Se requiere una suscripción a JoVE para ver este contenido. Inicie sesión o comience su prueba gratuita.
* Estos autores han contribuido por igual
En este trabajo se presenta un protocolo para la generación y verificación funcional de células T con receptor de antígeno quimérico (CAR) sensibles a la hipoxia. Este protocolo presenta la generación de células CAR-T sensibles a la hipoxia basada en lentivirus y su caracterización, incluida la validación de la expresión de CAR dependiente de la hipoxia y la citotoxicidad selectiva.
Numerosos estudios han demostrado la promesa de la terapia celular con receptores de antígenos quiméricos T (CAR-T) en el tratamiento de neoplasias hematológicas. Sin embargo, el tratamiento de los tumores sólidos sigue siendo un reto, como lo demuestran los problemas de seguridad que surgen cuando las células CAR-T atacan a las células normales que expresan los antígenos diana. Los investigadores han explorado varios enfoques para mejorar la selectividad tumoral de la terapia con células CAR-T. Una estrategia representativa en esta línea es la construcción de células CAR-T sensibles a la hipoxia, que se diseñan mediante la fusión de un dominio de degradación dependiente del oxígeno con la fracción de CAR y se diseñan estratégicamente para lograr una alta expresión de CAR solo en un entorno hipóxico: el microambiente tumoral (TME). En este artículo se presenta un protocolo para la generación de dichas células CAR-T y su caracterización funcional, incluyendo métodos para analizar los cambios en la expresión de CAR y la capacidad de matanza en respuesta a diferentes niveles de oxígeno establecidos por una cámara de incubación móvil. Se prevé que las células CAR-T construidas demuestren la expresión y la citotoxicidad de CAR de una manera sensible al oxígeno, lo que respalda su capacidad para distinguir entre TME hipóxico y tejidos normales normóxicos para la activación selectiva.
La terapia de células T con receptor de antígeno quimérico (CAR-T) ha representado un avance significativo en el tratamiento del cáncer. Desde que la Administración de Alimentos y Medicamentos (FDA, por sus siglas en inglés) aprobó la primera terapia CAR-T para tratar el linfoma avanzado/resistente y la leucemia linfoblástica aguda en 2017, 1,2,3, 10 terapias CAR-T dirigidas a CD19 o antígeno de maduración de células B (BCMA) han recibido aprobación a nivel mundial. Sin embargo, a pesar de la exte....
En este estudio, se comparó HER2-BBz-ODD, un CAR sensible a la hipoxia dirigido a HER2 (Gene ID: 2064) con su contraparte regular, HER2-BBz. Los esquemas de los dos CAR se ilustran en la Figura 1A, que muestra que HER2-BBz-ODD se deriva de HER2-BBz agregando la secuencia ODD al C-terminal de CD3ξ. La construcción de vectores lentivirales que expresan los dos CARs y la generación del lentivirus correspondiente por transfección de células 293T ha sido descrita previamente31.
1. Generación de células CAR-T sensibles a la hipoxia por infección lentivir....
La fusión del dominio ODD de HIF-1α con la fracción CAR representa una estrategia primaria para generar un CAR sensible a la hipoxia. El CAR sensible a la hipoxia dirigido a HER2 analizado en este estudio, denominado HER2-BBz-ODD, se construyó utilizando esta estrategia mediante la integración de la secuencia ODD en su HER2-BBz convencional (Figura 1A). En este estudio, utilizamos la transducción lentiviral para expresar HER2-BBz-ODD CAR o HER2-BBz CAR.......
Los problemas de seguridad son cuestiones importantes que deben abordarse para que cualquier terapia de células CAR-T avance hacia el uso clínico. La utilización de las propiedades únicas de las células tumorales o el TME se ha convertido en una dirección de investigación principal que se centra en el desarrollo de células CAR-T que se dirigen a los tejidos tumorales de forma selectiva. El diseño de un CAR-T sensible a la hipoxia es una estrategia atractiva en esta dirección, c.......
Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.
