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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

本协议描述了一种注射蜱虫胚胎的方法。胚胎注射是遗传操作产生转基因系的首选技术。

摘要

蜱虫可以传播各种病毒、细菌和原生动物病原体,因此被认为是具有医学和兽医重要性的载体。尽管蜱传疾病的负担越来越大,但由于将遗传转化工具应用于功能研究蜱的独特生物学的挑战,对蜱虫的研究仍然落后于昆虫病媒。遗传干预在减少蚊媒疾病方面越来越受到关注。然而,这种干预措施的发展需要通过注射胚胎来稳定地转化种系。螯合物(包括蜱虫)缺乏这种胚胎注射技术。几个因素,例如蜱胚胎上的外部厚蜡层、硬绒毛膜和高卵内压力,是以前阻碍蜱虫胚胎注射方案发展的一些障碍。目前的工作已经克服了这些障碍,这里描述了一种用于黑腿蜱( 肩突硬 蜱)的胚胎注射技术。该技术可用于递送组分,如CRISPR/Cas9,以实现稳定的种系转化。

引言

蜱是具有医学和兽医重要性的载体,能够传播各种病毒、细菌、原生动物病原体和线虫12。在美国东部,黑腿蜱,肩突硬蜱,是莱姆病(LD)病原体伯氏螺旋体伯氏疏螺旋体的重要载体。美国每年报告的LD病例超过40万例,使其成为美国最大的媒介传播传染病1。除伯氏双歧杆菌外,肩突双歧杆菌还传播其他六种微生物,包括四种细菌(嗜吞噬细胞无形体、蛋黄孢杆菌宫本双歧杆菌和穆氏埃立克体)、一种原生动物寄生虫(小巴贝虫)和一种病毒(波瓦桑病毒),使这种蜱虫物种成为主要的公共卫生问题3 .虽然近年来蜱传疾病变得越来越普遍,但由于蜱的独特生物学以及与应用遗传和功能基因组工具相关的挑战,对蜱虫的研究已经落后于其他节肢动物媒介,如蚊子45

基因编辑技术,特别是CRISPR / Cas9,现在已经使功能基因组学研究在非模式生物中变得可行。为了在生物体中产生可遗传的突变,胚胎注射仍然是递送改变

研究方案

肩突硬蜱 成虫要么从俄克拉荷马州立大学(OSU)购买,要么在内华达大学里诺分校(UNR)饲养(IACUC协议#21-001-1118)。

1. 制备用于胚胎采集的雌性蜱虫

注意:要收集适当年龄的卵子,同步产卵很重要。虽然蜱虫的产卵线索尚不清楚,但在标准昆虫条件下(27°C温度和>90%相对湿度(RH)), 肩突蜱 雌性在宿主脱离后约8天开始产卵。该时间表可以通过在4°C下储存充满雌性来延长。 我们将血液喂养的雌性储存在4°C长达8周,对产卵没有任何负面影响。对于每种昆虫,可能需要修改这些条件。

  1. 将所有充满的雌性储存在4°C,>90%RH中,内衬有湿滤纸的6夸脱塑料盒中,直到用于显微注射。
  2. 注射前一周,将雌性从4°C转移到27°C培养箱中以开始产卵。
  3. 当雌性开始产卵时(将它们移动到27°C后3-4天),使用细尖画笔去除任何卵,并为雌性准备Gené的器官(蜡腺)消融术。
    注意:Gené的器官从骷髅和头鳞之间的区域(口器的背基部)延伸,口器在腹体表面弯曲(平行于表面),一旦产卵,延伸的Gene器官就会覆盖卵子(图1)。在Gené的器官切除或排空蜡之前产下的卵子将具有蜡涂层,不适合注射,必须丢弃。
  4. 要移除或清空Gen....

结果

本文描述了肩胛骨I.的成功胚胎注射方案。产卵的雌性保持在高湿度下,以避免部分打蜡的卵干燥。通过消融妊娠雌性的基因器官(蜡腺)来去除蜡层以注射蜱胚胎(图1A-E)。我们使用颈部较短的铝硅酸盐玻璃针(图2)。这种形状非常适合蜱卵注射,因为它比用于昆虫卵注射的长颈(锥形)针头可以更好地承受压力。?.......

讨论

这是第一个成功注射早期蜱虫胚胎的方案。已经实现了~4%-8%的存活率,这与其他成熟的昆虫模型中的胚胎注射相当5。

由于这是最初的协议,预计该协议将进一步完善并专门针对单个蜱物种。特别是,注射时间因物种而异,取决于胚胎发生,尤其是细胞化的时间。初步数据表明, 肩胛骨I. 卵在产卵后的前24小时内不会经历快速核分裂,几天后发生细胞?.......

披露声明

作者没有什么可透露的。

致谢

作者感谢Channa Aluvihare和Yonus Gebermicale,ITF,UMD在协议开发的初始阶段提供的见解和支持。钨针是David O'Brochta,ITF,UMD的慷慨礼物。我们感谢Ladislav Simo博士在 I. ricinus 中测试了该协议,并进行了有见地的讨论。该项目由NIH-NIAID R21AI128393和纽约普利茅斯山基金会资助至MG-N,内华达大学向AN提供启动资金,国家科学基金会对MG-N和AN的资助编号2019609,以及IGTRCN向AS提供的点对点资助。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Aluminum silicate capillaries, with filamentSutter instrumentsAF100-64-10Embryo injection
Benzalkonium chloride 50% in water, 25 gTCI-AmericaB0414Embryo treatment, 25 g is approximately 25 mL
Filter paperWhatman1001-090Post-injection care
ForcepsThomas Scientific300-101Gene`s organ manipulation
Lab WipesGenesee Scientific88-115
Microloader tipsEppendorf930001007Loading the pulled needles
MicromanipulatorSutter instrumentsROE-200Embryo injection
Microscopic slides- plain, ground edgesGenesee Scientific29-100Embryo alignment, ground edges are preferred, beveled edges could obscure the eggs from view
NaClResearch Products InternationalS23020-500.0Embryo treatment
Needle PullerSutter InstrumentsP-1000
Permanent Double sided tapeScotch34-8716-3417-5Embryo alignment
Petri platesGenesee Scientific32-107GPost-injection care
Tegaderm/ Transparent film dressing3M Healthcare1628Embryo alignment
Tungsten needlesFine Science Tools10130-10Gene`s organ manipulation
Tungsten WireAmazonB08DNT7ZK3Gene`s organ manipulation
XenoWorks Digital MicroinjectorSutter instrumentsMPC-200Embryo injection

参考文献

  1. Hinckley, A. F. et al. Lyme disease testing by large commercial laboratories in the United States. Clinical Infectious Diseases: An Official Publication of the Infectious Diseases Society of America. 59 (5), 676-681 (2014).
  2. Jongejan, F., Uilenberg, G. The global importance of ticks. Parasitology. 129 Suppl, S3-14 (2004).
  3. Eisen, R. J., Eisen, L. The blacklegged tick, Ixodes scapularis: An increasing public health concern. Trends in Parasitology. 34 (4), 295-309 (2018).
  4. Sharma, A. et al. Cas9-mediated gene editing in the black-legged tick, Ixodes scapularis, by embryo injection....

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