首先将福尔马林固定、石蜡包埋的脑切片放入带螺旋盖的培养皿中。将关闭溶液连接到盘子上,用铝箔盖住它们,并在摇动一天的同时在四摄氏度下孵育。第二天,将所有样品转移到新培养皿中,并用如前所述的开启溶液孵育它们。
孵育结束时,将样品放入试管中,并在摇动的同时用PBS洗涤三次,持续两小时。然后向样品中加入灭活溶液,并在 37 摄氏度的水浴中孵育过夜。进行三次洗涤后,向样品中加入澄清溶液,并在 55 摄氏度的水浴中孵育三至七天。
在孵育结束时,在培养箱中用 37 摄氏度的 PBST 洗涤样品三小时。第二天,向每个样品中加入 10 毫升 30% 过氧化氢,并在室温下振荡时用 PBS 洗涤样品 3 次,每次 10 分钟。接下来,在水浴中将抗原修复溶液预热至95摄氏度。
将样品转移到加热的溶液中,并在 95 摄氏度下孵育 10 分钟,然后在室温下在振荡器上孵育 40 分钟。在摇晃的同时用去离子水洗涤样品五分钟。在PBS中平衡样品。
现在将样品转移到带螺旋盖的培养皿中。在烧杯中为所有样品制备新鲜的一抗溶液后,将其添加到样品中,并在 37 摄氏度下孵育 1 至 7 天,在黑暗中轻轻摇动。然后将样品放入试管中,并在培养箱中使用预热的 37 摄氏度的 PBST 洗涤它们。
将样品移至带螺旋盖的培养皿中,并加入在PBST和0.01%叠氮化钠中制备的二抗。将样品转移到试管中,并在摇动的同时用预热的PBST在37摄氏度下洗涤三次,持续两小时。对于折射率匹配,将样品放入新培养皿中并加入 30% 的 TDE 溶液。
然后用样品中的68%TDE溶液代替30%TDE,并在室温下摇匀。经过短暂的处理后,所有组织切片在灰质和白质中都实现了最佳和均匀的透明度。