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摘要

在这里,我们提出了一种分离和鉴定人类角膜缘生态位细胞的方案。

摘要

在这里,我们报告了分离和鉴定角膜缘生态位细胞(LNC)的标准程序。从眼库获得的角膜缘组织用于LNCs分离。在无菌条件下将组织分成12块,并在37°C下在细胞培养箱中消化18小时,使用胶原酶A获得具有LNC和角膜缘上皮祖细胞的细胞簇。使用0.25%胰蛋白酶-EDTA在37°C下进一步消化细胞簇15分钟以获得单细胞,然后在涂有5%基质凝胶的塑料表面上在改良的胚胎干细胞培养基(MESCM)中培养。细胞在 70% 汇合时传代,并使用免疫荧光、实时定量 PCR (qPCR) 和流式细胞术鉴定 LNC。原代 LNC 被分离并传代超过 12 次。从P4到P6的LNCs增殖活性最高。LNCs表达的干细胞标志物高于BMMSC(SCF、Nestin、Rex1、SSEA4、CD73、CD90、MSX1、P75NTR和PDGFRβ)。结果显示,P4 LNCs均均匀表达VIM、CD90、CD105和PDGFRβ,但不均匀表达Pan-CK,可作为LNCs鉴定的标志物。 流式细胞分析显示,约95%、97%、92%和11%的LNCs分别表达CD73、CD90、CD105和SCF,而在BMMSCs中分别表达68%、99%、20%和3%。LNCs分离鉴定的标准工艺可为LNCs的广泛应用提供可靠的实验室依据。

引言

角膜上皮干细胞缺乏症(CESD),也称为角膜缘干细胞缺乏症(LSCD)1,角膜上皮再生(CES)的发病率因角膜感染和损伤而变得越来越紧迫。如果治疗不当,CESD可能导致失明,需要角膜移植。因此,CES再生变得越来越重要。有一组称为角膜缘生态位细胞 (LNC) 的支持细胞为 CES 功能提供必要的支持。角膜缘基质干细胞首先由Polisetty等2分离,Xie等3鉴定为LNC,定位于角膜缘的角膜缘上皮和角膜缘的基质。LNCs是角膜边缘的关键支持干细胞,具有骨髓来源的MSCs(BMMSCs)的功能,可诱导发育成角膜上皮细胞和角膜基质细胞3,4,5,6,7。先前的研究表明,LNCs的干细胞质量比BMMSCs8更原始,BMMSCs8已经在临床上被广泛使用。LNC甚至可能成为继MSC之后的下一个可行选择,特别是用于治疗CESD。作为CES的重要支持细胞,LNC也是源自角膜缘“生态位”结构的干细胞。LNC 可能在成熟角膜上皮细胞 (MCEC) 向 CES9 的去分化中发挥关键作用。然而,对LNCs的研究仍然相对不足,对LNCs的术语、分离、纯化、鉴定和特性尚未达成共识。一些研究人员将 LNC 命名为角膜缘活检来源的基质干细胞10、角膜缘间充质干细胞11、角膜缘成纤维细胞干细胞 12 和角膜缘间充质基质细胞13由于LNCs的生长特性尚未详细描述,且由于其科学和临床应用前景广阔,并且可能是未来最重要的临床工具之一,因此有必要总结LNCs的分离、纯化、鉴定和特性。

根据先前的一项研究14,LNC主要存在于角膜缘上皮下和角膜缘的基质中。该方案包括使用胶原酶A处理角膜缘组织,获得由LEPC和LNC组成的簇,并将其消化成含有0.25%胰蛋白酶-EDTA(TE)的单细胞。然后将LNCs选择性地培养在改良的胚胎干细胞培养基(MESCM)中进行纯化。本文报道的方案简单,在大量获得人LNCs方面具有很高的效率。

