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El protocolo describe un nuevo método para evaluar la citotoxicidad integral de los metabolitos de los plaguicidas triazoles en plantas.
Varios contaminantes orgánicos han sido liberados al medio ambiente debido a las actividades antropogénicas. Estos contaminantes pueden ser absorbidos por las plantas de cultivo, causando amenazas potenciales para el ecosistema y la salud humana a lo largo de la cadena alimentaria. La biotransformación de los contaminantes en las plantas genera una serie de metabolitos que pueden ser más tóxicos que sus compuestos originales, lo que implica que los metabolitos deben tenerse en cuenta durante la evaluación de la toxicidad. Sin embargo, los metabolitos de los contaminantes en las plantas son extremadamente complejos, lo que dificulta la obtención exhaustiva de la información toxicológica de todos los metabolitos. Este estudio propuso una estrategia para evaluar la citotoxicidad integral de los metabolitos contaminantes en las plantas mediante el tratamiento de los mismos como un todo durante los ensayos toxicológicos. Los plaguicidas triazoles, una clase de fungicidas de amplio espectro, se han aplicado ampliamente en la producción agrícola. Su contaminación por residuos en las tierras agrícolas ha atraído cada vez más atención. Por lo tanto, se seleccionaron cuatro plaguicidas triazoles, incluidos flusilazol, diniconazol, tebuconazol y propiconazol, como los contaminantes analizados. Los metabolitos fueron generados por el tratamiento del callo de zanahoria con plaguicidas triazoles probados. Después de un tratamiento de 72 h, se extrajeron los metabolitos de los plaguicidas en el callo de zanahoria, seguido de pruebas toxicológicas utilizando la línea celular Caco-2. Los resultados mostraron que los metabolitos de los plaguicidas ensayados en el callo de zanahoria no inhibieron significativamente la viabilidad de las células de Caco-2 (P>0,05), demostrando que no hay citotoxicidad de los metabolitos de los plaguicidas. Este método propuesto abre una nueva vía para evaluar la citotoxicidad de los metabolitos contaminantes en las plantas, lo que se espera que proporcione datos valiosos para una evaluación precisa de la toxicidad.
Las plantas de cultivo que crecen en tierras agrícolas pueden estar expuestas a diversos contaminantes orgánicos originados por actividades antropogénicas 1,2. Los contaminantes pueden ser absorbidos por las plantas, causando aún más amenazas para el ecosistema y la salud humana a través de las cadenas alimentarias 3,4. Es probable que los xenobióticos de las plantas sufran una serie de biotransformaciones, como los metabolismos de fase I y II5, que generan una serie de metabolitos. De acuerdo c....
1. Diferenciación del callo de zanahoria
NOTA: El protocolo detallado para la diferenciación del callo de zanahoria ha sido descrito en un estudio previo12. He aquí una breve descripción.
La Figura 1 representa el esquema del método propuesto para la generación, extracción y evaluación de la citotoxicidad de metabolitos de plaguicidas en el callo de zanahoria. En la Figura 2, se muestran las curvas cinéticas de absorción y metabolismo de los plaguicidas analizados, a partir de las cuales podemos encontrar que las concentraciones de plaguicidas en los medios de cultivo disminuyeron exponencialmente, mientras.......
Este protocolo se desarrolló para evaluar la citotoxicidad integral de los metabolitos de los plaguicidas triazoles en plantas mediante la combinación de modelos de callos vegetales y células humanas. Los pasos críticos para este protocolo propuesto son el cultivo de callos vegetales y células Caco-2. La parte más difícil y los consejos relativos para el cultivo de callos de plantas se han proporcionado en nuestro estudio anterior12. Aquí, hay que tener en.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Este estudio contó con el apoyo de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (21976160) y el Proyecto de Investigación de Aplicación de Tecnología de Bienestar Público (LGF21B070006) de la provincia de Zhejiang.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
2,4-dichlorophenoxyacetic acid | WAKO | 1 mg/L | |
20% H2O2 | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 10011218-500ML | |
6-benzylaminopurine | WAKO | 0.5 mg/L | |
75% ethanol | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 1269101-500 mL | |
96-well plate | Thermo Fisher | ||
Acetonitrile | Sigma-Aldrich | ||
Artificial climate incubator | Ningbo DongNan Lab Equipment Co.,Ltd | RDN-1000A-4 | |
Autoclaves | STIK | MJ-Series | |
Caco-2 cells | Nuoyang Biotechnology Co.,Ltd. | ||
CCK8 reagents | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute, China | G021-1-3 | |
Centrifuge | Thermo Fisher | ||
CO2 incubator | Labtrip | HWJ-3-160 | |
Dimethyl sulfoxide | Solarbio Life Sciences | D8371 | |
Diniconazole, 98.7% | J&K Scientific | 83657-24-3 | |
Dulbecco's modified Eagle's medium | Solarbio Life Sciences | 11965-500 mL | |
electronic balance | Shanghai Precision Instrument Co., Ltd | FA1004B | |
Fetal bovine serum | Cellmax | ||
Fluorescence spectrophotometer | Tecan | Infinite M200 | |
Flusilazole, 98.5% | J&K Scientific | 85509-19-9 | |
Freeze dryer | SCIENTZ | ||
High-throughput tissue grinder | SCIENTZ | ||
Inverted microscope | Leica Biosystems | DMi1 | |
Milli-Q system | Millipore | MS1922801-4L | |
Murashige & Skoog medium | HOPEBIO | HB8469-7 | |
Nitrogen blowing concentrator | AOSHENG | MD200-2 | |
PBS | Solarbio Life Sciences | P1022-500 mL | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio Life Sciences | P1400-100 mL | |
Propiconazole, 100% | J&K Scientific | 60207-90-1 | |
Research plus | Eppendorf | 10-1000 μL | |
Seeds of Little Finger carrot (Daucus carota var. sativus) | Shouguang Seed Industry Co., Ltd | ||
Shaking Incubators | Shanghai bluepard instruments Co.,Ltd. | THZ-98AB | |
Tebuconazole, 100% | J&K Scientific | 107534-96-3 | |
Trypsin-EDTA solution | Solarbio Life Sciences | T1300-100 mL | |
Ultrasound machine | ZKI | UC-6 | |
UV-sterilized super clean bench | AIRTECH | ||
Vortex instrument | Wuxi Laipu Instrument Equipment Co., Ltd | BV-1010 |
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