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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

El presente protocolo describe un método para extraer vesículas extracelulares de la sangre periférica y tejidos sólidos con el posterior perfil de antígenos de superficie y cargas de proteínas.

Resumen

Las vesículas extracelulares (EV) circulantes y residentes en tejidos representan objetivos prometedores como nuevos biomarcadores teranósticos, y emergen como actores importantes en el mantenimiento de la homeostasis del organismo y la progresión de un amplio espectro de enfermedades. Si bien la investigación actual se centra en la caracterización de exosomas endógenos con origen endosomal, las microvesículas que brotan de la membrana plasmática han ganado cada vez más atención en la salud y la enfermedad, que se caracterizan por una gran cantidad de moléculas de superficie que recapitulan la firma de membrana de las células madre. Aquí, se presenta un procedimiento reproducible basado en la centrifugación diferencial para extraer y caracterizar EVs del plasma y tejidos sólidos, como el hueso. El protocolo describe además el perfil posterior de antígenos de superficie y cargas de proteínas de EV, que por lo tanto son trazables para sus derivaciones e identificados con componentes relacionados con la función potencial. Este método será útil para el análisis correlativo, funcional y mecanicista de EV en estudios biológicos, fisiológicos y patológicos.

Introducción

Se han propuesto vesículas extracelulares (EV) para definir estructuras extracelulares liberadas por la bicapa lipídica liberada por células1, que desempeñan un papel importante en diversos eventos fisiológicos y patológicos2. Los EV liberados por las células sanas se pueden dividir ampliamente en dos categorías principales, a saber, exosomas (o EV pequeños) formados a través de una vía de tráfico endocítico intracelular3 y microvesículas (o EV grandes) desarrolladas por la gemación externa de la membrana plasmática de la célula4. Mientras que muchos estudios se centran en ....

Protocolo

Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las Directrices del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Cuarta Universidad Médica Militar y las directrices de ARRIVE. Para el presente estudio, se utilizaron ratones C57Bl/6 de 8 semanas de edad (sin preferencia por hembras o machos). Los pasos involucrados en el aislamiento de EV de plasma y tejido se ilustran en la Figura 1. El plasma se toma como un representante para describir el procedimiento de aislamiento EV de los fluidos corporales. El hueso maxilar se toma como representante para explicar el procedimiento de aislamiento EV de los tejidos sólidos.

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Resultados

De acuerdo con el flujo de trabajo experimental, los EV se pueden extraer de la sangre periférica y los tejidos sólidos (Figura 1). El hueso maxilar de un ratón de 8 semanas es de aproximadamente 0,1 ± 0,05 g, y se pueden recolectar aproximadamente 300 μL de plasma del ratón. Siguiendo los pasos del protocolo, se pueden recolectar 0,3 mg y 3 μg de EV, respectivamente. Según lo analizado por TEM y NTA, las características morfológicas típicas de los EV son vesículas de membrana re.......

Discusión

Al estudiar las características, el destino y la función de los vehículos eléctricos, es crucial aislar los vehículos eléctricos con alto rendimiento y baja contaminación. Existen varios métodos para extraer EVs, como la centrifugación por gradiente de densidad (DGC), la cromatografía de exclusión de tamaño (SEC) y los ensayos de inmunocaptura 4,20. Aquí, se utilizó uno de los métodos más utilizados, la centrifugación diferencial; las ventajas de.......

Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Este trabajo fue apoyado por subvenciones de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (32000974, 81870796, 82170988 y 81930025) y la Fundación de Ciencias Postdoctorales de China (2019M663986 y BX20190380). Estamos agradecidos por la asistencia del Centro Nacional de Demostración de Enseñanza Experimental para Medicina Básica (AMFU).

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Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
4% paraformaldehyde Biosharp143174Transmission electron microscope
Alexa fluor 488 anti-goat secondary antibodyYeason34306ES60Flow cytometry
Alexa fluor 488 anti-rabbit secondary antibodyInvitrogenA11008Flow cytometry
Anti-CD18 antibodyAbcamab131044Flow cytometry
Anti-CD81 antibodyAbcamab109201Western blot
anti-CD9 antibodyHuabioET1601-9Western blot
Anti-Mitofilin antibodyAbcamab110329Western blot
APOA1 Rabbit pAbAbcloneA14211Western blot
BCA protein assay kitTIANGENPA115Western blot
BLUeye Prestained Protein LadderSigma-Aldrich94964-500ULWestern blot
Bovine serum albuminMP Biomedical218072801Western blot
Caveolin-1 antibodySanta Cruz Biotechnologysc-53564Western blot
CellMask Orange plasma membrane stainInvitrogenC10045Flow cytometry
ChemiluminescenceAmersham BiosciencesN/AWestern blot
Curved operating scissorJZ Surgical InstrumentJ21040EV isolation
Electronic balanceZhi KeZK-DSTEV isolation
Epoch spectrophotometerBioTekN/AWestern blot
Eppendorf tubesEppendorf3810XEV isolation
Flotillin-1 antibodyPTM BIOPTM-5369Western blot
Gel imaging systemTanon4600Western blot
Golgin84Novusnbp1-83352Western blot
Grids - Formvar/Carbon Coated - Copper 200 meshPolysciences24915Transmission electron microscope
Heparin SolutionStemCell 7980EV isolation
Liberase Research GradeSigma-Aldrich5401127001EV isolation
Microscopic tweezerJZ Surgical InstrumentJD1020EV isolation
NovoCyte flow cytometerACEAN/AFlow cytometry
Omni-PAGE Hepes-Tris Gels Hepes 4~20%, 10 wellsEpizymeLK206Western blot
OSCAR(D-19) antibodySanta Cruz BiotechnologySC-34235Flow cytometry
PBS (2x)ZHHCPW013Western blot
Pentobarbital sodiumSigma-Aldrich57-33-0Anesthetization
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L)Jacson115-035-003Western blot
Peroxidase AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)Jacson111-035-003Western blot
Phosphotungstic acidRHAWN12501-23-4Transmission electron microscope
PKM2(d78a4) xp rabbit  mab Cell Signaling4053tWestern blot
Polyethylene (PE) filmXiang yi200150055Transmission electron microscope
Polyvinylidene fluoride membranes Roche3010040001Western blot
Protease inhibitorsRoche4693132001Western blot
Recombinant anti-PGD antibodyAbcamab129199Western blot
RIPA lysis bufferBeyotimeP0013Western blot
SDS-PAGE loading buffer (5x)CwbioCW0027SWestern blot
Size beadsInvitrogenF13839Flow cytometry
Tabletop High-Speed Micro CentrifugesHitachiCT15EEV isolation
Transmission electron microscopeHITACHIH-7650Transmission electron microscope
Tween-20MP Biomedicals19472Western blot
Vortex Mixer GenieScientific IndustriesSI0425EV isolation
ZetaView BASIC NTA - Nanoparticle Tracking Video Microscope PMX-120Particle MetrixN/ANanoparticle tracking analysis
α-Actinin-4 Rabbit mAbAbcloneA3379Western blot
β-actinCwbioCW0096MWestern blot

Referencias

  1. Abels, E. R., Breakefield, X. O. Introduction to extracellular vesicles: biogenesis, RNA cargo selection, content, release, and uptake. Cellular and Molecular Neurobiology. 36 (3), 301-312 (2016).
  2. Mathieu, M., Martin-Jaular, L., Lavieu, G., Théry, C.

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