视频中记录了LNC分离、培养和鉴定的详细过程,供对LNC研究感兴趣的科学家使用,必要时可以方便地重复。

研究方案

年龄在50至60岁之间的供体的角膜缘组织来自同济医院(中国武汉)红十字眼库。该协议得到了同济伦理委员会的批准,并按照《赫尔辛基宣言》进行。

1. 隔离

  1. 从中期角膜储存培养基中获取角膜缘组织,并在超洁净工作台上在无菌条件下操作。
  2. 使用无菌手术圆刀片刮擦并去除角膜周围的虹膜和内皮。
  3. 用手术刀片将角膜缘组织切成十二个大小相等的碎片,角膜和巩膜两侧留有 1 毫米。
  4. 将角膜缘组织转移到 3.5 cm 培养板中,加入 1 mL 胶原酶 A(2 mg/mL,在 DF-12 培养基中),浸入所有组织进行消化。
  5. 将板放入37°C细胞培养箱中,消化角膜缘组织18小时。
    注意:后续程序通常在第二天进行。
  6. 准备5%基底膜基质(基质胶)包被的6孔培养板。
    1. 在孔的底部涂覆5%基底膜基质(溶解在MESCM [表1]中)。
    2. 在灭菌袋中准备 200 μL 和 1 mL 吸头、一个 15 mL 离心管和一个 6 孔板。
    3. 将灭菌袋(包括吸头和离心管)和新的6孔板置于-20°C或-80°C环境中20分钟。在4°C的冰箱中解冻基底膜基质。
    4. 从-20°C或-80°C环境中取出预冷的吸头、离心管和6孔板,然后在超净工作台上进行以下操作。
    5. 使用 200 μL 吸头将 50 μL 5% 基底膜基质转移到 1 mL MESCM 中,并轻轻均匀地混合。
    6. 使用预冷的 1 mL 吸头将 5% 基底膜基质(溶解在 MESCM 中)转移到 6 孔培养板的一个孔中。
    7. 轻轻水平摇动6孔板,将6孔培养板置于37°C细胞培养箱中约1小时,然后进行下一步。
  7. 消化18小时后,取出胶原酶A消化的角膜缘组织,只剩下一些可见的小簇和未消化的巩膜组织。
    注:高倍率显微镜揭示了一个由许多密集堆积的细胞(包括LNC)组成的簇。
  8. 使用200μL移液器吸头在立体显微镜下从未消化的巩膜组织中分离簇。
  9. 将簇转移到3.5cm培养板中,并将它们浸入0.25%TE中,然后将板置于细胞培养箱中15分钟。
  10. 加入 1 mL MESCM 和 10% 敲除血清以停止细胞消化,并使用 1 mL 移液器吸头轻轻上下移液以将簇重悬到单个细胞中。
  11. 将细胞悬液转移到 15 mL 离心管中,并以 200 x g 离心 5 分钟。
  12. 小心地除去上清液,不要干扰细胞沉淀,然后加入 1 mL MESCM 以重悬细胞。
  13. 上下移液2-3次,直至底部细胞沉淀均匀悬浮于MESCM中,使用1mL移液器吸头,取20μL细胞悬液进行细胞计数。
  14. 用 1 mL 移液器吸头将细胞悬液转移到 5% 基底膜基质包被的 6 孔板中,并将 MESCM 的体积增加到 2.5 mL。
  15. 水平轻轻摇动 6 孔板以均匀分布细胞。
  16. 成像和记录后将细胞转移到培养箱中。每天观察和拍摄细胞,每3-4天更换一次培养基。

