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Das Protokoll kombiniert die Technologie der menschlichen Darmorganoide mit der Transkriptomanalyse einzelner Zellen, um einen wichtigen Einblick in die bisher unerforschte Darmbiologie zu erhalten.
Die Einzelzell-Transkriptomik hat unser Verständnis der Zellbiologie des menschlichen Körpers revolutioniert. Modernste humane Dünndarm-Organoidkulturen liefern ex vivo Modellsysteme, die die Lücke zwischen Tiermodellen und klinischen Studien schließen. Die Anwendung der Einzelzell-Transkriptomik auf humane Darmorganoide (HIO)-Modelle enthüllt bisher unerkannte Zellbiologie, Biochemie und Physiologie des Magen-Darm-Trakts. Die fortschrittlichen Einzelzell-Transkriptomik-Plattformen verwenden mikrofluidische Partitionierung und Barcoded, um cDNA-Bibliotheken zu generieren. Diese barcodierten cDNAs können von Next-Generation-Sequencing-Plattformen einfach sequenziert und von verschiedenen Visualisierungstools zur Erstellung von Karten verwendet werden. Hier beschreiben wir Methoden zur Kultivierung und Unterscheidung von humanen Dünndarm-HIOs in verschiedenen Formaten und Verfahren zur Isolierung lebensfähiger Zellen aus diesen Formaten, die für den Einsatz in Einzelzell-Transkriptionsprofilierungsplattformen geeignet sind. Diese Protokolle und Verfahren erleichtern die Verwendung von Dünndarm-HIOs, um ein besseres Verständnis der zellulären Reaktion des menschlichen Darmepithels auf transkriptioneller Ebene im Kontext einer Vielzahl unterschiedlicher Umgebungen zu erhalten.
Das Dünndarmepithel besteht aus zwei unterschiedlichen Zonen: der Krypta, in der sich die Darmstammzelle (ISC) befindet, und den Zotten, die aus differenzierten Zellen der sekretorischen und absorptiven Linie bestehen. Zu dieser Komplexität kommt die regionale Spezifität des Epithels hinzu, die einzigartige funktionelle Eigenschaften zwischen den Regionen des Dünndarms bietet. In Pionierarbeit wurden Kulturbedingungen geschaffen, in denen sowohl die menschliche Dünndarmkrypta als auch die Zottenzonen ex vivo aus chirurgischem Gewebe oder Gewebebiopsien erzeugt werden können1. Diese Kulturen schließen die Lücke zwischen Tierversuchen un....
Die hier verwendeten Organoidlinien wurden aus dem Texas Medical Center Digestive Disease Center GEMS Core gewonnen. Um zunächst Organoidlinien zu etablieren, wurden Spendergewebeproben gewaschen und enzymatisch verdaut, um die Darmkrypten freizusetzen. Krypten wurden in eine Basalmembran eingebettet und in einem Medium kultiviert. Das Institutional Review Board am Baylor College of Medicine genehmigte das Studienprotokoll zur Gewinnung von Gewebeproben, aus denen Organoidlinien etabliert wurden, und es wurde die Einverständniserklärung aller Spender eingeholt, Organoidlinien aus dem gespendeten Gewebe zu etablieren.
1. Passage von 3D....
Einzelzellsuspensionen wurden aus 2-3 Vertiefungen mit Membranzellkulturinsert, Monolayern und 3D-HIOs gepoolt, um eine ausreichende Zellausbeute zu gewährleisten und die Variation von Well zu Well zu reduzieren. Einzelzellbibliotheken wurden unter Verwendung von Reagenzien erstellt, die spezifisch für die Einzelzell-Transkriptionsprofilierungsplattform sind. und sequenziert mit gepaarten End-Reads auf einer Next-Generation-Sequencing-Plattform, 30.000 Reads/Zelle. Die Reads wurden mit Hilfe von Analysewerkzeugen für .......
Mit Hilfe von Einzelzellgenomik-Plattformen können komplexe biologische Systeme, wie z. B. aus Gewebe gewonnene HIO-Kulturen, die das Darmepithel modellieren, so aufgebrochen werden, dass individuelle zelluläre Beiträge zur biologischen Gesamtreaktion erzielt werden 4,5,6. Auch zelluläre Heterogenität und seltene Zellpopulationen können identifiziert und abgefragt werden. Der zelluläre Input muss optimiert werden, um den .......
Die Autoren haben keine Interessenkonflikte.
Die Autoren danken den Zuschüssen U19 AI157984, U01 DK103168, U19 AI144297, P30 DK56338, P01 AI057788, U19 AI116497 und NASA Cooperative Agreement Notice/TRISH NNX16AO69A.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
[Leu15]-Gastrin I | Sigma-Aldrich | G9145 | 10 nM |
0.05% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25300054 | |
0.4% Trypan blue | Millipore-Sigma | T8154 | |
0.5 M EDTA | Corning | 46-034-CI | |
1x PBS Ca- Mg- | Corning | 21-040-CM | |
24 mm Transwell | Costar | 3412 | |
24 well Nunclon delta surface tissue culture dish | Thermo Scientific | 142475 | |
40 µm cell strainer | Falcon | 352340 | |
40 µm Flowmi tip strainer | SP Bel-Art Labware | H13680-0040 | |
70 µm Flowmi tip strainer | SP Bel-Art Labware | H13680-0070 | |
96 well plate | Corning | 3595 | |
A-83-01 | Tocris | 2939 | 500 nM |
Accutase | StemCell Technologies | 7920 | |
Advanced DMEM/F12 | Invitrogen | 12634-028 | |
B27 supplement | Invitrogen | 17504-044 | 1X |
Chromium Next GEM Single Cell 3’ GEM, Library & Gel Bead Kit v3.1 | 10x Genomics | PN-1000128 | |
Collagen IV | Sigma-Aldrich | C5533-5MG | 33 µg/mL |
Corning Cell Recovery Solution | VWR | 354253 | |
DPBS (Mg2-, Ca2-) | Invitrogen | 14190-136 | 1X |
GlutaMAX-I | Invitrogen | 35050-061 | 2 mM |
HEPES 1M | Invitrogen | 15630-080 | 10 mM |
L-WRN conditioned media | ATCC | CRL-3276 | |
Matrigel, GFR, phenol free | Corning | 356231 | |
mouse recombinant EGF | Invitrogen | PMG8043 | 50 ng/mL |
N2 supplement | Invitrogen | 17502-048 | 1X |
N-Acetylcysteine | Sigma-Aldrich | A9165-5G | 500 µM |
Nicotinamide | Sigma-Aldrich | N0636 | 10 mM |
SB202190 | Sigma-Aldrich | S7067 | 10 µM |
Transwell | Corning | 3413 | |
Y27632 | Stem Cell Technologies | 72308 | 10 µM |
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