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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

通过植入由间充质干细胞产生的人工软骨组织,通过软骨内骨化进行骨治疗有可能规避传统疗法的缺点。透明质酸水凝胶可有效扩大均匀分化的软骨移植物,并在 体内融合移植物之间形成具有血管化的整合骨。

摘要

使用间充质干细胞 (MSC) 的常规骨再生疗法很难应用于大于临界尺寸的骨缺损,因为它没有诱导血管生成的机制。植入由间充质干细胞制成的人造软骨组织通过软骨内骨化 (ECO) 在 体内 诱导血管生成和骨形成。因此,这种ECO介导的方法可能是未来一种很有前途的骨再生疗法。这种 ECO 介导的方法临床应用的一个重要方面是建立一个方案,用于准备足够的软骨以植入以修复骨缺损。设计大小符合实际骨缺损形状的单个移植软骨块尤其不切实际。因此,被移植的软骨必须具有多块植入时整体形成骨骼的特性。水凝胶可能是一种有吸引力的工具,用于扩大用于软骨内骨化的组织工程移植物以满足临床要求。尽管许多天然衍生的水凝胶在 体外 支持MSC软骨形成,在 体内支持ECO,但满足临床应用需求的最佳支架材料尚未确定。透明质酸(HA)是软骨细胞外基质的重要组成部分,是一种可生物降解和生物相容的多糖。在这里,我们表明HA水凝胶具有优异的特性,可以支持基于MSC的软骨组织的 体外 分化,并促进 体内软骨内骨的形成。

引言

自体骨仍然是修复因创伤、先天性缺损和手术切除引起的骨缺损的金标准。然而,自体骨移植具有显着的局限性,包括供体疼痛、感染风险和可从患者中分离出的骨量有限 1,2,3,4。许多生物材料已被开发为骨替代品,将天然或合成聚合物与矿化材料(如磷酸钙或羟基磷灰石)相结合 5,6。这些工程材料中的骨形成通常使用矿化材料作为启动材料来实现,以使干细胞通过膜内骨化 (IMO) 过程直接分化成成骨细胞7。该过程缺乏血管生成步骤,导致植入后移植物的体内血管化不足8,9,10,因此使用这种过程的方法可能不是治疗大骨缺损的最佳方法11

用于概括软骨内骨化 (ECO) 过程的策略已被证明可以克服与传统的基于 IMO 的方法相关的重大问....

研究方案

该方案使用4周龄的雄性裸鼠。在22-24°C和50%-70%相对湿度下,在12小时光/暗循环下将四只小鼠饲养在笼子中。所有动物实验均按照东京医科齿科大学机构动物护理和使用委员会批准的指南(批准编号:A2019-204C、A2020-116A 和 A2021-121A)进行。

1. 缓冲液和试剂的制备

  1. 通过将MSC生长培养基的补充试剂盒添加到MSC基础培养基中来制备间充质干细胞生长培养基(MSC生长培养基),并将其储存在4°C。
  2. 通过向培养基中加入10%胎牛血清(FBS),50μg/ mL庆大霉素,200μML-丙氨酰-L-谷氨酰胺和1ng / mL碱性成纤维细胞生长因子来制备Dulbecco改良的Eagle培养基和Ham's F12(DMEM / F-12)培养基,并将其储存在4°C。
  3. 使用前向DMEM中加入1%ITS-G添加剂,0.12%牛血清白蛋白,50μg/ mL庆大霉素,0.35mM L-脯氨酸,100nM地塞米松和10ng / mL TGF-β3来制备软骨培养基。
  4. 使用前向DMEM中加入10mM β-甘油磷酸盐,0.12%牛血清白蛋白,10nM地塞米松,200μM抗坏血酸-2-磷酸盐,50nM L-甲状腺素,50μg/ mL庆大霉素和50pg / mL IL-1β来制备肥厚培养基。
  5. 用200μL在60°C预热的熔化石蜡涂覆24孔培养皿....

代表性结果

将MSC封装的HA水凝胶在补充有TGFβ3(软骨生成诱导剂41 )的软骨形成培养基中培养(步骤4.1)。我们将 HA 的特性与胶原蛋白的特性进行了比较,胶原蛋白已被证明可有效创建用于软骨内骨化的基于 MSC 的人工软骨移植物,如前所述38。本研究中未将未分化的 MSC 列为阴性对照,因为已经证明未分化的 MSC 需要矿化表面作为启动基质,才能通过成骨分化(即膜内骨

讨论

使用适当的支架材料来促进从肥厚软骨到骨骼的过渡,是扩大基于 MSC 的工程肥厚性软骨移植物和治疗具有临床意义的骨缺损的有前途的方法。在这里,我们表明 HA 是一种极好的支架材料,可在体外支持基于 MSC 的肥厚软骨组织的分化并促进体内软骨内骨形成 38。此外,在体内,HA构建体被证明可以促进植入同一口袋中的多个构建体的融合,以形成单个整合的.......

披露声明

作者宣称不存在任何利益冲突。

致谢

这项工作得到了日本科学振兴会(JSPS)的科学研究补助金(KAKENHI)的支持(资助号)。JP19K10259 和 22K10032 到 MAI)。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25w/v% Trypsin-1mmol/L EDTA.4Na SolutionFUJIFILM Wako Pure Chemical 209-16941
AntisedanNippon Zenyaku Kogyo
ascorbate-2-phosphateNacalai Tesque13571-14
BambankerGC LymphotecCS-02-001
basic fibroblastic growth factorReprocellRCHEOT002 
bovine serum albuminFUJIFILM Wako Pure Chemical 012-238817.5 w/v%
Countess Automated Cell Counter with cell counting chamber slides and Trypan Blue stain 0.4%InvitrogenC10283
dexamethasoneMerckD8893
DomitorNippon Zenyaku Kogyo
DormicumAstellas Pharma
Dulbecco's Modified Eagle MediumMerckD6429high glucose
Dulbecco's Modified Eagle's Medium/Nutrient Mixture F-12 HamMerckD6421
Fetal bovine serumHycloneSH30396.03
Gentamicin sulfateFUJIFILM Wako Pure Chemical 1676045 10 mg/mL
Haccpper GeneratorTechnoMaxCH-400-5QB50 ppm hypochlorous acid water
Human Mesenchymal Stem CellsLonzaPT-2501
HyStem Cell Culture Scaffold KitMerckHYS020
IL-1ßPeproTechAF-200-01B
ITS-G supplementFUJIFILM Wako Pure Chemical 090-06741×100
L-Alanyl-L-GlutamineFUJIFILM Wako Pure Chemical 016-21841200mmol/L (×100)
L-prolineNacalai Tesque29001-42
L-ThyroxineMerckT1775
MSCGM Mesenchymal Stem Cell Growth Medium
BulletKit
LonzaPT-3001
paraffinFUJIFILM Wako Pure Chemical 165-13375
PBS / pH7.4 100mlMedicago09-2051-100
TGF-β3 ProteintechHZ-1090
VetorphaleMeiji Seika Kaisha
Visiocare OintmentSAVAVET/SAVA Healthcare
β-glycerophosphateFUJIFILM Wako Pure Chemical 048-34332

参考文献

  1. Goldberg, V. M., Stevenson, S. Natural history of autografts and allografts. Clinical Orthopaedics and Related Research. (225), 7-16 (1987).
  2. Amini, A. R., Laurencin, C. T., Nukavarapu, S. P. Bone tissue engineering: recent advances and challenges.

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