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En este artículo

  • Resumen
  • Resumen
  • Introducción
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discusión
  • Divulgaciones
  • Agradecimientos
  • Materiales
  • Referencias
  • Reimpresiones y Permisos

Resumen

Describimos un protocolo para evaluar las curvas dosis-respuesta para la estimulación extracraneal en términos de medidas del campo eléctrico cerebral y un biomarcador relevante: flujo sanguíneo cerebral. Dado que este protocolo implica la colocación de electrodos invasivos en el cerebro, se necesita anestesia general, y se prefiere la respiración espontánea en lugar de la respiración controlada.

Resumen

La detección de las respuestas del flujo sanguíneo cerebral (CBF) a diversas formas de activación neuronal es fundamental para comprender la función cerebral dinámica y las variaciones en el suministro de sustrato al cerebro. En este artículo se describe un protocolo para medir las respuestas de CBF a la estimulación transcraneal de corriente alterna (tACS). Las curvas dosis-respuesta se estiman tanto a partir del cambio de CBF que se produce con tACS (mA) como del campo eléctrico intracraneal (mV/mm). Estimamos el campo eléctrico intracraneal en función de las diferentes amplitudes medidas por microelectrodos de vidrio dentro de cada lado del cerebro. En este artículo, describimos la configuración experimental, que implica el uso de sondas Doppler láser (LD) bilaterales o imágenes de moteado láser (LSI) para medir el CBF; Como resultado, esta configuración requiere anestesia para la colocación y estabilidad del electrodo. Presentamos una correlación entre la respuesta de CBF y la corriente en función de la edad, mostrando una respuesta significativamente mayor a corrientes más altas (1,5 mA y 2,0 mA) en animales control jóvenes (12-14 semanas) en comparación con animales mayores (28-32 semanas) (p < 0,005 de diferencia). También demostramos una respuesta significativa de CBF a intensidades de campo eléctrico <5 mV/mm, lo cual es una consideración importante para eventuales estudios en humanos. Estas respuestas de CBF también están fuertemente influenciadas por el uso de anestesia en comparación con los animales despiertos, el control de la respiración (es decir, respiración intubada vs. espontánea), factores sistémicos (es decir, CO2) y la conducción local dentro de los vasos sanguíneos, que está mediada por pericitos y células endoteliales. Del mismo modo, las técnicas de imagen/grabación más detalladas pueden limitar el tamaño del campo de todo el cerebro a solo una pequeña región. Describimos el uso de electrodos extracraneales para la aplicación de la estimulación con tACS, incluyendo diseños de electrodos caseros y comerciales para roedores, la medición concurrente del CBF y el campo eléctrico intracraneal utilizando electrodos bilaterales de registro de CC de vidrio, y los enfoques de imagen. Actualmente estamos aplicando estas técnicas para implementar un formato de circuito cerrado para aumentar el CBF en modelos animales de enfermedad de Alzheimer y accidente cerebrovascular.

Introducción

La estimulación eléctrica transcraneal (tES; con estimulación de onda sinusoidal, tACS) es un abordaje común, externo y no invasivo para la neuromodulación cerebral 1,2. Anteriormente, planteamos la hipótesis de que a ciertas dosis, la tES (y en particular la tACS) puede aumentar el flujo sanguíneo cerebral (CBF) en las regiones cerebrales subyacentes3. Además, puede existir una relación dosis-respuesta entre la corriente externa aplicada o el campo eléctrico intracraneal y las respuestas de CBF resultantes. Sin embargo, la mayoría de los protocolos de estimulación clínica se han centra....

Protocolo

Todos los procedimientos con animales fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Duke o la autoridad local equivalente que regula la investigación con animales. Consulte la Tabla de materiales para obtener detalles sobre todos los materiales, instrumentos y equipos utilizados en este protocolo.

1. Preparación del instrumento

  1. Asegúrese de que todos los elementos e instrumentos quirúrgicos necesarios estén en su lugar (Figura 2): solución de limpieza del cuero cabelludo (almohadillas con alcohol), cinta adhesiva, fórce....

Resultados Representativos

Los resultados representativos se muestran en la Figura 4, la Figura 5 y la Figura 6. La Figura 4 muestra un ejemplo de los cuatro canales con los dos electrodos de registro intracraneal en los canales superiores y las respuestas CBF en los canales inferiores. El tACS es simétrico a lo largo del cráneo, pero en general, la respuesta del campo intracraneal es ligeramente asimétrica para las corrientes.......

Discusión

Este protocolo se centra en la medición in vivo, anestesiada, de la respuesta de CBF como biomarcador para estimar la respuesta cerebral a tES14. Los biomarcadores a largo plazo de la respuesta a la TES incluyen los efectos histológicos del tratamiento, como la prevención o los cambios en la formación de placa amiloide (es decir, con estimulación gamma a 40 Hz en varios modelos de EA)16,17,18,19,<.......

Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.

Agradecimientos

Este estudio fue financiado por las siguientes subvenciones (a D.A.T.): NIA RO1 AG074999, NIA R21AG051103, VA I21RX002223 y VA I21 BX003023.

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Materiales

NameCompanyCatalog NumberComments
Alcohol padsHenryShein112-6131
Baby mineral oilJohnson & Johnson
BD 1 mL syringeBecton DikinsonREF 305699
C3 Flat Surface ElectrodesNeuronexus
C57BI micefrom NIH colonies 
Copper skull electrodsIn house preparation
Digidata 1440, ClampexAxon Instruments
Dumont #5 forcepsFST#5
Dumont #7 forceps curvedDumontRS-5047
Eye ointmentMajorLubiFresh P.M. NDC-0904-6488-38
Flaming/Brown micropipette pullerSutter instrument Co.Model P-87
Forceps 11.5 cm slight curve  serratedRobozRS-8254
Intramedic needle 23 GBecton DikinsonREF 427565
KCl 1 MIn house preparation
Laser Doppler ProbesMoor Instruments0.46 mm laser doppler probes
Laser Speckle Imaging DeviceRWDRFLSI-ZW
Micro curette 13 cmFST10080-05
Micro Dissecting Scissors, 11.5 cmRobozRS-5914
Mouse anesthesia fixationStoelting
Neuroconn-DSNeurocareDC-Stimulator Plus
PhysioSuite MonitoringKent Scientific
Q-tipsFisherbrand22363167
Saline 0.9% NaCl solutionBaxter281322
Sensicam QEPCO Instruments
SoftwareAxon Instruments Clampex
Surgical glueCovetrus31477
Surgical tape3M TransporeT9784

Referencias

  1. Bestmann, S., Walsh, V. Transcranial electrical stimulation. Current Biology. 27 (23), R1258-R1262 (2017).
  2. Bikson, M., et al. Rigor and reproducibility in research with transcranial electrical stimulation: An N....

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