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Este artículo describe cómo se podría aplicar la microscopía de dos fotones sensible a la polarización para caracterizar la organización local dentro de las superestructuras de amiloide sin marcado-esferulitas. También describe cómo preparar y medir la muestra, ensamblar la configuración requerida y analizar los datos para obtener información sobre la organización local de las fibrillas amiloides.
En comparación con su contraparte de un fotón, la excitación de dos fotones es beneficiosa para los experimentos de bioimagen debido a su menor fototoxicidad, penetración más profunda en los tejidos, operación eficiente en sistemas densamente empaquetados y fotoselección angular reducida de fluoróforos. Por lo tanto, la introducción del análisis de polarización en la microscopía de fluorescencia de dos fotones (2PFM) proporciona una determinación más precisa de la organización molecular en una muestra en comparación con los métodos de imagen estándar basados en procesos ópticos lineales. En este trabajo, nos centramos en el 2PFM sensible a la polarización (ps-2PFM) y su aplicación en la determinación del ordenamiento molecular dentro de bioestructuras complejas-esferulitas amiloides. Las enfermedades neurodegenerativas, como el Alzheimer o el Parkinson, a menudo se diagnostican a través de la detección de agregados de proteínas amiloides formados debido a un proceso alterado de plegamiento incorrecto de proteínas. Explorar su estructura conduce a una mejor comprensión de su vía de creación y, en consecuencia, al desarrollo de métodos de diagnóstico más sensibles. En este trabajo se presenta el ps-2PFM adaptado para la determinación del ordenamiento local de las fibrillas dentro de las esferulitas de insulina bovina y agregados proteicos amiloidogénicos esféricos. Además, comprobamos que la técnica propuesta puede resolver la organización tridimensional de las fibrillas dentro de la esferulita.
En las últimas décadas, aunque ha habido un desarrollo significativo de numerosas técnicas de microscopía de fluorescencia para la bioimagen de proteínas y sus agregados1, solo unas pocas se han utilizado para resolver su ordenamiento local dentro de la muestra 2,3. Se utilizó la microscopía de fluorescencia4 para estudiar la heterogeneidad estructural intrínseca de las superestructuras amiloides-esferulitas. Además, la determinación cuantitativa del ordenamiento local dentro de bioestructuras complejas y densamente empaquetadas, como las esferulitas, podría reso....
1. Preparación de los portaobjetos del microscopio con esferulitas adultas
NOTA: Consulte la Tabla de materiales para obtener detalles sobre todos los materiales, reactivos y equipos utilizados en este protocolo. Todas las soluciones se prepararon con agua desionizada (18,2 MΩ·cm a 25 °C) obtenida del sistema de purificación de agua.
El protocolo presentado proporciona una guía paso a paso a través de la preparación de superestructuras amiloides para pruebas con ps-2PFM, la construcción del sistema microscópico y las mediciones de la muestra adecuada. Sin embargo, antes del conjunto final de mediciones, es vital alinear correctamente los APD con una referencia isotrópica, lo que debería dar como resultado la recopilación de una señal simétrica de forma e intensidad similares en ambos detectores (Figura 4C). Inc.......
La microscopía de dos fotones sensible a la polarización es una herramienta valiosa para estudiar el orden local de las fibrillas dentro de las superestructuras amiloides, requiriendo solo pequeñas modificaciones de la configuración multifotónica estándar. Dado que opera en fenómenos ópticos no lineales, se puede lograr una fotoselección angular reducida y una resolución axial mejorada en comparación con los métodos de microscopía de fluorescencia excitada por un fotón. Además, conduce a una menor dispersi.......
Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.
Este trabajo contó con el apoyo del proyecto Sonata Bis 9 (2019/34/E/ST5/00276) financiado por el Centro Nacional de Ciencias de Polonia.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Sample preparation | |||
Coverslips, 24 x 24 mm | Chemland | 04-298.202.04 | |
DPX mountant for histology | Sigma-Aldrich | 6522 | Slide mountant |
Eppendorf Safe-Lock tubes, 1.5 mL, polypropylene | Chemland | 02-63102 | |
Eppendorf ThermoMixer C | Eppendorf | Used for spherulite incubation | |
HLP 5UV Water purification system | Hydrolab | Source of dionized water used in sample preparation | |
Hydrochloric acid (≥37%, APHA ≤10), | Sigma-Aldrich | 30721-M | |
Insulin powder from the bovine pancreas (≥25 units/mg (HPLC)) | Sigma-Aldrich | I5500 | |
Methanol (HPLC grade) | Sigma-Aldrich | 270474 | |
Microscope slides with a concave, 76 x 26 x 1 mm | Chemland | 04-296.202.09 | |
Olympus BX60 | Olympus | Polarized Optical Microscope used in Figure 2 | |
PTFE thread seal tape, 12 mm x 12 mm x 0.1 mm, 60 gm2 | Chemland | VIT131097 | |
Microscope ps-2PFM setup | |||
Chameleon Ultra II | Coherent | ||
FELH0800 - Ø25.0 mm Longpass Filter | Thorlabs | ||
FESH0700 - Ø25.0 mm Shortpass Filter | Thorlabs | ||
IDQ100 photon-counting avalanche photodiodes | ID Quantique | ||
Multiphoton short-pass emission filter 720 nm | Semrock | ||
Mounted Achromatic Half-Wave Plate, 690-1200 nm | Thorlabs | ||
Nikon Plan Apo Oil Immersion 100x/1.4 NA | Nikon | ||
piezo 3D stage | Piezosystem Jena | ||
Polarizing Beamsplitter | Thorlabs | ||
S130C - Slim Photodiode Power Sensor, Si, 400 - 1100 nm, 500 mW | Thorlabs | ||
Software | |||
LabView 2018 | National Instruments | Version 18.0.1f2 | |
Matplotlib library | Version 3.3.2 | ||
NumPy library | Version 1.19.2 | ||
SciPy library | Version 1.5.2 | ||
Spyder Python 3 IDE | Version 4.1.5 |
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