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La derivación de linajes del sistema nervioso entérico (SNE) a partir de células madre pluripotentes humanas (hPSC) proporciona una fuente escalable de células para estudiar el desarrollo y la enfermedad del SNE, y para su uso en medicina regenerativa. Aquí, se presenta un protocolo detallado in vitro para derivar neuronas entéricas a partir de hPSCs utilizando condiciones de cultivo químicamente definidas.
El sistema nervioso entérico humano, ENS, es una gran red de tipos de células gliales y neuronales con una notable diversidad de neurotransmisores. El SNE controla la motilidad intestinal, la secreción de enzimas y la absorción de nutrientes, e interactúa con el sistema inmunitario y el microbioma intestinal. En consecuencia, los defectos de desarrollo y adquiridos del SNE son responsables de muchas enfermedades humanas y pueden contribuir a los síntomas de la enfermedad de Parkinson. Las limitaciones en los sistemas de modelos animales y el acceso al tejido primario plantean importantes desafíos experimentales en los estudios del SNE humano. Aquí, se presenta un protocolo detallado para la derivación efectiva in vitro de los linajes ENS a partir de células madre pluripotentes humanas, hPSC, utilizando condiciones de cultivo definidas. Nuestro protocolo comienza con la diferenciación dirigida de hPSCs a células de cresta neural entérica en un plazo de 15 días y produce diversos subtipos de neuronas entéricas funcionales en un plazo de 30 días. Esta plataforma proporciona un recurso escalable para estudios de desarrollo, modelado de enfermedades, descubrimiento de fármacos y aplicaciones regenerativas.
El sistema nervioso entérico (SNE) es el componente más grande del sistema nervioso periférico. El SNE contiene más de 400 millones de neuronas que se encuentran dentro del tracto gastrointestinal y controlan casi todas las funciones del intestino. La comprensión molecular del desarrollo y la función del SNE y sus defectos en las neuropatías entéricas requiere el acceso a una fuente fiable y auténtica de neuronas entéricas. El acceso al tejido primario humano es limitado, y los modelos animales no logran recapitular los fenotipos clave de la enfermedad en muchas neuropatías entéricas. La tecnología de células madre pluripotentes humanas (hPSC) ....
1. Preparación de los medios
NOTA: Las concentraciones mencionadas a lo largo del protocolo son concentraciones finales de los componentes del medio. Prepare todos los medios en condiciones estériles en una campana de flujo laminar y almacene a 4 °C en la oscuridad. Úselo dentro de las 2 semanas.
Este protocolo proporciona un método para derivar la cresta neural entérica y las neuronas entéricas a partir de hPSCs utilizando condiciones de cultivo definidas químicamente (Figura 1A-B). La generación de neuronas de alta calidad depende de un paso eficiente de inducción de la cresta neural entérica. Esto se puede evaluar visualmente comprobando la morfología de las esferas que flotan libremente, que deben verse redondas con superficies lisas con un tamaño aproxi.......
El protocolo de diferenciación descrito aquí proporciona un método robusto in vitro para obtener neuronas entéricas de hPSCs en un plazo de 30-40 días (Figura 1E) y glía entérica que expresa proteína ácida fibrilar glial, GFAP y SOX10 en cultivos más antiguos (> día 55)13,14,19,22. Estas neuronas y glía son inducidas por la diferenciación esca.......
Los autores no tienen nada que revelar.
El trabajo fue apoyado por subvenciones del Programa de Investigación Biomédica Innovadora de la UCSF y la Fundación Sandler, la subvención n.º 1-FY18-394 y 1DP2NS116769-01 de March of Dimes, el Premio al Nuevo Innovador del Director de los NIH (DP2NS116769) a F.F. y el Instituto Nacional de Diabetes y Enfermedades Digestivas y Renales (R01DK121169) a F.F., H.M. cuenta con el apoyo de la beca postdoctoral de la Fundación Larry L. Hillblom, Beca T32-DK007418 de los NIH y beca postdoctoral independiente del Programa de Investigación Biomédica Innovadora de la UCSF.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A5960 | |
B27 supplement (serum free, minus vitamin A) | Gibco | 12587-010 | |
Basement membrane matrix, Geltrex | Gibco | A14133-2 | |
BMP4 | R&D systems | 314-BP | |
Cell culture centrifuge | Eppendorf, model no. 5810R | 02262501 | |
Cell detachment solution, Accutase | Stemcell Technologies | 07920 | |
CHIR99021 | Tocris | 4423 | |
Conical tubes | USA scientific | 1475-0511, 1500-1211 | |
Differentiation base medium, Essential 6 | Life Technologies | A1516401 | |
DMEM/F-12 no glutamine | Life Technologies | 21331020 | |
EDTA | Corning | MT-46034CI | |
Feeder-free hPSC maintenance medium, Essential 8 Flex Medium Kit | Life Technologies | A2858501 | |
FGF2 | R&D systems | 233-FB/CF | |
Fibronectin | Corning | 356008 | |
GDNF | Peprotech | 450-10 | |
Hemocytometer | Hausser Scientific | 1475 | |
Human pluripotent stem cells, H9 ESC | WiCell | RRID: CVCL_1240 | |
Incubator with controlled humidity, temperature and CO2 | Thermo Fisher Scientific | Herralcell 150i | |
Inverted microscope | Thermo Fisher Scientific | EVOS FL | |
Laminar flow hood | Thermo Fisher Scientific | 1300 series class II, type A2 | |
Laminin | Cultrex | 3400-010 | |
L-glutamine supplement, Glutagro | Corning | 25-015-CI | |
MEM NEAAs | Corning | 25-025-CI | |
Multiwell plates, Falcon | BD | 353934, 353075 | |
N-2 Supplement | CTS | A1370701 | |
Neurobasal Medium | Life Technologies | 21103049 | |
PBS (Ca and Mg free) | Life Technologies | 10010023 | |
Pipette filler | Eppendorf | Z768715-1EA | |
Pipette tips | USA scientific | 1111-2830 | |
Pipettes | Fisherbrand | 13-678-11E, 13-678-11F | |
PO | Sigma-Aldrich | P3655 | |
polymer coverslip bottom imaging plates, ibidi | ibidi | 81156 | |
RA | Sigma-Aldrich | R2625 | |
SB431542 | R&D systems | 1614 | |
Trypan blue stain, 0.4% | Thermo Fisher Scientific | 15250-061 | |
Ultra-low attachment plates | Fisher Scientific | 07-200-601 | |
Y-27632 dihydrochloride | R&D systems | 1254 |
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