皮层组织与整个肾脏器官和切块 (图 1) 机械隔离。去细胞使用化学洗涤剂 (图 2A1-3), 然后用水冲洗去除洗涤剂颗粒 (图 2A. 4-6) 产生孤立的肾脏皮质 ECM。组织学评估证实了典型的基底层...
矩阵提供了控制细胞行为的重要机械和化学线索。合成水凝胶能够支持复杂的3维图形, 但未能提供生理基质微环境中发现的各种细胞外线索。源自原生 ECM 的水凝胶是体内和体外研究的理想材料。以前的研究使用脱细胞 ECM 水凝胶涂层合成生物材料, 以防止宿主免疫反应33,34, 区分干细胞35,36,
作者没有什么可透露的。
作者希望在干细胞与再生医学研究所和西北贝洛奥里藏特的加维成像实验室获得认可。他们还要承认国家卫生补助金研究所、UH2/UH3 TR000504 (h·) 和 DP2DK102258 (Y.Z.)、NIH T32 培训补助金 DK0007467 (R.J.N.) 的财政支助, 以及西北肾脏中心不受限制的礼物。肾脏研究所。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Preparation of Kidney Tissue | |||
5000 mL Beaker | Sigma-Aldrich | Z740589 | |
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) | Sigma-Aldrich | 436143 | |
Sterile H2O | Autoclaved DI H2O | ||
Stir Bar (70 x 10 mm) | Fisher Science | 14-512-128 | |
500 mL Vacuum Filter | VWR | 97066-202 | |
Stir Plate | Sigma-Aldrich | CLS6795420D | |
1000 mL Beaker | Sigma-Aldrich | CLS10031L | |
Forceps | Sigma-Aldrich | F4642 | Any similar forceps may be used |
Scissor-Handle Hemostat Clamp | Sigma-Aldrich | Z168866 | |
Dissecting Scissors | Sigma-Aldrich | Z265977 | |
Scalpel Handle, No. 4 | VWR | 25859-000 | Any similar scalpel handle may be used |
Scalpel Blade, No. 20 | VWR | 25860-020 | Any similar scalpel blade may be used |
Stir Bar (38.1 x 9.5 mm) | Fisher Science | 14-513-52 | |
Absorbent Underpad | VWR | 82020-845 | |
Petri Dish (150 x 25 mm) | Corning | 430597 | |
Autoclavable Biohazard Bag | VWR | 14220-026 | |
Sterile Cell Strainer (40 um) | Fisher Science | 22-363-547 | |
Cell Culture Grade Water | HyClone | SH30529.03 | |
30 mL Freestanding Tube | VWR | 89012-778 | |
Fabrication of ECM Gel | |||
Tissue Homogenizer Machine | Polytron | PCU-20110 | |
Freeze Dryer | Labconco | 7670520 | |
20 mL Glass Scintillation Vials and Cap | Sigma-Aldrich | V7130 | |
Stir Bar (15.9 x 8 mm) | Fisher Science | 14-513-62 | |
Pepsin from Porcine Gastric Mucosa | Sigma-Aldrich | P7012 | |
0.01 N HCl | Sigma-Aldrich | 320331 | Dilute to 0.01 N HCl with cell culuture water |
Kidney ECM Gelation | |||
1 N NaOH (Sterile) | Sigma-Aldrich | 415413 | Dilute to 1 N in cell culture grade water |
Medium 199 | Sigma-Aldrich | M4530 | |
15 mL Conical Tube | ThermoFisher | 339651 | |
Cell Culture Media | ThermoFisher | 11330.032 | Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 (DMEM/F12) |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Gibco | 10082147 | |
Antibiotic-Antimycotic 100X | Life Technologies | 15240-062 | |
Insulin, Transferrin, Selenium, Sodium Pyruvate Solution (ITS-A) 100X | Life Technologies | 51300-044 | |
1 mL Syringe | Sigma-Aldrich | Z192325 | |
Microspatula | Sigma-Aldrich | Z193208 |
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