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本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 代表性结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

该协议展示了完整 果蝇 幼虫中单个神经元的激光细胞消融。该方法能够研究减少发育中的神经系统中神经元之间竞争的效果。

摘要

该方案描述了在完整黑腹果蝇幼虫的中枢神经系统 (CNS) 中使用 2 光子激光系统进行单神经元消融。使用这种非侵入性方法,可以以细胞特异性方式操纵发育中的神经系统。破坏网络中单个神经元的发育可用于研究神经系统如何补偿突触输入的损失。在果蝇的巨纤维系统中,单个神经元被特异性消融,重点是两个神经元:突触前巨纤维 (GF) 和突触后尾转子运动神经元 (TTMn)。GF 与同侧 TTMn 突触,这对逃逸反应至关重要。在 GF 开始轴突生长后,消融第 3 龄大脑中的一个 GF,在 CNS 发育过程中永久去除细胞。剩余的 GF 与缺失的邻居发生反应,并与对侧 TTMn 形成异位突触末端。这种非典型的、双侧对称的末端支配两个 TTMns(如染料偶联所示),并驱动两个运动神经元(如电生理学测定所示)。总之,单个中间神经元的消融表明双侧神经元之间的突触竞争可以补偿一个神经元的损失并恢复对逃逸回路的正常反应。

引言

激光消融是解剖各种生物体神经回路的首选工具。它在蠕虫和苍蝇等模型遗传系统中开发,已应用于整个动物王国,以研究神经系统的结构、功能和发育 1,2,3。在这里,采用单神经元消融来研究神经元在果回路组装过程中如何相互作用。果蝇的逃逸系统是最受欢迎的分析回路,因为它包含成年果蝇中最大的神经元和最大的突触,并且该回路在过去几十年中得到了很好的表征4。神经元-神经元相互作用在 Giant Fiber 电路的组装中的作用是本研究的重点。

自 1960 年代 Hubel 和 Wiesel 的工作以来,一种相互作用一直是神经科学的焦点,即“突触竞争”5,6。在该协议中,激光消融用于重新审视通过单细胞消融在果蝇巨纤维系统 (GFS) 中的竞争作用,在那里可能会发现该现象的分子基础。

由于各种原因,包括可视化目标神经元、消融方法的精度以及标本的存活率,对发育中的果蝇中的神经元进行消融一直很困难。为了克服 GFS 中的这些问题,使用 UAS/Gal4 系统

研究方案

用于该方案的所有动物都属于黑腹果物种。围绕该物种的使用不存在道德问题。开展这项工作不需要道德审查。材料表中列出了研究中使用的果蝇物种、试剂和设备的详细信息。

1. 培育 果蝇 并选择正确的幼虫阶段

  1. 选择驱动待消融细胞表达的 Gal4 驱动系,并将其与 UAS-GFP 报告基因系重组或交叉。在 25 °C 的标准果蝇食物上饲养果蝇。
    注:对于巨纤维 (GF) 消融,R91H05-Gal4 或 A307-Gal4 与 UAS-GFP 重组。与 UAS-GFP 重组的 ShakB(致死)-GAL4 用于 TTMn 消融(参见 材料表)。
  2. 选择已经开始从食物中出来并爬上食品瓶侧面的幼虫。这些幼虫处于游荡阶段,这是进行 GF 细胞消融的首选阶段。
    注意:消融可以在任何幼虫阶段进行。最后一个幼虫阶段对于操纵 GFS 的发育很重要,因为 GF 细胞体可以在大脑中很容易识别,但 GF 轴突在这个阶段还没有与其目标建立联系。

2. 准备 3 龄幼虫

注意:使用类似于 Burra ....

代表性结果

该方法可用于操纵 果蝇神经系统中特定神经元网络的发育。这里的主要研究问题是突触连接的形成。去除突触前 GF 或突触后 TTMn 能够研究该中央突触的反应性突触发生以及对突触功能和发育至关重要的分子机制。如方案中所述,对其中一个 GF 或其中一个 TTMns 进行了激光细胞消融,并分析了成年果蝇蛹发育后对突触的影响。

为确保该程序不会对动物生存产生负面影响?.......

讨论

事实证明,使用 2 光子显微镜进行细胞消融是操纵 果蝇神经元回路发育的一种非常成功的方法。由于这种方法是非侵入性的,因此对动物造成的伤害最小。数据支持这种对已知电路的单元特异性操作的有用性。

消融成功的关键是选择最合适的 Gal4 驱动程序。由于 GFS 得到了很好的研究,因此已经描述了许多特定的 Gal4 驱动程序系列7。大多数 Gal4 驱动?.......

披露声明

作者没有什么可披露的。

致谢

在 FAU Stiles-Nicholson 脑研究所高级细胞成像核心中对 2 光子显微镜进行了实验。我们要感谢 Jupiter Life Science Initiative 的财政支持。

....

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Alexa Fluor 488 AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)Jaxkson ImmunoResearch111-545-003
Anti-green fluorescent protein, rabbitFisher ScientificA111221:500 concentration
Apo LWD 25x/1.10W ObjectiveNikonMRD77220water immersion long working distance
Bovine Serum Albumin (BSA)SigmaB4287-25G
Chameleon Ti:Sapphire Vision II LaserCoherent
Cotton BallGenesee Scientific51-101
Dextra, Tetramethylrhodamine, 10,000 MW, Lysine Fixable (fluoro-Ruby)Fisher ScientificD1817
Drosophila salinerecipe from Gu and O'Dowd, 2006
Ethyl EtherFisher ScientificE134-1Danger, Flammable liquid
Fly food B (Bloomington recipe)LabExpress7001-NV
Methyl salicylateFisher ScientificO3695-500
Microcentrifuge tube 1.5 mLEppendorf22363204
Microscope cover-slip 18x18 #1.5Fisher Scientific12-541A
Neurobiotin TracerVector LaboratoriesSP-1120
Nikon A1R multi-photon microscopeNikonon an upright FN1 microsope stand
NIS Elements Advanced ResearchNikonAcquisition and data analysis software
Paraformaldehyde (PFA)Fisher ScientificT353-500
PBS (Phosphate Buffered Salin)Fisher BioReagentsBP2944-100Tablets
R91H05-Gal4Bloomington Drosophila Stock Center40594
shakB(lethal)-GAl4Bloomington Drosophila Stock Center51633
Superfrost microscope glass slideFisher Scientific12-550-143
Triton X-100Fisher Scientific422355000detergent solution
UAS-10xGFPBloomington Drosophila Stock Center32185

参考文献

  1. Chung, S. H., Mazur, E. Femtosecond laser ablation of neurons in C. elegans for behavioral studies. Appl Phys A Mater Sci Process. 96 (2), 335-341 (2009).
  2. Bower, D. V., et al. A....

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