Este trabajo contó con el apoyo de subvenciones del Programa Nacional de Investigación y Desarrollo Clave de China (2016YFC1303402), el Megaproyecto Nacional sobre Enfermedades Infecciosas Clave (2017ZX10202102, 2017ZX10304402-002-007) y el Programa General de la Comisión Municipal de Salud de Shanghái (201740194).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL Centrifuge tube | QSP | 509-GRD-Q | Supernatants and cells cellection Protocol Step 2,3,4 |
10% ExpressCast PAGE | NCM biotech | P2012 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
10x PBS | NCM biotech | 20220812 | Cell culture Protocol Step 4 |
10 mL pipette | Yueyibio | YB-25H | Pipetting Protocol Step 1 |
10xTRIS-Glycine-SDS electrophoresis buffer | Epizyme | 3673020 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
15 mL Centrifuge tube | Thermo Scientific | 339650 | Supernatants and cells cellection Protocol Step 1 |
25 cm2 EasYFlask | Thermo Scientific | 156367 | Cell culture Protocol Step 3,4 |
4x Protein SDS PAGE Loading Buffer | Takara | 9173 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
6-well flat-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 140675 | T Cells culture Protocol Step 1 |
96-well black flat-bottom tissue culture plates | Greiner | 655090 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
96-well ELISA plates | Corning | 3590 | ELISA Protocol Step 5 |
96-well plate shaker | QILINBEIER | MH-2 | Shake Protocol Step 4 |
96-well U-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 268200 | Supernatants cellection Protocol Step 4,5 |
anti-FLAG antibody | Sigma | F1804-50UG | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbinol | Sinopharm | 10010061 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbon dioxide incubator | Thermo Scientific | 360 | Cell culture Protocol Step 1,2,3,4 |
Cell counting plate | Hausser scientific | 1492 | Cell counting Protocol Step 1,3,4 |
CELLection Pan Mouse IgG Kit | Thermo Scientific | 11531D | Mouse IgG magnetic beads Protocol Step 1 |
Centrifuge | Thermo Scientific | 75002432 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Chemiluminescence gel imaging system | BIO-RAD | 12003154 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Cobalt chloride solution (0.5 M) | bioleaper | BR4000203 | Hypoxic condition Protocol Step 2,3,4 |
DMEM | Corning | 10-103-CV | Cell culture Protocol Step 4 |
Electronic balance | Sartorius | PRACTUM612-1CN | weigh Protocol Step 5 |
FBS | BI | 04-001-1ACS | Cell culture Protocol Step 3,4 |
GAPDH Mouse mAb | ABclonal | AC002 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Gel electrophoresis apparatus | BIO-RAD | 1645070 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
GloMax Microplate Readers | Promega | GM3000 | luciferase activity measurement Protocol Step 4 |
Goat anti-Mouse IgG (H+L) | Yeasen | P1126151 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
High speed microfreezing centrifuge | eppendorf | 5810 R | Cell culture Protocol Step 1 |
Human IFN-γ ELISA Set | BD | 555142 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IFN-γ Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IFN-γ , Capture Antibody Purified Anti-Human IFN-γ, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
Human IL-2 ELISA Set | BD | 555190 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IL-2 Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IL-2 , Capture Antibody Purified Anti-Human IL-2, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
IL-15 | R&D systems | P40933 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-21 | Novoprotein | GMP-CC45 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-7 | R&D systems | P13232 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Inverted microscope | Olympus | CKX41 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Jurkat | ATCC | TIB-152 | CAR-Jurkat construction Protocol Step 3 |
LSRFortessa | BD | LSRFortessa | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Luciferase Assay System | Promega | E1501 | luciferase reporter assay Protocol Step 4 Items: Passive lysis buffer, firefly luciferase substrate |
Microplate reader | BioTek | HTX | ELISA Protocol Step 5 |
mobile CO2/O2/N2 Incubator Chamber | China Innovation Instrument Co., Ltd. | Smartor118 | Hypoxic condition Protocol Step 2, 3, 4 |
Mouse Anti-Hexa Histidine tag | Sigma | SAB2702218 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
NcmBlot Rapid Transfer Buffer | NCM biotech | WB4600 | Immunoblotting |
NcmECL Ultra | NCM biotech | P10300 | Immunoblotting Protocol Step 3 Items: NcmECL Ultra Luminol/Enhancer Reagent (A) ,NcmECL Ultra Stabilized Peroxide Reagent (B) |
NovoNectin -coated 48-well flat plates | Novoprotein | GMP-CH38 | CAR-T cells construction Protocol Step 1 |
OPD (o-phenylenediamine dihydrochloride) tablet set | Sigma | P9187 | Substrate Reagent Protocol Step 5 Items: OPD tablet (silver foil),urea hydrogen peroxide tablet (gold foil) |
PE-conjugated anti-DYKDDDDK | Biolegend | 637310 | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Protamine sulfate | Sigma | P3369-1OG | Lentivirus infection Protocol Step 1 |
Protein Marker 10 Kda-250 KDa | Epizyme | WJ102 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Purifed NA/LE Mouse Anti-Human CD3 | BD | 566685 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Purified NA/LE Mouse Anti-Human CD28 | BD | 555725 | T Cells culture Protocol Step 1 |
PVDF membrane | Millipore | 168627 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
RPMI 1640 | Corning | 10-040-CVRC | Cell culture Protocol Step 3 |
Skim milk powder | Yeasen | S9129060 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
SKOV3-Luc | ATCC | HTB-77 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
Trypsin-EDTA | NCM biotech | C125C1 | Cell culture Protocol Step 4 |
Tween 20 | Sinopharm | 30189328 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Water bath | keelrein | NB014467 | Heating Protocol Step 1 |
X-VIVO 15 | LONZA | 04-418Q | Serum-free lymphocyte culture medium Protocol Step 1 |
Solicitar permiso para reutilizar el texto o las figuras de este JoVE artículos
Solicitar permisoThis article has been published
Video Coming Soon
ACERCA DE JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos los derechos reservados