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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该方案描述了一种非酶和直接的方法,用于分离 7-9 日龄的新生小鼠骨髓细胞,并使用 L929 细胞的上清液作为粒细胞集落刺激因子 (M-CSF) 的来源来产生分化的巨噬细胞。进一步分析骨髓来源的巨噬细胞表面抗原 F4/80 、 CD206 、 CD11b 和功能能力。

摘要

从成年小鼠中分离骨髓的各种技术已经得到广泛确立。然而,从新生小鼠中分离骨髓具有挑战性且耗时,但对于某些模型来说,它在翻译上是相关和必要的。该方案描述了一种从 7-9 日龄幼崽制备骨髓细胞的有效且直接的方法。然后,这些细胞可以进一步分离或分化为感兴趣的特定细胞类型。巨噬细胞是重要的免疫细胞,在炎症和感染中起主要作用。在发育过程中,新生儿巨噬细胞对组织重塑有显著贡献。此外,新生儿巨噬细胞的表型和功能与成年巨噬细胞不同。该方案还概述了在 L929 条件培养基存在下新生儿巨噬细胞与分离骨髓细胞的分化。使用流式细胞术分析评估分化新生儿巨噬细胞的表面标志物。为了证明功能,还使用 pH 敏感染料偶联的大 肠杆菌测试了吞噬效率。

引言

骨髓包含造血干细胞群和间充质干细胞群,这些细胞群是自我更新的,可以分化成各种细胞谱系。骨髓中的造血干细胞产生骨髓和淋巴谱系1。间充质干细胞产生成骨细胞(骨骼)、脂肪细胞(脂肪)或软骨细胞(软骨)2。这些细胞在细胞生物学和组织工程领域有多种应用,包括基因治疗 3,4。存在于骨髓中的祖细胞在谱系特异性生长因子存在的情况下分化成特定的细胞类型。促红细胞生成素促进红细胞祖细胞的增殖,粒细胞集落刺激因子 (G-CSF) 刺激中性粒细胞集落的生长,血小板生成素调节血小板的产生,这是谱系特异性生长因子的几个例子5。细胞表面抗原标记的 FACS 和磁激活细胞分选 (MACS) 是分离和纯化特定骨髓来源细胞类型的成熟方法6

尽管新生儿研究正在朝着寻找新生儿死亡原因和解决早产并发症的方向发展,但直接治疗开发仍然是一个未得到满足的医疗需求。Smith 和 Davis 表示,“儿科患者仍然是治疗性孤儿”7。在新生儿临床研究中,获得同意存在一些挑战,例如样本小、结果的终生影响以及获得同意的伦理问题

研究方案

所有程序均由西弗吉尼亚州机构动物护理和使用委员会批准,并按照国家研究委员会的《实验动物护理和使用指南》的建议进行。本研究使用 C57BL/6J 小鼠幼崽。材料 表中列出了所有使用的试剂和设备的详细信息。

1. 培养基制备

  1. 在 5 mL 离心管中制备 3 mL 补充有 10% FBS、2 mM 谷氨酰胺、25 mM HEPES 和青霉素 (100 U/mL)/链霉素 (100 μg/mL) 的 MEM 培养基,并保持在冰上。
  2. 如果需要将骨髓祖细胞储存在液氮中,请准备含有 10% DMEM、80% FBS 和 10% DMSO 的冷冻培养基。
  3. 对于完整的 DMEM,制备补充有 10% FBS、2 mM 谷氨酰胺、25 mM HEPES 和青霉素 (100 U/mL)/链霉素 (100 μg/mL) 的 DMEM。
  4. 对于巨噬细胞分化,制备补充有 10% FBS、2 mM 谷氨酰胺、青霉素 (100 U/mL)/链霉素 (100 μg/mL) 和 10% L929 细胞上清液的 DMEM9,10,11。

代表性结果

使用本研究中概述的方法,可以从 5 只 C57BL/6 小鼠幼崽的窝产仔数中成功分离 25 至 3700 万个骨髓细胞。这种方法已在 5 到 7 只幼崽的窝产仔数中得到验证。在我们的实验中,隔离的最低年龄为 7 天。根据窝产仔数和实验所需的细胞数量少于 100 万,研究人员可以对 7 天以下的小鼠尝试此方案。在作为 M-CSF 来源的 L929 细胞上清液存在下,骨髓细胞在 5 天内分化成巨噬细胞(图 2

讨论

涉及新生小鼠模型的研究可能会带来许多挑战。与成人相比,新生儿的免疫系统发育中是独一无二的8。因此,不应假设从成年动物模型生成的数据适用于新生儿,几篇已发表的著作已经很好地阐明了这一想法18,19。因此,新生儿特异性模型和细胞来源对于研究早期免疫反应的复杂性是必要的。然而,由于新生小鼠的大小、敏感性和脆?.......

披露声明

作者与本文没有利益冲突。

致谢

这项工作得到了美国国立卫生研究院 [R01 AI163333] 对 CMR 的支持。我们感谢以下赠款为西弗吉尼亚大学流式细胞术和单细胞核心设施提供的额外资金支持:WV CTSI 赠款 GM104942、肿瘤微环境 CoBRE 赠款 GM121322 和 NIH 赠款 OD016165。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
40 µm strainerGreiner542040Cell culture
96 well round (U) bottom plateThermo Scientific12-565-65Cell culture
Anti-mouse CD11b-BV786BD Biosciences740861FACS analysis
Anti-mouse CD206-Alexa Fluor488BD Biosciences141709FACS analysis
Anti-mouse F4/80-PEBD Biosciences565410FACS analysis
Countess3Thermo ScientificTSI-C3ACCAutomated cell counter
DMEMHycloneSH30022.01Cell culture
DMSOVWRWN182Cell culture
DPBS, 1xCorning21-031-CVCell culture
Escherichia coli O1:K1:H7ATCC11775Infection
EVOS FL Invitrogen12-563-649Cell Imaging System 
FBSAvantor 76419-584Cell culture
FluoroBright BMDMThermo fisher ScientificA1896701Dye free culture media
GlutamineCytivaSH30034.01Cell culture
HEPESCytivaSH30237.01Cell culture
L-929ATCCDifferentiation
LSRFortessaBecton DickinsonFlowcytometer
Lysotracker red DND 99InvitrogenL7528Fluorescent dye
MEMCorning15-010-CVCell culture
Penicillin /streptomycin HycloneSV30010Cell culture
pHrodo green STP ester InvitrogenP35369Fluorescent dye
T75 flaskCell star658170Cell culture
Trypsin-EDTAGibco25300120Cell culture
Zeiss 710 ZeissP20GM103434Confocal

参考文献

  1. Lucas, D. Structural organization of the bone marrow and its role in hematopoiesis. Curr Opin Hematol. 28 (1), 36-42 (2021).
  2. Deb, A. How stem cells turn into bone and fat. N Engl J Med. 380 (23),....

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