2. LNC的鉴定

  1. 免疫荧光染色
    1. 在 37°C 细胞培养箱中使用 1 mL 0.25% TE 消化板底部的 LNC 5 分钟。
    2. 通过加入 1 mL MESCM(含有敲除血清)终止消化,将细胞悬液以 200 x g 离心 5 分钟,并小心吸出上清液。
    3. 加入 1 mL MESCM 以重悬悬于悬浮液中的细胞。为 4 张载玻片(20 μL/载玻片)制备 80 μL 细胞悬液(每张载玻片 4 ×10 个 3 个 细胞),并按照制造商的说明使用离心机系统将细胞沉积到显微镜载玻片上。
    4. 使用4%多聚甲醛固定细胞(在步骤3中粘附在载玻片上)约10分钟,然后用0.2%Triton X-100在PBS中透化载玻片上的细胞15分钟。
    5. 用2%牛血清白蛋白(BSA)封闭细胞1小时,然后将它们与一抗(Pan-CK [1:1000],Vim [1:100],CD90 [1:100],CD105 [1:200],SCF [1:100],PDGFRβ [1:100])在振荡器上在4°C下孵育过夜。 孵育后,通过用PBST(PBS + 0.1%吐温20)洗涤(5分钟/洗涤,3x)载玻片除去未结合的一抗。
    6. 将相应的二抗(驴抗小鼠 IgG 二抗 TRITC [1:1000]、驴抗兔 IgG FITC [1:500]、驴抗小鼠 IgG 488 [1:300]、驴抗兔 IgG 594 [1:400])与合适的 IgG 非特异性 IgG 抗体孵育 1 小时。使用PBST(5分钟/洗涤,3x)除去未结合的二抗。
    7. 用 5 μg/mL DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚)对细胞核进行复染并密封载玻片。
    8. 使用荧光显微镜(放大倍率:400倍;曝光时间:50 毫秒)。
  2. 实时荧光定量聚合酶链反应(qPCR)
    1. 按照制造商的说明,使用RNA分离试剂盒提取总RNA。
    2. 使用高容量 cDNA 转录试剂盒将 1-2 μg 总 RNA 逆转录为 cDNA。
    3. 在含有cDNA(100ng),TaqMan基因表达检测试剂盒(1μL),通用PCR预混液(10μL)和ddH 2O(至20μL)的20μL溶液中进行逆转录(42°C,2分钟;50°C,85分钟)和qPCR(95°C,5分钟;95°C,10秒,40个循环)。
    4. 使用比较 CT 技术 (ΔΔCT)4,9 检查相对基因表达。

3. LNC的表征

  1. 细胞计数(血细胞计数器)
    1. 在37°C细胞培养箱中使用0.25%TE从板底部消化LNC5分钟。
    2. 通过加入 1 mL MESCM(含有敲除血清)终止消化,将细胞悬液以 200 x g 离心 5 分钟,并小心吸出上清液。
    3. 加入 1 mL MESCM 以重悬细胞,然后在 0.5 mL 离心管中取 10 μL 细胞悬液。加入等体积的0.4%台盼蓝染色液。
    4. 将 10 μL 染色的细胞悬液放在血细胞计数器的计数区域,并用盖玻片盖住进行计数。
      注意:五个中间正方形区域中的单元格数定义为“A”;1mL中的细胞数计算为5A×10,4×2。
  2. 使用流式细胞术检查 LNC 和 BMMSC 标志物15
    1. 使用流式细胞术15 检测 LNC 和 BMMSC 中 SCF、CD73、CD90 和 CD105 的表达(2-4 ×10 6 个事件/样品,从每个样品中获得 2,000 个细胞,总共 550,000 个同时设门的细胞)。
    2. 根据试剂盒说明,使用预标记抗体(SCF [1:50]、CD70 [1:50]、CD90 [1:50]和CD105 [1:50])在封闭缓冲液(3%BSA和0.05%吐温-20的PBS)中收集和染色细胞15分钟。
    3. 使用流式细胞仪进行荧光激活细胞分选 (FACS) 分析。在这项研究中,使用了 FACS Diva 软件和 FlowJo 软件。对于每个样品,记录 10,000 个事件并设门并分析活细胞。

