具有光生物调节增强的水凝胶中脂肪来源干细胞的三维细胞培养

摘要

在这里，我们提出了一个方案，演示了使用水凝胶作为脂肪来源干细胞 （ADSC） 培养的三维 （3D） 细胞培养框架，并引入光生物调节 （PBM） 以增强 ADSC 在 3D 培养环境中的增殖。

摘要

脂肪干细胞 （ADSC） 具有类似于干细胞的多能间充质特性，由于其具有多种细胞分化的能力以及增强迁移、增殖和减轻炎症的能力，因此经常被用于再生医学。然而，ADSC在伤口内的存活和植入方面经常面临挑战，主要是由于不利的炎症条件。为了解决这个问题，已经开发了水凝胶来维持ADSC在伤口中的活力并加速伤口愈合过程。在这里，我们旨在评估光生物调节 （PBM） 在 3D 细胞培养框架内对 ADSC 增殖和细胞毒性的协同影响。将永生化的ADSC接种到密度为2.5 x 10³ 个细胞的10 μL水凝胶中，并使用525 nm和825 nm二极管以5 J/cm² 和10 J/cm²的流度进行照射。在 PBM 暴露后 24 小时和 10 天评估形态学变化、细胞毒性和增殖。ADSC表现出圆形形态，并作为单个细胞或球状聚集体分散在整个凝胶中。重要的是，PBM和3D培养框架均未显示出对细胞的细胞毒性作用，而PBM显著增强了ADSC的增殖速率。总之，本研究证明了使用水凝胶作为 ADSC 培养的合适 3D 环境，并引入了 PBM 作为一种重要的增强策略，特别是解决了与 3D 细胞培养相关的缓慢增殖速率。

引言

ADSC是间充质多能祖细胞，具有自我更新和分化成多个细胞谱系的能力。这些细胞可以在脂肪抽吸过程中从脂肪组织的基质血管部分 （SVF） 中收获¹。ADSC已成为用于再生医学的理想干细胞类型，因为这些细胞含量丰富，收获微创，易于获取，并且表征良好²。干细胞疗法通过刺激细胞迁移、增殖、新生血管形成和减少伤口内的炎症，为伤口愈合提供了一种可能的途径 ^3,4。大约 80% 的 ADSC 再生能力可归因于通过其分泌组⁵ 的旁分泌信号传导。以前，有人建议将干细胞或生长因子直接局部注射到受损组织中可以非法充分的体内修复机制^6,7,8。然而，这种方法面临着一些挑战，例如由于炎症环境导致的存活率低和受损组织内干细胞植入减少 ⁹。此外，引用的原因之一是缺乏细胞外基质来支持移植细胞的存活和功能¹⁰。为了克服这些挑战，现在的重点是开发生物材料载体，以支持干细胞的活力和功能。

研究方案

注意：有关本协议中使用的所有材料、试剂和软件的详细信息 ，请参阅材料表 。该协议已在 图 1 中以图形方式总结。

1. 二维（2D）细胞培养

注意：永生化的ADSC（1x10⁶ 个细胞）在-195.8°C的液氮中储存在含有1mL细胞冷冻培养基的冷冻保存瓶中。

1. 制备2D细胞回收培养基和2D培养瓶
   1. 将 39 mL 基础培养基转移到 50 mL 离心管中
   2. 用 20% 胎牛血清 （FBS;10 mL） 和抗生素 （1 mL）（0.5 mL 青霉素-链霉素和 0.5 mL 两性霉素 B）富集基础培养基。
   3. 通过将 6 mL 细胞回收培养基转移到培养瓶中来预处理 T75 培养瓶，并在 37 °C、5% CO₂ 和 85% 湿度下孵育 45 分钟（这可以在执行细胞回收步骤时完成以节省时间）。
      注意：使用前将整个培养基加热至37°C，并将其储存在4°C下最多1周。
2. 2D细胞回收
   1. 从液氮储罐中取出冷冻管，并在37°C的水浴中快速解冻小瓶，直至完全解冻。
   2. 使用离心机在1006× g 下旋转冷冻管....

讨论

ADSC是用于再生医学的理想细胞类型，因为它们会刺激各种过程以帮助伤口愈合^3,4。然而，有几个挑战需要规避，例如，存活率低和细胞在损伤部位的植入无效⁹.永生化细胞被用作市售细胞系，因为与原代细胞相比，它们可以传代更多代，不需要收获，表征良好，并且是同质群体，确保结果一致³¹。本研究的目的是使用.......

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
525 nm diode laser	National Laser Centre of South Africa	EN 60825-1:2007
825 nm diode laser	National Laser Centre of South Africa	SN 101080908ADR-1800
96 Well Strip Plates	Sigma-Aldrich	BR782301
Amphotericin B	Sigma-Aldrich	A2942	Antibiotic (0.5%; 0.5 mL)
CellTiter-Glo 3D Cell Viability Assay	Promega	G9681	ATP reagent, Proliferation assay Kit
Corning 2 mL External Threaded Polypropylene Cryogenic Vial	Corning	430659	cryovial
CryoSOfree	Sigma-Aldrich	C9249	Cell freezing media
CytoTox96 Non-Radioactive Cytotoxicity Assay	Promega	G1780	Cytotoxicity reagent
Dulbecco’s Modified Eagle Media	Sigma-Aldrich	D5796	Basal medium (39 mL/44 mL)
FieldMate Laser Power Meter	Coherent	1098297
Flat-bottomed Corning 96 well clear polystyrene plate	Sigma-Aldrich	CLS3370
Foetal bovine serum	Biochrom	S0615	Culture medium enrichment (5 mL; 10% / 10 mL; 20%)
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS)	Sigma-Aldrich	H9394	Rinse solution
Heracell 150i CO2 incubator	Thermo Scientific	51026280
Heraeus Labofuge 400	Thermo Scientific	75008371	Plate spinner for 96 well plates
Heraeus Megafuge 16R centrifuge	ThermoFisher	75004270
Immortalized ADSCs	ATCC	ASC52Telo hTERT, ATCC SCRC-4000	Passage 37
Invitrogen Countess 3	Invitrogen	AMQAX2000	Automated cell counter for Trypan Blue
Julabo TW20 waterbath	Sigma-Aldrich	Z615501	Waterbath used to warm media to 37 °C
Olympus CellSens Entry	Olympus	Version 3.2 (23706)	Imaging software: digital image acquisition
Olympus CKX41	Olympus	SN9B02019	Inverted light microscope
Olympus SC30 camera	Olympus	SN57000530	Camera attached to inverted light microscope
Opaque-walled Corning 96 well solid polystyrene microplates	Sigma-Aldrich	CLS3912	Opaque well used for ATP luminescence
Penicillin-Streptomycin	Sigma-Aldrich	P4333	Antibiotic (0.5%; 0.5 mL)
SigmaPlot 12.0	Systat Software Incorporated
TrueGel3D – True3	Sigma-Aldrich	TRUE3-1KT	10 µL
TrueGel3D Enzymatic Cell Recovery Solution	Sigma-Aldrich	TRUEENZ	01:20
Trypan Blue Stain	Thermo Fisher - Invitrogen	T10282	0.4% solution
TrypLE Select Enzyme (1x)	Gibco	12563029	Cell detachment solution
Victor Nivo Plate Reader	Perkin Elmer	HH3522019094	Spectrophotometric plate reader