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Method Article
Este video muestra y se comparan dos modelos experimentales para estudiar el desarrollo de la enfermedad de las vías respiratorias obliterante (OAD) en ratones, el modelo de trasplante heterotópico traqueal y ortotópico.
Obliterante las vías respiratorias enfermedad (OAD) es la complicación más importante después de un trasplante de pulmón que los límites de la supervivencia a largo plazo (1-7).
Para el estudio de la fisiopatología, tratamiento y prevención de los modelos de OAD, animales diferentes de trasplante de tráquea en los roedores se han desarrollado (1-7). Aquí, hemos utilizado dos modelos establecidos de transplante de tráquea, el modelo ortotópico y heterotópico y demostrar sus ventajas y limitaciones.
Para el modelo heterotópico, la tráquea del donante se envuelve en el epiplón mayor del receptor, mientras que el donante la tráquea se anastomosa por anastomosis término-a-extremo en el modelo ortotópico.
En ambos modelos, el desarrollo de lesiones histológicas similares a obliterante OAD clínicos se ha demostrado (1-7).
Este vídeo muestra cómo llevar a cabo tanto, el heterotópico, así como la técnica de trasplante ortotópico traqueal en ratones, y se compara la evolución temporal del desarrollo de AOD en ambos modelos con la histología.
PREPARACIÓN DE LOS DONANTES
BENEFICIARIO: trasplante heterotópico
BENEFICIARIO: trasplante ortotópico
Figura 1: donantes tráquea.
1A: Donantes tráquea in situ después de la preparación.
1B: tráquea extirpada de los donantes.
1C: Donantes tráquea después de la explantación.
Figura 2: Modelo heterotópico.
2A: El injerto se coloca en el centro del epiplón mayor.
2B: El injerto se fija en ambos extremos con una sutura simple.
2C: El injerto se envuelve en el epiplón mayor y se fija con una sutura simple.
Figura 3: Modelo ortotópico.
3A: El injerto se interpone entre el receptor defectos traqueal y la pared posterior se anastomosa en forma continua en funcionamiento.
3B: La pared anterior se completa con una sola sutura.
Figura 4: Histología.
4A: Reformado tráquea trasplantada heterotópico después de 28 días en la estación H + Enando (15x). Tenga en cuenta la destrucción del 100% luminal.
4B: Reformado tráquea trasplantada ortotópico después de 60 días en la tinción H + E (15x). Obliteración luminal máximo alcanzado es de aproximadamente 45%.
Modelo heterotópico trasplante traqueal | Modelo ortotópico de trasplante traqueal | |
Ventajas | + Fácil para llevar a cabo + Obliteración luminal con oclusión completa las vías respiratorias después de 28 días + No hay afecto físico de los animales por el OAD | + Física ventilación del injerto + Administración de fármacos inhalados posible + Fuertes reacciones inmunológicas como la producción de anticuerpos IgM aloreactivas + Torácica medio fisiológico + Traqueal-traqueal anastomosis imita a la práctica clínica |
Desventajas | - No había ventilación de la tráquea trasplantada - No hay evaluación de patógenos inhalados posible - La inhibición de la depuración mucociliar y retención de secreciones - Microambiente peritoneal en lugar de medio torácica | - Formación necesaria quirúrgica - Obliteración luminal con aplicación de la oclusión luminal. 45% después de 60 días - Los animales pueden desarrollar síntomas de la OAD |
Tabla 1: Ventajas y desventajas del trasplante heterotópico traqueal y ortotópico.
Los ratones están disponibles en diferentes transgeneic y el modelo de octavos de final, y por lo tanto, adecuado para estudiar las cuestiones relacionadas con la mecánica OAD (4).
Ambos modelos de trasplante de tráquea se muestra en este video se puede utilizar como modelos confiables para estudiar el desarrollo OAD.
Sin embargo, cada modelo muestra las ventajas y limitaciones.
El trasplante traqueal heterotópico es fácil de realizar y no requiere de entr...
Sonja Schrepfer ha recibido una beca de investigación de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/3-1).]
Todos los animales recibieron cuidados humanos de conformidad con los Principios de Cuidado de Animales de laboratorio, los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices y normas establecidas por la Sociedad Nacional de Investigaciones Médicas y la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio publicado por la Institutos Nacionales de Salud (National Institutes of Health publicación 85-23, revisado 1985).
Todos los animales se obtuvieron de Charles River Laboratories (Sulzfeld, Alemania) y se mantuvieron en las instalaciones de cuidado de los animales del Hospital Universitario de Eppendorf en Hamburgo. Los animales recibieron comida estándar y agua ad libitum.
Los autores agradecen a Christiane Pahrmann (Lab Manager).
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