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Method Article
Este protocolo describe el enfoque técnico para aislar subpoblaciones de células estromales adipogénicas y fibroinflamatorias de depósitos murinos de tejido adiposo blanco intraabdominal (WAT) mediante clasificación celular activada por fluorescencia o separación inmunomagnética de perlas.
La fracción estromal-vascular (FSV) del tejido adiposo blanco (WAT) es notablemente heterogénea y consta de numerosos tipos de células que contribuyen funcionalmente a la expansión y remodelación de la WAT en la edad adulta. Un obstáculo tremendo para el estudio de las implicaciones de esta heterogeneidad celular es la incapacidad de aislar fácilmente subpoblaciones celulares funcionalmente distintas de WAT SVF para análisis in vitro e in vivo. La tecnología de secuenciación de células individuales ha identificado recientemente subpoblaciones de células perivasculares PDGFRβ+ fibroinflamatorias y adipogénicas funcionalmente distintas en depósitos de WAT intraabdominales de ratones adultos. Los progenitores fibroinflamatorios (denominados "FIP") son células productoras de colágeno no adipogénicas que pueden ejercer un fenotipo proinflamatorio. Las células precursoras de adipocitos (APC) PDGFRβ+ son altamente adipogénicas tanto in vitro como in vivo tras el trasplante de células. Aquí, describimos múltiples métodos para el aislamiento de estas subpoblaciones de células estromales de depósitos de WAT intraabdominales murinos. Las FIP y las APC pueden aislarse mediante clasificación celular activada por fluorescencia (FACS) o aprovechando la tecnología de perlas inmunomagnéticas basadas en anticuerpos biotinilados. Las células aisladas se pueden utilizar para el análisis molecular y funcional. El estudio de las propiedades funcionales de la subpoblación de células estromales de forma aislada ampliará nuestro conocimiento actual de la remodelación del tejido adiposo en condiciones fisiológicas o patológicas a nivel celular.
El tejido adiposo blanco (WAT) representa el principal sitio para el almacenamiento de energía en los mamíferos. Dentro de este tejido, los adipocitos, o "células grasas", almacenan el exceso de calorías en forma de triglicéridos, empaquetados en grandes gotas lipídicas uniloculares. Además, los adipocitos segregan multitud de factores que regulan diversos aspectos de la homeostasis energética 1,2,3. Los adipocitos constituyen la mayor parte del volumen de WAT; sin embargo, los adipocitos solo representan menos del 50% del total de células encontradas en WAT....
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Todos los protocolos y procedimientos para animales han sido aprobados por el Comité Institucional de Uso y Cuidado de Animales del Centro Médico Southwestern de la Universidad de Texas.
1. Aislamiento de la fracción vascular estromal (FSV) a partir de tejido adiposo blanco gonadal
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Este protocolo describe dos estrategias que permiten el aislamiento de distintas poblaciones de células estromales de depósitos de WAT intraabdominales de ratones adultos. Las APC y FIP pueden aislarse mediante FACS (Figura 1) o separación inmunomagnética de perlas con anticuerpos biotinilados (Figura 2). Ambos enfoques utilizan reactivos y anticuerpos que están disponibles comercialmente. La separación inmunomagnética de perlas conduce a la separación d.......
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La cepa de ratones C57BL/6 es la cepa de ratón más utilizada en los estudios de obesidad inducida por la dieta. Los ratones C57BL/6 aumentan rápidamente de peso cuando se les administra una dieta alta en grasas (HFD) y desarrollan algunas de las características prominentes del síndrome metabólico asociado con la obesidad (por ejemplo, resistencia a la insulina e hiperlipidemia). En particular, la expansión de WAT que ocurre en asociación con la alimentación con dieta alta en grasas (HFD) ocurre de manera especí.......
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T.A.P. es empleado y accionista de Novo Nordisk A/S
Los autores agradecen a Lisa Hansen y Kirsten Vestergaard por su excelente asistencia técnica, y a P. Scherer, N. Joffin y C. Crewe por la lectura crítica del manuscrito. Los autores agradecen al UTSW Flow Cytometry Core por su excelente orientación y asistencia en el desarrollo de los protocolos descritos aquí. R.K.G. es compatible con NIH NIDDK R01 DK104789, NIDDK RC2 DK118620 y NIDDK R01 DK119163. J.P. está patrocinado por un premio predoctoral del Fondo de Innovación de Dinamarca.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Mechanical Tissue Preparation and SVF Isolation | |||
40 and 100 µm cell strainers | Fisher Scientific | 352340/352360 | |
1X Phosphate buffered saline (PBS) | Fisher Scientific | 21040CV | |
5ml polypropylene tubes | Fisher Scientific | 352053 | |
Digestion Buffer (for 10mL) | |||
10 ml HBSS | Sigma | H8264 | |
10 mg Collagenase D (1 mg/ml final cc.) | Roche | 11088882001 | |
0.15 g BSA (1.5 % final cc.) | Fisher Scientific | BP1605-100 | |
Immunomagnetic separation of APCs and non-APCs | |||
5X MojoSort Buffer (MS buffer) | BioLegend | 480017 | |
5 ml MojoSort Magnet (MS magnet) | BioLegend | 480019 | |
100 µL MojoSort Streptavidin Nanobeads | BioLegend | 480015 | |
Purity Check and FACS | |||
10X Red Blood Cell Lysis Buffer | eBioscience | 00-4300-54 | |
Fc block (Mouse CD16/CD32) | eBioscience | 553141 | |
Antibodies | |||
Biotin CD45 | BioLegend | 103103 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: 30-F11 |
Biotin CD31 | BioLegend | 102503 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: MEC13.3 |
Biotin CD9 | BioLegend | 124803 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: MZ3 |
Biotin LY6C | BioLegend | 128003 | Concentration: ≤ 0.25 µg per 10^6 cells Species: Mouse Clone: HK1.4 |
CD31-PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 102419 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: 390 |
CD45-PerCP/Cy5.5 | BioLegend | 103131 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: 30-F11 |
CD140b PDGFRβ-PE | BioLegend | 136006 | Concentration: Dilution 1:50 Species: Mouse Clone: APB5 |
LY6C-APC | BioLegend | 128016 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: HK1.4 |
CD9-FITC | BioLegend | 124808 | Concentration: Dilution 1:400 Species: Mouse Clone: MZ3 |
Cell Culture and Differentiation | |||
Gonadal APC Culture media (for 500mL) | |||
288 mL DMEM with 1 g/L glucose | Corning | 10-014-CV | |
192 mL MCDB201 | Sigma | M6770 | |
10 mL Fetal bovine serum (FBS)** lot#14E024 | Sigma | 12303C | |
5 mL 100% ITS premix | BD Bioscience | 354352 | |
5 mL 10 mM L-ascorbic acid-2-2phosphate | Sigma | A8960-5G | |
50 µL 100 g/ml FGF-basic | R&D systems | 3139-FB-025/CF | |
5 mL Pen/Strep | Corning | 30-001-CI | |
500 µL Gentamycin | Gibco | 15750-060 | |
**NOTE: The adipogenic capacity of primary APCs can vary from lot to lot of commercial FBS. Multiple lots/sources of FBS should be tested. |
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