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Este trabajo explica cómo transformar las mitocondrias de la levadura utilizando un método biolístico. También mostramos cómo seleccionar y purificar los transformantes y cómo introducir la mutación deseada en la posición objetivo dentro del genoma mitocondrial.
La levadura de panadería Saccharomyces cerevisiae se ha utilizado ampliamente para comprender la biología mitocondrial durante décadas. Este modelo ha proporcionado conocimiento sobre las vías mitocondriales esenciales y conservadas entre los eucariotas y las vías específicas de hongos o levaduras. Una de las muchas habilidades de S. cerevisiae es la capacidad de manipular el genoma mitocondrial, que hasta ahora solo es posible en S. cerevisiae y el alga unicelular Chlamydomonas reinhardtii. La transformación biolística de las mitocondrias de levadura nos permite introducir mutaciones dirigidas al sitio, hacer reordenamientos genéticos e introducir reporteros. Estos enfoques se utilizan principalmente para comprender los mecanismos de dos procesos altamente coordinados en las mitocondrias: la traducción por mitoribosomas y el ensamblaje de complejos respiratorios y ATP sintasa. Sin embargo, la transformación mitocondrial puede utilizarse potencialmente para estudiar otras vías. En el presente trabajo, mostramos cómo transformar las mitocondrias de levadura mediante bombardeo de microproyectiles a alta velocidad, seleccionar y purificar el transformador deseado e introducir la mutación deseada en el genoma mitocondrial.
La levadura Saccharomyces cerevisiae es un modelo ampliamente reconocido que se utiliza para estudiar la biogénesis mitocondrial. Dado que la levadura es un organismo anaeróbico y facultativo, es posible estudiar ampliamente las causas y consecuencias de la introducción de mutaciones que perjudican la respiración. Además, este organismo posee herramientas genéticas y bioquímicas amigables para estudiar las vías mitocondriales. Sin embargo, uno de los recursos más poderosos para explorar los mecanismos de ensamblaje del complejo respiratorio y la síntesis de proteínas mitocondriales es la capacidad de transformar las mitocondrias y modificar el genoma del orgá....
NOTA: Recomendamos realizar seis transformaciones para cada constructo, ya que la eficiencia de la transformación mitocondrial suele ser baja. La composición de los diferentes medios de crecimiento se muestra en la Tabla 2.
1. Preparación de partículas de tungsteno
En esta sección se presentan algunos resultados representativos de las diferentes etapas de la transformación mitocondrial. La figura 6 muestra un procedimiento de bombardeo. Las células rho- sintéticas portaban un plásmido bacteriano con el gen reportero ARG8m, que reemplazará la secuencia codificante de un gen mitocondrial (Figura 6A). Después del bombardeo, la placa se replicó en un medio que carecía de uracilo (-URA); .......
El presente trabajo describe cómo transformar con éxito las mitocondrias de la levadura S. cerevisiae . El proceso, desde el bombardeo de microproyectiles a alta velocidad hasta la purificación de la cepa de levadura prevista, dura ~ 8-12 semanas, dependiendo de cuántas rondas de purificación de la cepa sintética sean necesarias. Algunos de los pasos críticos del método son los siguientes. En primer lugar, cuanto más grandes sean las regiones flanqueantes añadidas alrededor del sitio de la m.......
Los autores no tienen ningún conflicto de intereses que revelar.
Esta publicación contó con el apoyo del Programa de Apoyo a Proyectos de Investigación e Innovación Tecnológica (PAPIIT), UNAM [IN223623 a XP-M]. La UPD es becaria de CONAHCYT (CVU:883299). Queremos agradecer a la Dra. Ariann Mendoza-Martínez por su ayuda técnica con las imágenes del microscopio óptico. Licencias de Biorender: DU26OMVLUU (Figura 2); BK26TH9GXH (Figura 3); GD26TH80R5 (Figura 4); PU26THARYD (Figura 7); ML26THAIFG (Figura 9).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1 mL pipette tips | Axygen | T-1000-B | |
1.5 mL Microtube | Axygen | MCT-150-C | |
10 μL pipette tips | Axygen | T-10-C | |
15 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-25ML-25-S | |
200 μL pipette tips | Axygen | T-200-Y | |
50 mL conical bottom tube | Axygen | SCT-50ML-25-S | |
AfiII | New England BioLabs | R0520S | |
Agarose | SeaKem | 50004 | |
Analytic balance | OHAUS | ARA520 | |
Autoclave | TOMY | ES-315 | |
Bacto agar | BD | 214010 | |
Bacto peptone | BD | 211677 | |
Biolisitic Macrocarrier holder | BIO-RAD | 1652322 | |
Bunsen burner | VWR | 89038-528 | |
Calcium chloride | Fisher Scientific | C79-500 | |
CSM -ADE | Formedium | DCS0049 | |
CSM -ARG | Formedium | DCS0059 | |
CSM -LEU | Formedium | DCS0099 | |
CSM -URA | Formedium | DCS0169 | |
Culture glass flask | KIMAX KIMBLE | 25615 | |
Culture glass tube | Pyrex | 9820 | |
Dextrose | BD | 215520 | |
Ethanol | JT Baker | 9000 | |
Forceps | Millipore | 620006 | |
Glass beads | Sigma | Z265926 | |
Glass handle | Sigma | S4647 | |
Glycerol | JT BAKER | 2136-01 | |
Helium tank grade 5 (99.99 %) | - | - | |
HSTaq Kit | PCR BIO | ||
Microcentrifugue | Eppendorf | 022620100 | |
NdeI | New England BioLabs | R0111L | |
Orbital shaker | New Brunswick scientific | NB-G25 | |
PCR tubes | Axygen | PCR-02-C | |
PDS-1000/He TM Biolistic Particle Delivery System | BIO-RAD | 165-2257 | |
Petri dishes (100X10) | BD | 252777 | |
QIAprep Spin Miniprep | Qiagen | 27106 | |
Raffinose | Formedium | RAF03 | |
Replica plater | Scienceware | Z363391 | |
Rupture discs 1350 Psi | BIO-RAD | 1652330 | |
Sorbitol | Sigma | S7547 | |
Spermidine | Sigma | S0266 | |
T4 DNA Ligase | Thermo Scientific | EL0011 | |
Tissue Culture Rotator | Thermo Scientific | 88882015 | |
Tungsten microcarriers M10 | BIO-RAD | 1652266 | |
Vaccum pump of 100L/min capacity | - | - | |
Velvet pads | Bel-Art | H37848-0002 | |
Vortex | Scientifc Industries | SI-0236 | |
Wood aplicator stick | PROMA | 1820060 | |
Yeast extract | BD | 212750 | |
Yeast Nitrogen base without aminoacids | BD | 291920 |
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