冻肩大鼠模型中的推拿：一种高效且可重复的方案

摘要

本研究开发了一种高效且可重复的推拿方案，用于治疗在大鼠模型中建立的肩周炎。这种方法将有助于研究肩周炎的推拿治疗方法。

摘要

肩周炎 （FS） 是一种常见疾病，没有明确的最佳治疗方法。推拿疗法是一种用于治疗中国医院FS患者的传统中医技术，已显示出良好的效果，但其机制尚不完全清楚。在先前研究的基础上，这项工作旨在为FS大鼠模型开发推拿方案。我们将20只SD大鼠随机分为对照组（C;n=5）、FS模型（M;n=5）、FS模型推拿治疗组（MT;n=5）和FS模型口服治疗组（MO;n=5）。本研究采用铸造固定化法建立FS大鼠模型。评价推拿和口服地塞米松对盂肱关节活动度（ROM）的影响，并评估组织学结果。我们的研究表明，推拿和口服地塞米松能够改善肩关节活动度并保留关节囊的结构，推拿疗法被证明比口服地塞米松更有效。总之，本研究中建立的推拿方案对 FS 非常有效。

引言

肩周炎（FS），也称为肩关节粘连性关节囊炎，是一种以肩痛和活动缺陷为特征的自限性疾病。它通常影响 30 至 70 岁的人群，平均年龄为 50 岁，在中国人群中的患病率约为 5%¹。据报道，女性的 FS 发病率是男性的 1.6 倍²。FS 的患病率在糖尿病、葡萄糖和脂质代谢紊乱或其他相关疾病患者中较高，范围在 10% 至 36%^2,3 之间。目前FS的临床治疗包括物理治疗、类固醇药物和手术治疗⁴。

推拿是一种传统中医 （TCM） 疗法，已被证明可有效缓解 FS 患者的肩部疼痛，改善他们的生活质量 ^5,6。然而，这种治疗的潜在机制尚不清楚。因此，使用动物模型研究推拿治疗FS的效果和机制至关重要。

大鼠肩关节具有与人肩关节相似的复杂结构，常用于FS⁷的机理研究。FS 大鼠模型的特征是盂肱 ROM 和包膜纤维化⁸ 的下降。此外，该模型允许观察肩囊，并在修复损伤的同时进行病理学研究⁹。此外，口服皮质类固醇通常用作FS治疗研究的对照组¹⁰。本研究旨在为 FS 大鼠模型制定推拿方案，并通过比较推拿疗法和口服地塞米松的疗效来证明在推拿研究中进行动物实验的可行性。

研究方案

本研究经山东中医药大学附属医院伦理委员会批准（编号：AWE-2022-023）。

1.实验动物

1. 将20只雄性Sprague-Dawley（SD）大鼠（7周龄，250-280g）饲养在标准条件下（室温[RT] 20-24°C，湿度40%-60%，12小时/12小时光/暗循环）。

2.分组方式

1. 将SD大鼠分为对照组（C）、FS模型对照组（M）、FS模型推拿治疗组（MT）和FS模型口服治疗组（MO），每组由5只大鼠组成。每个笼子养5只大鼠（同组）。
2. 驯化7天后，使用石膏固定固定3周以模拟FS，如下一节所述，固定M，MT和MO组中大鼠的一侧肩膀3周。
3. 如第4节（图1）所述，对MT组的大鼠进行推拿治疗2周。
4. 根据成人剂量（0.75mg /天）和大鼠与人体表面积的比例（0.018）计算每公斤大鼠（0.0675mg /天）所需的地塞米松剂量。
5. 每天上午7：00以0.067mg / kg /天对MO组大鼠施用每日胃内地塞米松溶液，持续2周。
   注意：使用此分组方法确认推拿方案在本研究中的效果。根据不同研究中的实验目的进行分组方法。

3. FS模型的开发

1. 使用三溴乙醇（250mg / kg，通过腹膜内注射）麻醉大鼠¹¹。
   注：根据该机构伦理委员会的要求，将由摩擦乙醇（10g）和叔戊醇（10mL）组成的储备溶液储存在4°C下。 使用前，用蒸馏水稀释至2%。
2. 将石膏浸泡的绷带贴在大鼠的右肩和胸部，使右前肢保持肩关节内旋90°，持续3周（图2）¹²。
   注意：监测大鼠以确保它们可以进行正常的生理活动，例如行走，进食和饮水。如果大鼠不能进行正常的生理活动，请重新固定石膏绷带。
3. 通过观察大鼠右肩关节僵硬、右上肢收缩、肌肉萎缩、跛行等症状的发展，确认FS模型的成功建立¹³。

