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Die D-Loop Capture (DLC) und D-Loop Extension (DLE) Assays nutzen das Prinzip der Proximity-Ligation zusammen mit quantitativer PCR, um D-Loop-Bildung, D-Loop-Extension und Produktbildung am Ort eines induzierbaren doppelsträngigen Bruchs in Saccharomyces cerevisiae zu quantifizieren.
DNA-Schäden, einschließlich DNA-Doppelstrangbrüche und Interstrang-Vernetzungen, die während der S- und G2-Phasen des Zellzyklus entstehen, können durch homologe Rekombination (HR) repariert werden. Darüber hinaus stellt HR einen wichtigen Mechanismus der Replikationsgabelrettung nach Strömungsabriss oder Zusammenbruch dar. Die Regulierung der vielen reversiblen und irreversiblen Schritte dieses komplexen Weges fördert seine Treue. Die physikalische Analyse der während der HR gebildeten Rekombinationszwischenprodukte ermöglicht die Charakterisierung dieser Kontrollen durch verschiedene Nukleoproteinfaktoren und deren Interaktoren. Obwohl es gut etablierte Methoden gibt, um spezifische Ereignisse und Zwischenprodukte im Rekombinationsweg zu untersuchen, hat sich der Nachweis der Bildung und Ausdehnung der D-Schleife, zwei kritische Schritte in diesem Signalweg, bis vor kurzem als schwierig erwiesen. Hier werden effiziente Methoden zum Nachweis von Schlüsselereignissen im HR-Signalweg beschrieben, nämlich DNA-Doppelstrang-Bruchbildung, D-Loop-Bildung, D-Loop-Extension und die Bildung von Produkten durch bruchinduzierte Replikation (BIR) in Saccharomyces cerevisiae . Diese Assays detektieren ihre relevanten Rekombinationszwischenprodukte und Produkte mit hoher Empfindlichkeit und sind unabhängig von der zellulären Lebensfähigkeit. Die Erkennung von D-Schleifen, D-Schleifenverlängerung und dem BIR-Produkt basiert auf der Proximity-Ligatur. Zusammen ermöglichen diese Assays die Untersuchung der Kinetik von HR auf Populationsebene, um die Funktionen von HR-Proteinen und Regulatoren in signifikanten Schritten des Signalwegs genau zu adressieren.
Homologe Rekombination (HR) ist ein High-Fidelity-Mechanismus zur Reparatur von DNA-Doppelstrangbrüchen (DSBs), Interstrang-Vernetzungen und ssDNA-Lücken sowie ein Weg für die DNA-Schadenstoleranz. HR unterscheidet sich von fehleranfälligen Wegen für die Reparatur / Toleranz von DNA-Schäden, wie nicht-homologe Endverbindung (NHEJ) und Transläsionssynthese, dadurch, dass es eine intakte, homologe Duplex-DNA als Spender verwendet, um das Reparaturereignis zu modellieren. Darüber hinaus sind viele der wichtigsten Zwischenprodukte im HR-Pfad reversibel, was eine exquisite Regulierung der einzelnen Pfadschritte ermöglicht. Während der S-, G2- und M-Phasen des Zellzyklus ko....
1. Vorwachstum, DSB-Induktion und Probenentnahme
HINWEIS: Die Ergänzung aller Medien mit 0,01% Adenin wird für Ade- Stämme empfohlen.
DLC-Test
Der DLC-Assay erkennt sowohl entstehende als auch ausgedehnte D-Schleifen, die durch die Invasion eines standortspezifischen DSB in einen einzelnen Donor gebildet werden (Abbildung 2). Die Psoralenvernetzung verbindet den gebrochenen Strang und den Spender physikalisch über die heteroduplexe DNA innerhalb der D-Schleife. Die Wiederherstellung der Restriktionsenzymstelle mit einem langen, hybridisierenden Oligo auf dem resezierten Strang des Bruchs ermö.......
