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La generación de anión superóxido es esencial para la estimulación de las plaquetas y, si está desregulada, es fundamental para las enfermedades trombóticas. En este trabajo se presentan tres protocolos para la detección selectiva de aniones superóxido y el estudio de la regulación plaquetaria dependiente de redox.
Las especies reactivas de oxígeno (ROS) son moléculas que contienen oxígeno altamente inestables. Su inestabilidad química los hace extremadamente reactivos y les da la capacidad de reaccionar con moléculas biológicas importantes como proteínas, ácidos nucleicos y lípidos. Los aniones superóxido son ROS importantes generadas por la reducción de la reducción de oxígeno molecular (es decir, la adquisición de un electrón). A pesar de su implicación inicial exclusivamente en el envejecimiento, los procesos degenerativos y patogénicos, recientemente se ha puesto de manifiesto su participación en importantes respuestas fisiológicas. En el sistema vascular, se ha demostrado que los aniones superóxido modulan la diferenciación y la función de las células del músculo liso vascular, la proliferación y migración de las células endoteliales vasculares en la angiogénesis, la respuesta inmunitaria y la activación de las plaquetas en la hemostasia. El papel de los aniones superóxido es particularmente importante en la desregulación de las plaquetas y las complicaciones cardiovasculares asociadas con una gran cantidad de afecciones, como el cáncer, la infección, la inflamación, la diabetes y la obesidad. Por lo tanto, se ha vuelto extremadamente relevante en la investigación cardiovascular poder medir de manera efectiva la generación de aniones superóxido por parte de las plaquetas humanas, comprender los mecanismos dependientes de redox que regulan el equilibrio entre hemostasia y trombosis y, finalmente, identificar nuevas herramientas farmacológicas para la modulación de las respuestas plaquetarias que conducen a trombosis y complicaciones cardiovasculares. Este estudio presenta tres protocolos experimentales adoptados con éxito para la detección de aniones superóxido en plaquetas y el estudio de los mecanismos dependientes de redox que regulan la hemostasia y la trombosis: 1) detección de aniones superóxido basados en dihidroetidio (DHE) por citometría de flujo; 2) Visualización y análisis de aniones superóxido basados en DHE mediante imágenes de plaquetas individuales; y 3) cuantificación basada en sonda de espín de la salida de aniones superóxido en plaquetas mediante resonancia paramagnética electrónica (EPR).
El anión superóxido (O2•-) es la ROS funcionalmente más relevante generada en las plaquetas1. O2•- es el producto de la reducción del oxígeno molecular y el precursor de muchas ROS 2 diferentes. La dismutación deO2•- conduce a la generación de peróxido de hidrógeno (H2,O2) a través de reacciones espontáneas en solución acuosa o reacciones catalizadas por superóxido dismutasas (SODs3). Aunque se han sugerido diferentes fuentes enzimáticas (por ejemplo, xantina oxidasa
La recolección de sangre periférica de voluntarios que dan su consentimiento está aprobada por el Comité de Ética local y la Autoridad de Investigación Sanitaria del Servicio Nacional de Salud (referencia REC: 21/SC/0215; IRAS ID: 283854).
1. Método 1: Detección de aniones superóxido mediante DHE por citometría de flujo
Para la detección por citometría de flujo de fluorescencia de DHE, mostramos resultados representativos de las plaquetas en reposo (Figura 3A) o estimuladas con 0,1 unidades/mL de trombina (Figura 3B). La salida deO2•- se cuantificó como intensidad de fluorescencia media plaquetaria (MFI), como se muestra para la estimulación con 0,1 unidades/mL de trombina (Figura 3C
En este manuscrito, presentamos tres técnicas diferentes con el potencial de avanzar en la capacidad de investigar la regulación dependiente de redox de la función plaquetaria a través de la detección selectiva deO2•-. Los dos primeros métodos son una mejora con respecto a las técnicas existentes debido a la sonda redox utilizada (DHE en lugar del más común pero menos confiable DCFDA). Por lo tanto, estas técnicas son de fácil acceso, y la ma.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Este trabajo fue financiado por la Fundación Británica del Corazón (PG/15/40/31522), Alzheimer Research UK (ARUK-PG2017A-3) y el Consejo Europeo de Investigación (#10102507) a G. Pula.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1-hydroxy-3-methoxycarbonyl-2,2,5,5-tetramethylpyrrolidine (CMH) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-02.1-50mg | Reagent for EPR (spin probe) |
BD FACSAria III | BD Biosciences | NA | Flow cytometer |
Bovine Serum Albumin | Merck/Sigma | A7030 | For μ-slide coating |
Bruker E-scan M (Noxyscan) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-E.11-BES | EPR spectrometer |
Catalase–polyethylene glycol (PEG-Cat.) | Merck/Sigma | C4963 | Hydrogen peroxide scavenger (specificity control) |
ChronoLog Model 490+4 | Labmedics/Chronolog | NA | Aggregometer |
CM radical | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-20.1-100mg | Reagent for EPR (calibration control) |
deferoxamine | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-09.1-100mg | Reagent for EPR |
diethyldithiocarbamate (DETC) | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-10.1-1g | Reagent for EPR |
Dihydroethidium | Thermo Fisher Scientifics | D11347 | Superoxide anion probe |
Dimethyl sulfoxide | Merck/Sigma | 34869 | For stock solution preparation |
EPR sealing wax plates | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-A.3-VPM | Consumable for EPR |
EPR-grade water | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-07.7.1-0.5L | Reagent for EPR |
Fibrinogen from human plasma | Merck/Sigma | F4883 | For μ-slide coating |
FITC anti-human CD41 Antibody | BioLegend | 303704 | Platelet-specific staining for flow cytometry |
Glass cuvettes | Labmedics/Chronolog | P/N 312 | Consumable for incubation in aggregometer |
Horm Collagen | Labmedics/Chronolog | P/N 385 | For platelet stimulation |
ImageJ | National Institutes of Health (NIH) | NA | ImageJ 1.53t (Wayne Rasband) |
Indomethacin | Merck/Sigma | I7378 | For platelet isolation |
Micropipettes DURAN 50µl | Noxygen Science trasfer and Diagnostics GmbH | NOX-G.6.1-50µL | Consumable for EPR |
Poly-L-lysine hydrochloride | Merck/Sigma | P2658 | For μ-slide coating |
Prostaglandin E1 (PGE1) | Merck/Sigma | P5515 | For platelet isolation |
Sodium citrate (4% w/v solution) | Merck/Sigma | S5770 | For platelet isolation |
Stirring bars (Teflon-coated) | Labmedics/Chronolog | P/N 313 | Consumable for incubation in aggregometer |
Superoxide dismutase–polyethylene glycol (PEG-SOD) | Merck/Sigma | S9549 | Superoxide anion scavenger (specificity control) |
Thrombin from human plasma | Merck/Sigma | T6884 | For platelet stimulation and μ-slide coating |
VAS2870 | Enzo Life Science | BML-EI395 | NOX inhibitor |
Zeiss 510 LSM confocal microscope | Zeiss | NA | Confocal microscope |
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