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El modelo de ratón AcroSensE y los métodos de obtención de imágenes de células vivas descritos aquí proporcionan un nuevo enfoque para estudiar la dinámica del calcio en el compartimento subcelular del acrosoma, el espermatozoide, y cómo regulan los pasos intermedios que conducen a la fusión de la membrana y la exocitosis acrosómica.
La exocitosis acrosómica (EA), en la que la única vesícula exocitótica del espermatozoide se fusiona con la membrana plasmática, es un proceso complejo dependiente del calcio esencial para la fertilización. Sin embargo, nuestra comprensión de cómo la señalización del calcio regula la EA aún es incompleta. En particular, la interacción entre la dinámica del calcio intraacrosómica y los pasos intermedios que conducen a la EA no está bien definida. Aquí, describimos un método que proporciona información espacial y temporal sobre la dinámica del calcio acrosómico y su relación con la fusión de la membrana y la posterior exocitosis de la vesícula acrosómica. El método utiliza un nuevo ratón transgénico que expresa un sensor de exocitosis dirigido a acrosomas (AcroSensE). El sensor combina un indicador de calcio codificado genéticamente (GCaMP) fusionado con mCherry. Esta proteína de fusión fue diseñada específicamente para permitir la observación simultánea de la dinámica del calcio acrosómico y los eventos de fusión de membrana. La monitorización en tiempo real de la dinámica del calcio acrosómico y de los EA en espermatozoides vivos de AcroSensE se logra mediante una combinación de imágenes de alta velocidad de fotogramas y un sistema de administración de estimulantes que puede dirigirse a un solo espermatozoide. Este protocolo también proporciona varios ejemplos de métodos básicos para cuantificar y analizar los datos sin procesar. Debido a que el modelo AcroSensE está codificado genéticamente, su importancia científica puede aumentarse mediante el uso de herramientas genéticas fácilmente disponibles, como el cruzamiento con otros modelos genéticos de ratón o métodos basados en la edición de genes (CRISPR). Con esta estrategia, se pueden resolver los roles de las vías de señalización adicionales en la capacitación y fertilización de los espermatozoides. En resumen, el método descrito aquí proporciona una herramienta conveniente y efectiva para estudiar la dinámica del calcio en un compartimento subcelular específico, el acrosoma, y cómo esa dinámica regula los pasos intermedios que conducen a la fusión de la membrana y la exocitosis acrosómica.
Los espermatozoides adquieren la capacidad de fertilizar durante un proceso llamado capacitación1. Un punto final de este proceso es que los espermatozoides adquieren la capacidad de sufrir EA. Más de dos décadas de datos respaldan la presencia de un modelo complejo y de varios pasos de EA en espermatozoides de mamíferos (resumido en 2,3). Sin embargo, el estudio de la EA en espermatozoides vivos es un reto, y los métodos disponibles actualmente para monitorizar este proceso con una resolución adecuada son engorrosos y requieren múltiples pasos de preparación4, s....
Todos los procedimientos con animales se realizaron bajo las pautas y fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Cornell (#2002-0095). Para el presente estudio se utilizaron ratones AcroSensE2 de 8-10 semanas de edad. Las solicitudes de información sobre la disponibilidad de los ratones AcroSensE pueden enviarse al autor correspondiente.
1. Recolección y lavado de esperma
La Figura 2 proporciona una ilustración simplificada que muestra la secuencia de cambios de fluorescencia esperados después de la estimulación exitosa de los espermatozoides. El panel superior de la Figura 2 ilustra los cambios en la intensidad de la fluorescencia de GCaMP3, donde la señal es inicialmente tenue (las concentraciones de calcio acrosómica basales son más bajas que las de GCaMP3 KD), y tras la entrada de iones de calcio a través de l.......
Aquí, se describe un método basado en microscopía para utilizar el modelo de ratón AcroSensE recientemente generado para el monitoreo y análisis en tiempo real de una sola célula de la interacción entre la dinámica del calcio acrosómico y los pasos intermedios que conducen a la EA. Junto con los enfoques genéticos fácilmente disponibles, como el cruzamiento con otros modelos genéticos de ratón o la edición de genes, este modelo y método proporcionan un poderoso sistema para estudiar el papel de varios comp.......
Ningún autor tiene conflictos de interés que informar en relación con este trabajo.
Este trabajo fue apoyado por las subvenciones R01-HD093827 y R03-HD090304 de los Institutos Nacionales de Salud (A.J.T).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
100x oil objective | Olympus Japan | UPlanApo, | |
2-hydroxypropyl-b-cyclodextrin | Sigma | C0926 | |
35 mm coverslip dish, 1.5 thickness | MatTek Corp. | P35G-1.5-20-C | |
5 mL round-bottomed tube | Falcon | 352054 | |
Borosilicate glass capilarries | Sutter Instrument Co. CA USA | B200-156-10 | |
CaCl2 | Sigma | C4901 | |
Confocal microscope | Olympus Japan | Olympus FluoView | |
Glucose | Sigma | G7528 | |
Graduated tip | TipOne, USA Scientific | ||
HEPES | Sigma | H7006 | |
ImageJ | National Institutes of Health | https://imagej.nih.gov/ij/plugins/index.html | |
KCl | Sigma | P9541 | |
Lactic acid | Sigma | G5889 | |
Live-Cell Microscope Incubation Systems | TOKAI HIT Shizuoka, Japan | Model STX | |
MgCl2 | Sigma | M8266 | |
Micropipette Puller | Sutter Instrument Co. CA USA | Model P-97 | |
NaCl | Sigma | S3014 | |
NaHCO3 | Sigma | S6297 | |
Plastic transfer pipette | FisherBrand | 13-711-6M | |
Poly-D-lysine | Sigma | P7280 | |
Pyruvic acid | Sigma | 107360 | |
Single cell delivery system | Parker, Hauppauge, NY | Picospritzer III |
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