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Este trabajo describe la preparación de extracto celular de Escherichia coli (E. coli) seguido de reacciones de síntesis de proteínas libres de células (CFPS) en menos de 24 horas. La explicación del protocolo de autoinducción libre de células (CFAI) detalla las mejoras realizadas para reducir la supervisión del investigador y aumentar las cantidades de extracto celular obtenido.
La síntesis de proteínas libres de células (CFPS) ha crecido como una plataforma biotecnológica que captura maquinaria de transcripción y traducción in vitro. Numerosos desarrollos han hecho que la plataforma CFPS sea más accesible para los nuevos usuarios y han ampliado la gama de aplicaciones. Para los sistemas CFPS basados en lisado, se pueden generar extractos celulares a partir de una variedad de organismos, aprovechando la bioquímica única de ese huésped para aumentar la síntesis de proteínas. En los últimos 20 años, Escherichia coli (E. coli) se ha convertido en uno de los organismos más utilizados para apoyar CFPS debido a su asequibilidad y versatilidad. A pesar de los numerosos avances clave, el flujo de trabajo para la preparación de extractos de células de E. coli ha seguido siendo un cuello de botella clave para que los nuevos usuarios implementen CFPS para sus aplicaciones. El flujo de trabajo de preparación de extractos requiere mucho tiempo y requiere experiencia técnica para lograr resultados reproducibles. Para superar estas barreras, anteriormente informamos sobre el desarrollo de un flujo de trabajo de autoinducción sin celdas (CFAI) las 24 horas que reduce la entrada del usuario y la experiencia técnica requerida. El flujo de trabajo de CFAI minimiza la mano de obra y la habilidad técnica requerida para generar extractos de células, al tiempo que aumenta las cantidades totales de extractos de células obtenidas. Aquí describimos ese flujo de trabajo paso a paso para mejorar el acceso y apoyar la amplia implementación de CFPS basado en E. coli .
El uso de la síntesis de proteínas libres de células (PPCS) para aplicaciones biotecnológicas ha crecido sustancialmente en los últimos años 1,2,3. Este desarrollo puede atribuirse en parte al aumento de los esfuerzos para comprender los procesos que ocurren en CFPS y el papel de cada componente 4,5. Además, la reducción de los costos atribuidos a las configuraciones optimizadas y las fuentes de energía alternativas han hecho que la tecnología sin celdas sea más fácil de implementar para los nuevos usuarios
1. Crecimiento de los medios
Al preparar los medios CFAI, la glucosa se intercambió por un aumento de lactosa y glicerol como principal sustrato energético en los medios. Además, también se aumentó la capacidad de almacenamiento en búfer de los medios CFAI. Estos componentes específicos se dan en la Tabla 1.
Las células se cultivaron a un OD600 de 10 y al estándar 2.5 en medios CFAI para mostrar consistencia con la calidad del extracto a pesar de las diferentes cantidades de extracto. .......
La supervisión del investigador es tradicionalmente necesaria para dos acciones clave durante el crecimiento celular: la inducción de RNAP T7 y la recolección de células en un OD600 específico. CFAI evita ambos requisitos para disminuir el tiempo del investigador y la capacitación técnica requerida para preparar extractos celulares de alta calidad. La autoinducción de T7 RNAP se logra reemplazando la glucosa con lactosa como azúcar primaria en el medio, obviando la necesidad previa de monitorear activ.......
Los autores declaran que no tienen conflictos de intereses financieros en competencia.