结果

LNC的成长
如上所述,根据胶原酶A(2mg / mL)消化角膜巩膜边缘组织的酶切方法成功分离LNC(图1)。与先前报道的研究3一致,在胶原酶A消化后,在显微镜下观察到毛毛虫样簇(图2)。纺锤体细胞的比例随着细胞传代而逐渐增加。纺锤形细胞可以在包被的 5% 基底膜基质板上生长,这与在没有包被基底膜基质

讨论

角膜透明度通常通过角膜基质中小纤维(直径 25-30 nm)的规则排列和分布来维持,这对于正常视力至关重要16。全世界有 2.53 亿视障者,其中 3600 万人是盲人17.世界卫生组织 (WHO) 认为角膜盲是人类视力最严重的危害之一,占全球所有失明的 5.1%16。CES正常的角膜上皮缺损可以快速愈合而不会留下疤痕18。据估计,全球有超过...

披露声明

所有作者均未披露任何相关的财务信息。

致谢

感谢王伟、徐玲娟、刘荣对这项工作的指导,感谢谭永瑶、金碧辉、尤春秀和李贵刚提供部分材料,感谢苏冠宇撰写手稿,感谢周小、熊一红、谢华涛对稿件的校正,感谢李贵刚的全力指导。本研究得到了国家自然科学基金(82070936、81470606、81570819)、湖北省卫生与计划生育科研项目(No.WJ2017M073)、同济医院转化医学研究十大项目(No.2016ZHYX20)、武汉市医学青年先锋培养项目(No.2015whzqnyxggrc10)、全球人才招聘计划(G2022154028L)、湖北省国家卫健委2022年度项目(WJ2021ZH0005)、湖北省财政部学科建设基金(42000022815T000000102)

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
4',6-Diamidino-2-PhenylindoleThermoFisherD13065μg/mL
Amphotericin BSigmaV9009191.25 μg/mL
Anti-CD73Abcamab2021221:50
Bovine Serum AlbuminMERCKA1933-
CD105Proteintech67075-1-Ig1:200
CD105Abcamab1140521:50
CD90Proteintech66766-1-Ig1:100
CD90Abcamab3077361:50
Cell IncubatorShanghai LishenK1119K4644HF90(HT)
Centrifuge systemStatSpin StatSpin CytoFuge 12-
Collagenase ARoche101035780012 mg/mL
Confocal microscopeZeiss LSM700-
Culture platevirya350035635 mm
DME/F-12 1:1 (1x) cytivaSH30023.0190%
Donkey anti-Mouse IgG (H+L) Secondary AntibodyThermoFisherA160161:1000
Donkey anti-rabbit IgG (H+L) Secondary AntibodyThermoFisher315681:1000
FACS Diva sofwareBD BiosciencesTree Star-
Flow CytometerBD BiosciencesBecton Dickinson LSRII-
Fluorescence microscopeolympuscx31 
GentamicinSigmaG191450 μg/mL
HemocytometerMERCKZ359629Bright-Line
High-capacity cDNA Transcription KitThermoFisher4374966
Inverted phase-contrast microscope UOPDSZ2000X
ITS (insulin, transferrin, sodium selenite)SigmaI31465 μg/mL insulin, 5 μg/mL transferrin, 5 ng/mL sodium selenite
KnockOut SR Serum Replacement for ESCs/iPSCsgibco10828-02810%
MatrigelBioCoat356234-
Pan-CKAbcamab77531:1000
ParaformaldehydeNoninBioNBS01354.00%
ParaformaldehydeMKBioMM-15054%
PDGFRβAbclonalA14441:100
Real-time fluorescence quantitative PCR instrumentApplied BiosystemsStep One Plus-
Recombinant Human FGF-basicPeprotech100-18B4 ng/mL
Recominant Human Leukemia Inhibitory Factor(Lif)Peprotech300-0510 ng/mL
RNeasy Mini RNA Isolation KitQiagen74104-
SCFBiossbs-0545R1:100
SCFAbcamab526031:50
StereomicroscopeZEISSSteREO Discovery. V8
Sterile surgical round bladeCareforde29500size 10
TaqMan Gene Expression Assay MixApplied Biosystems4448489
Triton X-100MERCKX1000.20%
Trypan blueThermoFisher152500610.40%
Trypsin-EDTAGenviewGP31080.25%
Tween 20MERCKP9416-
Ultra Clean BenchLaiTeLT20200705SW-CJ-IFDG
Universal PCR Master MixApplied Biosystems4304437
Vim Abcamab925471:100

