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La aplicación de capas de soporte a rejillas de microscopía electrónica criogénica (crioEM) puede aumentar la densidad de partículas, limitar las interacciones con la interfaz aire-agua, reducir el movimiento inducido por el haz y mejorar la distribución de las orientaciones de las partículas. Este artículo describe un protocolo robusto para recubrir rejillas crioEM con una monocapa de grafeno para mejorar la preparación de muestras criogénicas.
En la microscopía electrónica criogénica (cryoEM), las macromoléculas purificadas se aplican a una rejilla que lleva una lámina de carbono agujereada; A continuación, las moléculas se secan para eliminar el exceso de líquido y se congelan rápidamente en una capa de hielo vítreo de aproximadamente 20-100 nm de espesor, suspendida en agujeros de lámina de aproximadamente 1 μm de ancho. La muestra resultante se obtiene mediante microscopía electrónica de transmisión criogénica y, después del procesamiento de la imagen con un software adecuado, se pueden determinar estructuras de resolución casi atómica. A pesar de la adopción generalizada de la crioEM, la preparación de muestras sigue siendo un grave cuello de botella en los flujos de trabajo de la crioEM, ya que los usuarios a menudo se enfrentan a problemas relacionados con el mal comportamiento de las muestras en el hielo vítreo suspendido. Recientemente, se han desarrollado métodos para modificar las rejillas crioEM con una sola capa continua de grafeno, que actúa como una superficie de soporte que a menudo aumenta la densidad de partículas en el área de la imagen y puede reducir las interacciones entre las partículas y la interfaz aire-agua. Aquí, proporcionamos protocolos detallados para la aplicación de grafeno a las rejillas crioEM y para evaluar rápidamente la hidrofilicidad relativa de las rejillas resultantes. Además, describimos un método basado en EM para confirmar la presencia de grafeno mediante la visualización de su patrón de difracción característico. Finalmente, demostramos la utilidad de estos soportes de grafeno mediante la reconstrucción rápida de un mapa de densidad de resolución de 2,7 Å de un complejo Cas9 utilizando una muestra pura a una concentración relativamente baja.
La microscopía electrónica criogénica de una sola partícula (crioEM) se ha convertido en un método ampliamente utilizado para visualizarmacromoléculas biológicas. Impulsado por los avances en la detección directa de electrones 2,3,4, la adquisición de datos5 y los algoritmos de procesamiento de imágenes 6,7,8,9,10, cryoEM es ahora capaz de producir estructuras 3D de resolución casi atómica d....
1. Preparación del grafeno CVD
La fabricación exitosa de rejillas crioEM recubiertas de grafeno utilizando el equipo (Figura 1) y el protocolo (Figura 2) descritos aquí dará como resultado una monocapa de grafeno que cubrirá los orificios de la lámina que puede confirmarse por su patrón de difracción característico. Para promover la adsorción de proteínas a la superficie del grafeno, se puede utilizar el tratamiento UV/ozono para hacer que la superficie sea hidrófila mediante la in.......
La preparación de muestras de CryoEM implica una serie de desafíos técnicos, ya que la mayoría de los flujos de trabajo requieren que los investigadores manipulen manualmente las rejillas frágiles con extremo cuidado para evitar dañarlas. Además, la posibilidad de vitrificación de cualquier muestra es impredecible; Las partículas a menudo interactúan con la interfaz aire-agua o con la lámina de soporte sólida que se superpone a las rejillas, lo que puede llevar a que las partículas adopten las orientaciones .......
Los autores no tienen conflictos que revelar.
Los especímenes se prepararon y se obtuvieron imágenes en las instalaciones de CryoEM en MIT.nano en microscopios adquiridos gracias a la Fundación Arnold y Mabel Beckman. Los dispositivos de imágenes de ángulo de contacto se imprimieron en el MIT Metropolis Maker Space. Agradecemos a los laboratorios de Nieng Yan y Yimo Han, y al personal de MIT.nano por su apoyo a lo largo de la adopción de este método. En particular, extendemos nuestro agradecimiento a los doctores Guanhui Gao y Sarah Sterling por sus perspicaces discusiones y comentarios. Este trabajo fue financiado por las subvenciones R01-GM144542, 5T32-GM007287 de los NIH y la 2046778 de subvenciones NSF-CAREER....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
250 mL beaker (3x) | Fisher | 02-555-25B | |
50 mL beaker (2x) | Corning | 1000-50 | |
Acetone | Fisher | A949-4 | |
Aluminum foil | Fisher | 15-078-292 | |
Ammonium persulfate | Fisher | (I17874 | |
Coverslips 50 mm x 24 mm | Mattek | PCS-1.5-5024 | |
CVD graphene | Graphene Supermarket | CVD-Cu-2x2 | |
easiGlow discharger | Ted-Pella | 91000S | |
Ethanol | Millipore-Sigma | 1.11727 | |
Flat-tip tweezers | Fisher | 50-239-60 | |
Glass cutter | Grainger | 21UE26 | |
Glass petri plate and cover | VWR | 75845-544 | |
Glass serological pipette | Fisher | 13-676-34D | |
Grid Storage Case | EMS | 71146-02 | |
Hot plate | Fisher | 07-770-108 | |
Isopropanol | Sigma | W292907 | |
Kimwipe | Fisher | 06-666 | |
Lab scissors | Fisher | 13-806-2 | |
Methyl-Methacrylate EL-6 | Kayaku | MMA M310006 0500L1GL | |
Molecular grade water | Corning | 46-000-CM | |
Negative action tweezers (2x) | Fisher | 50-242-78 | |
P20 pipette | Rainin | 17014392 | |
P200 pipette | Rainin | 17008652 | |
Parafilm | Fisher | 13-374-12 | |
Pipette tips | Rainin | 30389291 | |
Quantifoil grids with holey carbon | EMS | Q2100CR1 | |
Spin coater | SetCas | KW-4A | with chuck SCA-19-23 |
Straightedge | ULINE | H-6560 | |
Thermometer | Grainger | 3LRD1 | |
UV/Ozone cleaner | BioForce | SKU: PC440 | |
Vacuum desiccator | Thomas Scientific | 1159X11 | |
Whatman paper | VWR | 28297-216 |
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