Jennifer VanderKelen y Andrea Laubscher por su apoyo técnico. Los autores también desean agradecer a Nicole Gregorio, Max Levine, Alissa Mullin, Byungcheol So, August Brookwell, Elizabeth (Lizzy) Vojvoda, Logan Burrington y Jillian Kasman por sus útiles discusiones. Los autores también reconocen el apoyo financiero del Fondo Bill y Linda Frost, la Subvención de Dotación de Investigación Aplicada de Chevron Biotechnology del Centro de Aplicaciones en Biotecnología, Cal Poly Research, Scholarly y la Fundación Nacional de Ciencias (NSF-1708919).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL Microfuge Tubes | Phenix | MPC-425Q | |
1L Centrifuge Tube | Beckman Coulter | A99028 | |
Avanti J-E Centrifuge | Beckman Coulter | 369001 | |
CoA | Sigma-Aldrich | C3144-25MG | |
Cytation 5 Cell Imaging Multi-Mode Reader | Biotek | BTCYT5F | |
D-Glucose | Fisher | D16-3 | |
D-Lactose | Alfa Aesar | J66376 | |
DTT | ThermoFisher | 15508013 | |
Folinic Acid | Sigma-Aldrich | F7878-100MG | |
Glycerol | Fisher | BP229-1 | |
Glycine | Sigma-Aldrich | G7126-100G | |
HEPES | ThermoFisher | 11344041 | |
IPTG | Sigma-Aldrich | I6758-1G | |
JLA-8.1000 Rotor | Beckman Coulter | 366754 | |
K(Glu) | Sigma-Aldrich | G1501-500G | |
K(OAc) | Sigma-Aldrich | P1190-1KG | |
KOH | Sigma-Aldrich | P5958-500G | |
L-Alanine | Sigma-Aldrich | A7627-100G | |
L-Arginine | Sigma-Aldrich | A8094-25G | |
L-Asparagine | Sigma-Aldrich | A0884-25G | |
L-Aspartic Acid | Sigma-Aldrich | A7219-100G | |
L-Cysteine | Sigma-Aldrich | C7352-25G | |
L-Glutamic Acid | Sigma-Aldrich | G1501-500G | |
L-Glutamine | Sigma-Aldrich | G3126-250G | |
L-Histadine | Sigma-Aldrich | H8000-25G | |
L-Isoleucine | Sigma-Aldrich | I2752-25G | |
L-Leucine | Sigma-Aldrich | L8000-25G | |
L-Lysine | Sigma-Aldrich | L5501-25G | |
L-Methionine | Sigma-Aldrich | M9625-25G | |
L-Phenylalanine | Sigma-Aldrich | P2126-100G | |
L-Proline | Sigma-Aldrich | P0380-100G | |
L-Serine | Sigma-Aldrich | S4500-100G | |
L-Threonine | Sigma-Aldrich | T8625-25G | |
L-Tryptophan | Sigma-Aldrich | T0254-25G | |
L-Tyrosine | Sigma-Aldrich | T3754-100G | |
Luria Broth | ThermoFisher | 12795027 | |
L-Valine | Sigma-Aldrich | V0500-25G | |
Mg(Glu)2 | Sigma-Aldrich | 49605-250G | |
Mg(OAc)2 | Sigma-Aldrich | M5661-250G | |
Microfuge 20 | Beckman Coulter | B30134 | |
Molecular Grade Water | Sigma-Aldrich | 7732-18-5 | |
NaCl | Alfa Aesar | A12313 | |
NAD | Sigma-Aldrich | N8535-15VL | |
New Brunswick Innova 42/42R Incubator | Eppendorf | M1335-0000 | |
NH4(Glu) | Sigma-Aldrich | 09689-250G | |
NTPs | ThermoFisher | R0481 | |
Oxalic Acid | Sigma-Aldrich | P0963-100G | |
PEP | Sigma-Aldrich | 860077-250MG | |
Potassium Phosphate Dibasic | Acros, Organics | A0382124 | |
Potassium Phosphate Monobasic | Acros, Organics | A0379904 | |
PureLink HiPure Plasmid Prep Kit | ThermoFisher | K210007 | |
Putrescine | Sigma-Aldrich | D13208-25G | |
Spermidine | Sigma-Aldrich | S0266-5G | |
Tris(OAc) | Sigma-Aldrich | T6066-500G | |
tRNA | Sigma-Aldrich | 10109541001 | |
Tryptone | Fisher Bioreagents | 73049-73-7 | |
Tunair 2.5L Baffled Shake Flask | Sigma-Aldrich | Z710822 | |
Ultrasonic Processor | QSonica | Q125-230V/50HZ | |
Yeast Extract | Fisher Bioreagents | 1/2/8013 |
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