参考文献

  1. Le, Q., Xu, J., Deng, S. X. The diagnosis of limbal stem cell deficiency. Ocular Surface. 16 (1), 58-69 (2018).
  2. Polisetty, N., Fatima, A., Madhira, S. L., Sangwan, V. S., Vemuganti, G. K. Mesenchymal cells from limbal stroma of human eye. Molecular Vision. 14, 431-442 (2008).
  3. Xie, H. T., Chen, S. Y., Li, G. G., Tseng, S. C. Isolation and expansion of human limbal stromal niche cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (1), 279-286 (2012).
  4. Li, G. G., Zhu, Y. T., Xie, H. T., Chen, S. Y., Tseng, S. C. Mesenchymal stem cells derived from human limbal niche cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (9), 5686-5697 (2012).
  5. Li, G. G., Chen, S. Y., Xie, H. T., Zhu, Y. T., Tseng, S. C. Angiogenesis potential of human limbal stromal niche cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (7), 3357-3367 (2012).
  6. Hu, W., Zhang, Y., Tighe, S., Zhu, Y. T., Li, G. G. A new isolation method of human lacrimal canaliculus epithelial stem cells by maintaining close association with their niche cells. International Journal of Medical Sciences. 15 (12), 1260-1267 (2018).
  7. Kumar, A., Xu, Y., Yang, E., Du, Y. Stemness and regenerative potential of corneal stromal stem cells and their secretome after long-term storage: Implications for ocular regeneration. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (8), 3728-3738 (2018).
  8. Xiao, Y. T., Qu, J. Y., Xie, H. T., Zhang, M. C., Zhao, X. Y. A comparison of methods for isolation of limbal niche cells: Maintenance of limbal epithelial stem/progenitor cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 61 (14), 16 (2020).
  9. Zhu, H., et al. Limbal niche cells and three-dimensional matrigel-induced dedifferentiation of mature corneal epithelial cells. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 63 (5), 1 (2022).
  10. Basu, S., et al. Human limbal biopsy-derived stromal stem cells prevent corneal scarring. Science Translational Medicine. 6 (266), 266ra172 (2014).
  11. Acar, U., et al. Effect of allogeneic limbal mesenchymal stem cell therapy in corneal healing: role of administration route. Ophthalmic Research. 53 (2), 82-89 (2015).
  12. Katikireddy, K. R., Dana, R., Jurkunas, U. V. Differentiation potential of limbal fibroblasts and bone marrow mesenchymal stem cells to corneal epithelial cells. Stem Cells. 32 (3), 717-729 (2014).
  13. Polisetti, N., Sharaf, L., Reinhard, T., Schlunck, G. Isolation and ex vivo expansion of limbal mesenchymal stromal cells. Bio-Protocols. 12 (14), e4471 (2022).
  14. Xie, H. T., Chen, S. Y., Li, G. G., Tseng, S. C. Limbal epithelial stem/progenitor cells attract stromal niche cells by SDF-1/CXCR4 signaling to prevent differentiation. Stem Cells. 29 (11), 1874-1885 (2011).
  15. Li, G., et al. Human limbal niche cells are a powerful regenerative source for the prevention of limbal stem cell deficiency in a rabbit model. Scientific Reports. 8, 6566 (2018).
  16. Kumar, A., Yun, H., Funderburgh, M. L., Du, Y. Regenerative therapy for the cornea. Progress In Retinal and Eye Research. 87, 101011 (2022).
  17. Pineda, R. . World Corneal Blindness. Foundations of Corneal Disease. , 299-305 (2020).
