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Describimos un procedimiento sencillo para la complementación cromosómica de una sola copia de un gen de bomba de eflujo utilizando un sistema de expresión basado en mini-Tn7 en una cepa de Acinetobacter baumannii deficiente en eflujo modificada. Esta precisa herramienta genética permite controlar la expresión génica, lo cual es clave para la caracterización de las bombas de eflujo en patógenos multirresistentes.
Acinetobacter baumannii es reconocido como un patógeno gramnegativo desafiante debido a su resistencia generalizada a los antibióticos. Es crucial comprender los mecanismos detrás de esta resistencia para diseñar opciones terapéuticas nuevas y efectivas. Desafortunadamente, nuestra capacidad para investigar estos mecanismos en A. baumannii se ve obstaculizada por la escasez de herramientas adecuadas de manipulación genética. Aquí, describimos métodos para utilizar un sistema basado en mini-Tn7 cromosómico para lograr la expresión génica de una sola copia en una cepa de A. baumannii que carece de mecanismos funcionales de eflujo de tipo RND. La inserción de copia única y la expresión de la bomba de eflujo inducible son bastante ventajosas, ya que la presencia de operones de eflujo de RND en plásmidos de alto número de copias a menudo es mal tolerada por las células bacterianas. Además, la incorporación de vectores de expresión de mini-Tn7 recombinantes en el cromosoma de un huésped sustituto de A. baumannii con mayor sensibilidad al eflujo ayuda a evitar la interferencia de otras bombas de eflujo. Este sistema es valioso no solo para investigar bombas de eflujo bacteriano no caracterizadas, sino también para evaluar la eficacia de los inhibidores potenciales dirigidos a estas bombas.
Acinetobacter baumannii es un patógeno prioritario de la Organización Mundial de la Salud debido a su amplia resistencia a todas las clases de antibióticos1. Es un patógeno oportunista que afecta principalmente a personas hospitalizadas, lesionadas o inmunodeprimidas. A. baumannii evade en gran medida los antibióticos a través de bombas de eflujo, siendo la más relevante la familia de exportadores Resistance-Nodulation-Division (RND)2. Comprender cómo funcionan mecánicamente estas bombas de eflujo permitirá desarrollar opciones terapéuticas específicas.
Una forma com....
1. Preparación experimental
El procedimiento de inserción cromosómica toma solo 2 horas en total durante 3 días para ver un resultado: colonias creciendo en una placa de agar selectiva (Figura 1A-C). El número esperado de colonias en la placa de transformación depende de la cepa: se pueden ver 20-30 o incluso cientos de colonias, ya que la inserción de Tn7 en los sitios attTn7 es específica y eficiente9. La aplicación de parches a las colonias d.......
A pesar de que este procedimiento para la inserción cromosómica de un sistema de expresión génica inducible de una sola copia en A. baumannii es técnicamente sencillo y no requiere mucha mano de obra, hay algunos pasos importantes que deben enfatizarse. En primer lugar, la preparación de las células competentes debe realizarse en hielo tanto como sea posible, ya que las células se vuelven frágiles durante la sustitución de los medios por agua helada. Idealmente, los pasos de centrifugación se realizan.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue apoyado por una beca Discovery Grant del Consejo de Ciencias Naturales e Ingeniería de Canadá para AK. Los esquemas utilizados en las figuras se crean con BioRender.com.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.2 mL PCR tube | VWR | 20170-012 | For colony boil preparations and PCR reactions |
1.5 mL microfuge tubes | Sarstedt | 72-690-301 | General use |
13-mL culture tubes, Pyrex | Fisher | 14-957K | Liquid culture vessels |
6x DNA loading buffer | Froggabio | LD010 | Agarose gel electrophoresis sample loading dye |
Acetic acid, glacial | Fisher | 351271-212 | Agarose gel running buffer component |
Agar | Bioshop | AGR003 | Solid growth media |
Agarose | BioBasic | D0012 | Electrophoretic separation of PCR reaction products; used at a concentration of 0.8–2% |
Agarose gel electrophoresis unit | Fisher | 29-237-54 | Agarose gel electrophoresis; separation of PCR reaction products |
Carbenicillin | Fisher | 50841231 | Selective media |
Culture tube closures | Fisher | 13-684-138 | Stainless steel closure for 13-mL culture tubes |
Deoxynucleotide triphosphate (dNTP) set | Biobasic | DD0058 | PCR reaction component; supplied as 100 mM each dATP, dCTP, dGTP, dTTP; mixed and diluted for 10 mM each dNTP |
Dry bath/block heater | Fisher | 88860023 | Isotemp digital dry bath for boil preparations |
Electroporation cuvettes | VWR | 89047-208 | 2 mm electroporation cuvettes with round cap |
Electroporator | Cole Parmer | 940000009 | 110 VAC, 60 Hz electroporator |
Ethidium bromide | Fisher | BP102-1 | Visualization of PCR reaction products and DNA marker in agarose gel |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | VWR | CA-EM4050 | Agarose gel running buffer component |
Gentamicin | Biobasic | GB0217 | For the preparation of selective media |
Glycerol | Fisher | G33 | Preparation of bacterial stocks for long-term storage in an ultra-low freezer |
Incubator (shaking) | New Brunswick Scientific | M1352-0000 | Excella E24 Incubator Shaker for liquid culture growth |
Incubator (static) | Fisher | 11-690-550D | Isotemp Incubator Oven Model 550D for solid (LB agar) culture growth |
Inoculation loop | Sarstedt | 86.1562.050 | Streaking colonies onto agar plates |
Inoculation spreader | Sarstedt | 86.1569.005 | Spreading of culture onto agar plates |
Lysogeny broth (LB) broth, Lennox | Fisher | BP1427 | Liquid growth media (20 g/L: 5 g/L sodium chloride, 10 g/L tryptone, 5 g/L yeast extract) |
Microfuge | Fisher | 75002431 | Sorvall Legend Micro 17 for centrifugation of samples |
Mini-centrifuge | Fisher | S67601B | Centrifugation of 0.2 mL PCR tubes |
Petri dishes | SPL Life Sciences | 10090 | For solid growth media (agar plates): 90 x 15 mm |
Pipettes | Mandel | Various | Gilson single channel pipettes (P10, P20, P200, P1000) |
Power supply | Biorad | 1645050 | PowerPac Basic power supply for electrophoresis |
Primers | IDT | NA | PCR reaction component; specific to gene of interest; prepared at 100 μM as directed on the product specification sheet |
Sucrose | BioBasic | SB0498 | For the preparation of counterselective media for removal of the pFLP2ab plasmid from transformed A. baumannii |
Taq DNA polymerase | FroggaBio | T-500 | PCR reaction component; polymerase supplied with a 10x buffer |
Thermal cycler | Biorad | 1861096 | Model T100 for PCR |
Toothpicks | Fisher | S24559 | For patching colonies onto agar plates |
Trizma base | Sigma | T1503 | Agarose gel running buffer component |
Ultrapure water | Millipore Sigma | ZLXLSD51040 | MilliQ water purification system: ultra pure water for media and solution preparation, and cell washing |
Wide range DNA marker | Biobasic | M103R-2 | Size determination of PCR products on an agarose gel |
Wooden inoculating sticks | Fisher | 29-801-02 | Inoculating cultures with colonies from agar plates |
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