Zum Anzeigen dieser Inhalte ist ein JoVE-Abonnement erforderlich. Melden Sie sich an oder starten Sie Ihre kostenlose Testversion.
Dieses Protokoll beschreibt einen Zwei-Photonen-Laserablationsansatz, der an Zebrafischlarven durchgeführt wurde und als Modell dient, um die Knochenregeneration und die Auswirkungen der Immunantwort auf die Ablation zu untersuchen.
Zebrafische (Danio rerio) haben eine hervorragende Fähigkeit, verschiedene Organe und Gliedmaßen zu regenerieren. Die Knochenregeneration im Zebrafisch wurde mit verschiedenen Methoden wie Flossenamputation, Schuppenrupfen, Schädeltrepanation und mikroskopischen Ansätzen untersucht. Unter Verwendung eines konfokalen Laserscanning-Aufbaus, der mit einem Zwei-Photonen-Laser ausgestattet ist, wurde eine Laserablationsmethode als Läsionsparadigma entwickelt, um knochenbildende Zellen (Osteoblasten) im sich entwickelnden Operkel von Zebrafischlarven abzutragen. Das hier beschriebene Verfahren ermöglicht die präzise Ablation von Zellen, da Fläche, Form und Tiefe fein eingestellt werden können. Darüber hinaus ermöglicht diese Methode die Bildgebung des Bereichs vor und kurz nach der Ablation, so dass kurzfristige Auswirkungen der Verletzung analysiert werden können. In diesem Versuchsaufbau wurde die Immunantwort nach Ablation von Osteoblasten im verletzten Bereich untersucht. Nach der Ablation wurde eine Zunahme der Rekrutierung von Makrophagen beobachtet, was auf die Relevanz ihres Vorhandenseins während der Knochenregeneration hinweist.
Zebrafische regenerieren verschiedene Organe wie Netzhaut, Gehirn, Herz und Bauchspeicheldrüse1. Darüber hinaus regenerieren Zebrafische Skelettelemente, weshalb sie zur Untersuchung der Regeneration von Flossen, Schuppen und Schädelkappen verwendet wurden2. Zur Untersuchung der Gewebe- und Knochenregeneration wurden verschiedene experimentelle Paradigmen verwendet, wie z. B. Flossenresektion (Amputation), Flossenfraktur, Schädeltrepanation 3,4, Kryoverletzung 5,6 oder genetische
Das Prüfprotokoll wurde von der Landesdirektion Sachsen genehmigt, Zulassungsnummern 25-5131/564/2, DD25-5131/450/4, 25-5131/496/56, DD25.1-5131/354/87. Die verwendeten Zebrafischstämme wurden gemäß den nationalen Rechtsvorschriften und unter standardisierten Bedingungen, wie bereits beschrieben, gehalten27,28. Die Einzelheiten zu allen Reagenzien und der Ausrüstung, die in der Studie verwendet wurden, sind in der Materialtabelle aufgeführt.
1. Vorbereitung von Materialien und Lösungen
Die Laserablation wurde wie im obigen Protokoll angegeben durchgeführt. Das GFP-Signal der Osteoblasten im ablierten Bereich verschwand sofort nach der Ablation. Um die Reaktion der Osteoblastenablation in Bezug auf die Immunantwort zu untersuchen, wurde das Vorhandensein von Makrophagen in 6 dpf Larven vor und bei 6 hpl abgebildet. Vor der Ablation wurden nur sehr wenige Makrophagen im Operkelbereich10 beobachtet (Abbildung 2). Bei .......
Die Laserablation wird in verschiedenen Disziplinen der biologischen Forschung eingesetzt. Insbesondere war es nützlich als Methode zur Untersuchung der Geweberegeneration 10,11,12. Zum Beispiel wurden kürzlich die Rekrutierungs- und Phänotypveränderungen von angeborenen Immunzellen im Laufe der Zeit mit UV-Laser- oder Zwei-Photonen-Laserablationsassays analysiert, zusammen mit der Gewinnung.......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Diese Arbeit wurde gefördert durch die Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) Transregio 67 (Projekt 387653785), das DFG SPP 2084 μBone (Projekt KN 1102/2-1) bis FK. Diese Arbeit wurde von der Light Microscopy Facility (DFG-Projekt 413875620), einer Core Facility der CMCB Technology Platform der TU Dresden, unterstützt. Die Arbeit an der TU Dresden wurde aus steuerlichen Mitteln auf der Grundlage des vom Sächsischen Landtag beschlossenen Haushaltsplans mitfinanziert.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Calcium chloride dihydrate, CaCl2·H2O | Carl Roth | 5239.1 | |
Cell Culture Dish, PS, 100/20 mm | Greiner Bio-one | 664160 | |
Dumont #55 Foceps | FST | 11295-51 | Tip shape straight, 11 cm, 0.05 x 0.02 mm |
Falcon 6-well plate | Corning | 353502 | |
Glass-bottom microwell dish | MatTek | P35G-1.5-14-C | 35 mm Dish, No. 1.5 Coverslip, 14 mm Glass Diameter, Uncoated |
Insight X3 multiphoton laser | Spectra-Physics | ||
Leica Application Suite | LAS X, Leica Microsystems | ||
Low melting agarose | Biozyme | 840101 | Biozym Plaque Agarose |
Magnesium sulfate heptahydrate, MgSO4·7H2O | Sigma-Aldrich | M5921 | |
Mating cages | many varieties, e.g. Tecniplast | ||
Methyleneblue | Carl Roth | A514.1 | |
MS-222 | SIGMA Aldrich | A5040 | |
Potassium Chloride, KCl | PanReac AppliChem | 131494 | |
Sodium chloride, NaCl | Carl Roth | 3957.1 | |
SP8 FALCON | Leica Microsystems | Equipped with a Insight X3 multiphoton laser and Leica Application Suite software | |
Stainless Steel Dissect Needle | Bochem | 12010 | 140 mm |
Stereo Microscope System SZX16 | Olympus | Equipped with a LED illumination base SZX2-ILLTQ | |
Thermostatic Cabinets TS - WTW | xylem | TS 608/2-i | For incubation (embryo) |
Transfer pipette, 3.5 mL | SARSTEDT | 861171 | 155 x 15 mm, LD-PE, transparent |
Zeiss SteREO Discovery.V12 version 4.7.1.0. | Zeiss | Equipped with Axiocam MRm camera and AxioVision sofware |
Genehmigung beantragen, um den Text oder die Abbildungen dieses JoVE-Artikels zu verwenden
Genehmigung beantragenThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Alle Rechte vorbehalten