  18. Zieske, J. D., Guimarães, S. R., Hutcheon, A. E. Kinetics of keratocyte proliferation in response to epithelial debridement. Experimental Eye Research. 72 (1), 33-39 (2001).
  19. Resnikoff, S., et al. Global data on visual impairment in the year 2002. Bulletin of the World Health Organization. 82 (11), 844-851 (2004).
  20. Tan, Y., et al. Limbal bio-engineered tissue employing 3D nanofiber-aerogel scaffold to facilitate LSCs growth and migration. Macromolecular Bioscience. 22 (5), e2100441 (2022).
  21. Aghamirsalim, M., et al. 3D printed hydrogels for ocular wound healing. Biomedicines. 10 (7), 1562 (2022).
  22. Sasamoto, Y., Ksander, B. R., Frank, M. H., Frank, N. Y. Repairing the corneal epithelium using limbal stem cells or alternative cell-based therapies. Expert Opinion on Biological Therapy. 18 (5), 505-513 (2018).
  23. Rohaina, C. M., et al. Reconstruction of limbal stem cell deficient corneal surface with induced human bone marrow mesenchymal stem cells on amniotic membrane. Translational Research. 163 (3), 200-210 (2014).
  24. O'Callaghan, A. R., Dziasko, M. A., Sheth-Shah, R., Lewis, M. P., Daniels, J. T. J. A. B. Oral mucosa tissue equivalents for the treatment of limbal stem cell deficiency. Advanced Biosystems. 4 (7), e1900265 (2020).
  25. Yu, D., Chen, M., Sun, X., Ge, J. Differentiation of mouse induced pluripotent stem cells into corneal epithelial-like cells. Cell Biology International. 37 (1), 87-94 (2013).
  26. Zeppieri, M., et al. Adipose-derived stem cells for corneal wound healing after laser-induced corneal lesions in mice. Journal of Clinical Medicine. 6 (12), 115 (2017).
  27. Kumar, A., Kumar, V., Rattan, V., Jha, V., Bhattacharyya, S. Secretome cues modulate the neurogenic potential of bone marrow and dental stem cells. Molecular Neurobiology. 54 (6), 4672-4682 (2017).
  28. Hayashi, R., et al. Coordinated generation of multiple ocular-like cell lineages and fabrication of functional corneal epithelial cell sheets from human iPS cells. Nature Protocols. 12 (4), 683-696 (2017).
  29. Guo, P., et al. Limbal niche cells are a potent resource of adult mesenchymal progenitors. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 22 (7), 3315-3322 (2018).
  30. Wang, W., et al. Differential gene expression between limbal niche progenitors and bone marrow derived mesenchymal stem cells. International Journal of Medical Sciences. 17 (4), 549-557 (2020).
  31. González, S., Deng, S. X. Presence of native limbal stromal cells increases the expansion efficiency of limbal stem/progenitor cells in culture. Experimental Eye Research. 116, 169-176 (2013).
  32. Funderburgh, M. L., Du, Y., Mann, M. M., SundarRaj, N., Funderburgh, J. L. PAX6 expression identifies progenitor cells for corneal keratocytes. FASEB Journal. 19 (10), 1371-1373 (2005).
  33. Funderburgh, J. L., Funderburgh, M. L., Du, Y. Stem cells in the limbal stroma. Ocular Surface. 14 (2), 113-120 (2016).
  34. Chen, S. Y., Hayashida, Y., Chen, M. Y., Xie, H. T., Tseng, S. C. A new isolation method of human limbal progenitor cells by maintaining close association with their niche cells. Tissue Engineering. Part C, Methods. 17 (5), 537-548 (2011).
  35. Sato, T., Clevers, H. SnapShot: Growing organoids from stem cells. Cell. 161 (7), 1700-1701 (2015).

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