4.推拿法

注意：在整个过程中，研究者必须穿戴个人防护设备。只有一名专业的推拿医生必须执行所有操作（图 3、图 4 和图 5）。

1. 通过智能按摩技术参数确定系统进行训练，该系统包括机械感受器和计算机（图3A）。
   1. 在通过软件显示的三个方向上对机械感受器和力参数进行操作（图3B）。
   2. 使用拇指手指以0.5kg的强度和100-120次/分钟的频率在旋转运动中执行旋转揉捏方法（图3C）。
   3. 使用拇指指尖以0.5 kg的强度执行点压方法（图3D）。
   4. 通过保持步骤4.1.2和4.1.3中提到的机械显示器1分钟，对大鼠进行推拿。
2. 握住大鼠直到它平静下来（~2分钟）。然后，执行操作。将大鼠置于侧卧位，但位置可能会根据不同的操作方法而改变。
3. 用右手食指和中指夹住大鼠的右前肢并弯曲并伸展数次，以确定大鼠肩关节、肘关节和肱骨的位置。
4. 用拇指髓顺时针旋转揉捏大鼠的右肩，前肢和背部，强度为0.5kg，频率为100-120次/分钟，持续3分钟（图4A-C）。
   1. 在侧卧位操纵前肢肌肉。
   2. 以俯卧姿势操纵肩部和背部肌肉。
5. 每个穴位用拇指指尖垂直按压 LI15（剑宇）、SI11（天宗）、HT01（吉泉）和 LI11（曲池）30 次，强度为 0.5 kg（图 4D-G）。
   1. 使用大鼠穴位图谱定义每个穴位的位置（图5）^14,15。
   2. 按LI15，位于肩峰端前下凹陷处，俯卧位。
   3. 按 SI11，位于肩胛棘中点冈下窝的凹陷处，俯卧位。
   4. 按位于腋窝中心的 HT01，仰卧位。
   5. 按LI11，位于侧卧位肘皱褶外侧端桡侧腕伸肌内侧的凹陷处。
6. 用左手拇指和中指握住肩关节，在内收、外展、前伸和后伸位置拉伸前肢10秒（图4H-K）。
   注意：这种拉伸方法必须在大鼠中没有抵抗的情况下进行。
7. 如果大鼠变得激动，请暂停推拿程序。抚摸大鼠10秒使其平静下来，然后进行试验。
8. 每天执行该程序，持续 2 周。

5. 盂肱ROM的测量

注意： 重要的是要尽快完成测量过程，以防止关节囊组织退化。

1. 用过量剂量的三溴乙醇（3倍初始剂量，通过腹膜内注射）处死大鼠后，切除肩胛骨和近端三分之二的肱骨，暴露肩胛骨的下边缘。
2. 将注射针（1.2 cm x 0.45 mm）沿肱骨干插入肱骨头。
3. 将两根注射针垂直插入肩胛骨的上角和下角，用无菌手术片包裹塑料泡沫。
4. 将一根细线连接到肱骨干上的注射针上，然后用 5 g 的力将其拉到另一端，使其与肱骨干平行。测量肩胛骨下边缘与肱骨干之间的角度（图6）。
   注意：为确保可靠的结果，请让单独的调查员进行测量。
5. 使用统计分析软件应用程序以均值±标准差 （SD） 的形式报告数据。
   注：此处使用的是 SPSS 软件（SPSS 25.0 版）。
6. 使用单因素方差分析 （ANOVA） 分析组间差异。
7. 使用适当的软件获取条形图形。
   注意：这里使用了GraphPad Prism 8。
8. 测量后使用 H&E 和 Masson 染色评估胶囊病理学。

6. 章节准备

1. 评估盂肱 ROM 后，将整个样品在 4% PFA 中固定 3 天，然后在 EDTA （pH 7.2） 溶液中再脱钙 2 个月。
2. 脱水后，将含有样品的包埋组织块切成5μm切片¹⁶。
3. 将切片在65°C干燥60分钟。
4. 对切片进行脱蜡。
5. 将切片浸泡在二甲苯I，二甲苯II和二甲苯III中7分钟，然后下降乙醇系列（无水乙醇，5分钟;95%乙醇，2分钟;80%乙醇，2分钟和70%乙醇，2分钟），最后在超纯水中浸泡2分钟。

7. H&E染色

1. 用苏木精染色切片5分钟，用1%盐酸乙醇冲洗3秒，用流水洗涤5分钟。
2. 用曙红染色切片3分钟，并用自来水洗涤。
3. 将切片浸泡在乙醇系列（95%乙醇I，3秒;95%乙醇II，3秒;无水乙醇I，3秒和无水乙醇II，1分钟）中，然后浸入二甲苯系列（二甲苯I，1分钟;二甲苯II，1分钟）中。
4. 在每个样品上滴一滴中性口香糖密封剂。用盖玻片密封每个样品。
5. 使用倒置荧光显微镜（比例尺= 100μm）收集图像。

