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Hier wird ein Protokoll für die Verabreichung von Chitosan/dsRNA-Nanopartikeln in Seidenraupenlarven der Bombyx mori vorgestellt, um Gen-Silencing durch Verschlucken zu induzieren.
Die Seidenraupe, Bombyx mori, ist ein wichtiges Wirtschaftsinsekt mit einer jahrtausendealten Geschichte in China. Mittlerweile ist die Seidenraupe das Modellinsekt der Schmetterlinge mit einer guten Ansammlung von Grundlagenforschung. Es ist auch das erste Insekt bei Schmetterlingen, dessen vollständiges Genom sequenziert und zusammengesetzt wurde, was eine solide Grundlage für die Erforschung der Genfunktion bietet. Obwohl RNA-Interferenz (RNAi) in der reversen Genfunktionsforschung weit verbreitet ist, ist sie bei Seidenraupen und anderen Lepidopterenarten refraktär. Frühere erfolgreiche RNAi-bezogene Forschungen zur Verabreichung von doppelsträngiger RNA (dsRNA) wurden ausschließlich durch Injektion durchgeführt. Die Verabreichung von dsRNA durch Fütterung wird nie berichtet. In diesem Artikel beschreiben wir Schritt für Schritt Verfahren zur Herstellung der Chitosan/dsRNA-Nanopartikel, die durch Verschlucken an die Seidenraupenlarven verfüttert werden. Das Protokoll umfasst (i) die Auswahl des geeigneten Stadiums der Seidenraupenlarven, (ii) die Synthese von dsRNA, (iii) die Herstellung der Chitosan/dsRNA-Nanopartikel und (iv) die Fütterung der Seidenraupenlarven mit Chitosan/dsRNA-Nanopartikeln. Repräsentative Ergebnisse, einschließlich der Bestätigung des Gentranskripts und der Beobachtung des Phänotyps, werden vorgestellt. Die dsRNA-Fütterung ist eine einfache Technik für RNAi in Seidenraupenlarven. Da Seidenraupenlarven leicht zu züchten und groß genug sind, um sie zu betreiben, bietet sie ein gutes Modell zum Nachweis von RNAi von Larven bei Insekten. Darüber hinaus regt die Einfachheit dieser Technik die Beteiligung der Schüler an der Forschung an, was Seidenraupenlarven zu einem idealen genetischen System für den Einsatz im Klassenzimmer macht.
Die Seidenraupe, Bombyx mori, ist ein Insekt, das vor mehr als 5000 Jahren in China domestiziert wurde. Aufgrund ihrer Fähigkeit, Seide zu produzieren, ist die Seidenraupe ein wichtiges Nutzinsekt in der chinesischen Landwirtschaft und Seidenzucht. Die Seidenraupe steht nach der Fruchtfliege als Modellinsekt an zweiter Stelle. Als Modellinsekt bei den Schmetterlingen ist die Seidenraupe leicht zu züchten, mit einer großen Körpergröße und vielen Mutanten. Inzwischen ist die Seidenraupe das erste Lepidoptera-Insekt, dessen vollständiges Genom sequenziert wurde1. Viele Datenbanken mit Informationen für Ge....
1. Seidenraupenarten und Aufzucht
2. Auswahl der Seidenraupenlarven
Um die RNAi-Effizienz zu bewerten, wurde ein Immungen zur Analyse ausgewählt, das auf BmToll9-2 abzielt. Das BmToll9-2-Gen ist im Labor gut charakterisiert, und das Gen-Silencing durch dsRNA-Injektion führt zu leichteren und kleineren Larven in unserer jüngsten Veröffentlichung20. Um die RNAi-Wirksamkeit durch Aufnahme durch Chitosan/dsRNA-Nanopartikel zu bestätigen, wurden Chitosan-Nanopartikel als Kontrolle verwendet und gleichzeitig nackt.......
Ein geeignetes Stadium ist wichtig für die Beobachtung des RNAi-Phänotyps, abhängig von den Zielgenen. Unsere vorläufigen Ergebnisse zeigten, dass Toll9-2 am Wachstum der Seidenraupe beteiligt ist. Die Größe und das Gewicht der Seidenraupenlarven nehmen im 5. Stadium21 rapide zu. Daher werden die Larven des 5. Stadiums als Bühne für das Fütterungsexperiment mit Chitosan/dsRNA-Nanopartikeln ausgewählt. Es ist auch möglich, .......
Die Autoren haben nichts offenzulegen.
Diese Studie wurde von der National Natural Science Foundation of China (31501898), dem Science and Technology Program von Guangzhou (202102010465), dem Guangzhou Higher Education Teaching Quality and Teaching Reform Project (2022JXGG057) und dem Forschungsprojekt des Open Online Course Steering Committee der Guangdong Provincial Universities (2022ZXKC381) finanziert.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL centrifuge tube | Sangon | F601620 | for dsRNA or nanoparticles reaction |
10 μl pipette | Eppendorf | P13473G | to aspirate or resuspend liquid |
100 μl pipette | Eppendorf | Q12115G | to aspirate or resuspend liquid |
2.5 μl pipette | Eppendorf | P20777G | to aspirate or resuspend liquid |
20 μl pipette | Eppendorf | H19229E | to aspirate or resuspend liquid |
200 μl pipette | Eppendorf | H20588E | to aspirate or resuspend liquid |
6-well Clear TC-treated Multiple Well Plates | Costar | 3516 | for silkworm rearing individually |
Acetic acid | Aladdin | A116165 | to make TAE |
Agarose M | BBI Life Sciences | A610013 | for agarose gel electrophosis |
Analytical balance | Sartorius | BSA224S | to weight ingredients |
Centrifuge | Sartorius | Centrisart A-14C | to centrifuge to form dsRNA or nanoparticles |
Chitosan | Sigma-Aldrich | C3646 | to combine with dsRNA for preparation of nanoparticles |
EDTA | Sangon | A500895 | to make TAE |
Ethanol | Aladdin | E130059 | to make TAE, or for dsRNA precipitation |
Freezer | Siemens | iQ300 | to store dsRNA or nanoparticles |
GoTaq Green Master Mix | Promega | M712 | for PCR reaction |
GoTaq qPCR Master Mix | Promega | A6002 | for qRT-PCR reaction |
Isopropanol | Aladdin | I112011 | for dsRNA precipitation |
NanoDrop Microvolume UV-Vis Spectrophotometer | ThermoFisher | One | to determine the concentration of dsRNA |
ph meter | Sartorius | PB-10 | to prepare buffers |
SanPrep Column PCR Product Purification Kit | Sangon | B518141 | for PCR product purification |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | S2889 | to make 100 mM sodium acetate buffer |
Sodium sulfate | Sigma-Aldrich | 239313 | to make 100 mM sodium sulfate buffer |
T7 RiboMAX Express RNAi System | Promega | P1700 | for dsRNA synthesis |
ThermoMixer | Eppendorf | C | for dsRNA generation or nanoparticles heating |
Tris | Sangon | A501492 | to make TAE |
Vortex | IKA | Vortex 3 | to prepare chitosan/dsRNA nanoparticles |
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