Die vorgestellten Assays ermöglichen den Nachweis von naszierenden und erweiterten D-Schleifen (DLC-Assay), D-Loop-Erweiterung (DLE-Assay) und BIR-Produktbildung (DLE-Assay ohne hybridisierende Oligonukleotide) mittels Proximity-Ligation und qPCR. Die ChIP-qPCR von Rad51 an vom DSB entfernte Stellen wurde zuvor als Proxy für die Rad51-vermittelte Homologiesuche und D-Schleifenbildung verwendet. Dieses ChIP-qPCR-Signal ist jedoch unabhängig von der Sequenzhomologie zwischen der Bruchstelle und einem potenziellen Donor .......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Die Arbeiten im Heyer-Labor werden durch die Bewilligungen GM58015 und GM137751 an W.-D.H. Die Forschung im Piazza-Labor wird vom Europäischen Forschungsrat gefördert (ERC-StG 3D-loop, Grand Agreement 851006). D.R. wird von T32CA108459 und der A.P. Giannini Foundation unterstützt. Wir danken Shih-Hsun Hung (Heyer Lab) für die Weitergabe seiner DLC/DLE-Assay-Ergebnisse und für die zusätzliche Validierung der Änderungen an den Assays, die in diesem Protokoll detailliert beschrieben sind.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1. Pre-growth, DSB induction, and sample collection | |||
Equipment | |||
15 and 50 mL conical tubes | |||
15 mL glass culture tubes | |||
250 mL, 500 mL, or 1 L flasks | |||
60 mm x 15 mm optically clear petri dishes with flat bottom | Suggested: Corning, Catalog Number 430166; or Genesee Scientific, Catalog Number 32-150G | ||
Benchtop centrifuge with 15 and 50 mL conical tube adapters | |||
Benchtop orbital shaker or tube rotator/revolver | |||
Rotator | |||
UV crosslinker or light box with 365 nm UV bulbs set atop an orbital shaker | Suggested: Spectrolinker XL-1500 UV Crosslinker (Spectronics Corporation) or Vilbert Lourmat BLX-365 BIO-LINK, Catalog Number 611110831 | ||
Materials | |||
60% w/w sodium DL-lactate syrup | Sigma-Aldrich | L1375 | For media preparation |
Agar | Fisher | BP1423500 | For media preparation |
Bacto peptone | BD Difco | 211840 | For media preparation |
Bacto yeast extract | BD Difco | 212750 | For media preparation |
D-(+)-glucose | BD Difco | 0155-17-4 | For media preparation |
Trioxsalen | Sigma-Aldrich | T6137 | For psoralen cross-linking |
2. Spheroplasting, lysis, and restriction enzyme site restoration | |||
Supplies | |||
1.5 mL microcentrifuge tubes | |||
Dry bath | |||
Liquid nitrogen or dry ice/ethanol | |||
Refrigerated microcentrifuge or microcentrifuge | |||
Materials | |||
10X restriction enzyme (CutSmart) buffer (500 mM potassium acetate, 200 mM Tris-acetate, 100 mM magnesium acetate, 1 mg/mL BSA, pH 7.8-8.0) | |||
Zymolyase 100T | US Biological | Z1004 | For spheroplasting |
3. Restriction enzyme digest and intramolecular ligation | |||
Supplies | |||
Water bath | |||
Materials | |||
EcoRI-HF | New England Biolabs | R3101 | Restriction enzyme digest for DLC assay |
HindIII-HF | New England Biolabs | R3104 | Restriction enzyme digest for DLE assay |
T4 DNA ligase | New England Biolabs | M0202 | Intramolecular ligation |
4. DNA purification | |||
Supplies | |||
1.5 and 2 mL microcentrifuge tubes | |||
Materials | |||
Phenol/chloroform/isoamyl alcohol (P/C/IA) at 25:24:1 | Sigma-Aldrich | P2069 | DNA purification |
5. Psoralen cross-link reversal | |||
Supplies | |||
Thermocycler/PCR machine | |||
6. qPCR | |||
Supplies | |||
Lightcycler 480 | Roche | 5015278001 | qPCR machine used by the authors |
Lightcycler 96 | Roche | 5815916001 | qPCR machine used by the authors |
Materials | |||
LightCycler 480 96-Well Plate, white | Roche | 4729692001 | 96-well plates for qPCR |
SsoAdvanced Universal SYBR Green Super Mix | BioRad | 1725271 | qPCR kit used by the authors |
SYBR Green I Master Mix | Roche | 4707516001 | qPCR kit used by the authors |
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