8. Masson染色

1. 使用免疫组织化学笔，在切片周围画一个圆圈，然后将切片在37°C的Bouin溶液中孵育2小时以媒染。随后，用水清洗切片，直到黄色消失。
2. 用青金石蓝染料处理样品3分钟，然后用蒸馏水洗涤。
3. 用苏木精（Mayer）对切片染色2分钟后，在酸性乙醇分化溶液中处理切片3秒。然后，在流水中洗涤切片10分钟。
4. 用ponceau洋红色染料溶液染色切片10分钟，然后用水洗涤。
5. 将切片浸入磷钼酸溶液中10分钟。
6. 向切片中加入苯胺蓝染色液5分钟，然后用弱酸工作液洗涤2分钟。
7. 脱水并使部分透明，如步骤 7.3 中所述。
8. 在每个部分滴一滴中性口香糖密封剂，并用盖玻片盖住它。将部分放在通风橱中晾干。
9. 按照步骤 7.5 中的说明收集图像。

讨论

第一个关键步骤是模型选择。由于难以实现初级FS模型，通常使用石膏固定和手术内固定来建立FS大鼠模型^9,12。在通过石膏固定 3 周^12,20 建立的 FS 模型中观察到最严重的肩关节活动度限制和囊纤维化。在这项研究中，FS模型的成功率非常好，成功率为100%。

第二个关键步骤是该协议中使用的操作。本研究使用了三种操作（揉捏、按压和拉伸）。对肩部、肩胛骨和上臂进行软组织揉捏操作，以放松肌肉。通过对 LI15、SI11、HT01 和 LI11 等穴位施加压力来进行按压操作，这些穴位在 FS ^5,21 的临床实践中最常用。LI15、SI11 和 HT01 位于肩囊周围的位置，可有效改善 ROM 和肩功能²²。LI11 常用于治疗上肢运动障碍，与 LI15 位于同一经络中。这种穴位匹配方法有助于提高 LI15²³ 的功效。完全放松后，使用伸展技术来恢复功能性活动。

该协议中可能存在的问题是大鼠在推拿过程中表现出强烈的抵抗力，这可能是由恐惧引起的，而不是超过大鼠的耐受性。此时，应停止操作，直到大鼠平静下来（抚摸10秒使大鼠平静下来）。此外，应根据大鼠的症状调整拉伸程度。最初，肩关节的局限性明显，拉伸幅度较小。随着干预，大鼠肩关节功能逐渐恢复，伸展幅度逐渐增加。标准是大鼠可以接受无阻力的拉伸方法。最后，老鼠有一定的攻击性，推拿需要长时间与老鼠接触，所以穿戴个人防护装备很重要。

操作的定量控制是推拿实验中最困难的。虽然按摩操作模拟器可用于控制单次操作的强度和频率，但当涉及多个操作和治疗部位时，这种方法受到限制^24,25。在临床实践中，推拿通常由从业者直接进行，在这项研究中，很难用医疗设备进行干预。为了控制刺激，可以采用智能按摩技术参数确定系统来规范推拿的训练。训练后，研究者可以在一定程度上对每只大鼠施加相同的力。该协议的主要局限性是无法完全控制操作。

中医推拿疗法在中国有着悠久的使用历史，医院的不同医生使用不同的操作和治疗部位组合。因此，为动物实验和临床研究建立可复制和有效的方案非常重要。在这项研究中，使用的操作和穴位是基于我们团队之前的一项研究，将我们的临床经验与FS动物模型²¹的特征相结合。本研究证明了所开发的推拿方案在改善FS大鼠肩关节功能和减少关节囊纤维化方面的有效性。这些发现为进一步研究推拿治疗机制奠定了基础。此外，该协议对于有兴趣探索FS替代医学治疗疗效的研究人员很有用。

既往研究发现，推拿干预纤维化的机制可能与TGF-β和CTGF的下调有关，同时调节MMP-1/TIMP-1的平衡，从而减轻细胞外基质（ECM）的产生²⁶。推拿对肩囊纤维化的作用可以通过各种机制的调节来实现。然而，需要进一步的研究来充分了解这种改进所涉及的机制。

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
4% paraformaldehyde	Solarbio	P1110
Embedding machine	Changzhou Paisijie Medical Equipment Co., Ltd	BM450A
Ethylene Diamine Tetraacetic Acid (EDTA)	Solarbio	E1171
Hematoxylin eosin (HE) staining kit	Sparkjade	EE0012
Intelligent-massage technique parameter determination system	Shanghai Dukang Intrument Equipment Co. Ltd	ZTC-
Microtome	Leica	531CM-Y43
Modified Masson Trichrome Staining Solution	Shanghai yuanye Bio-Technology Co., Ltd	R20381-8	Bouin 50 mL; lapis lazuli blue dye 50 mL; Hematoxylin (Mayer) 50 mL; acidic ethanol differentiation solution 50 mL; ponceau magenta dye solution 50 mL; phosphomolybdic acid solution 50 mL; aniline blue staining solution 50 mL;  weak acid 50 mL
Tribromoethanol	Macklin	T903147-5