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Este protocolo demuestra la ablación celular con láser de neuronas individuales en larvas intactas de Drosophila . El método permite estudiar el efecto de la reducción de la competencia entre neuronas en el sistema nervioso en desarrollo.
El protocolo describe la ablación de una sola neurona con un sistema láser de 2 fotones en el sistema nervioso central (SNC) de larvas intactas de Drosophila melanogaster. Con este método no invasivo, el sistema nervioso en desarrollo puede manipularse de una manera específica para cada célula. La interrupción del desarrollo de las neuronas individuales en una red se puede utilizar para estudiar cómo el sistema nervioso puede compensar la pérdida de información sináptica. Las neuronas individuales fueron ablacionadas específicamente en el sistema de fibras gigantes de Drosophila, con un enfoque en dos neuronas: la fibra gigante presináptica (GF) y la neurona motora tergotrochanteral postsináptica (TTMn). El GF hace sinapsis con el TTMn ipsilateral, que es crucial para la respuesta de escape. La ablación de uno de los GF en el tercer estadio del cerebro, justo después de que el GF comienza el crecimiento axonal, elimina permanentemente la célula durante el desarrollo del SNC. El GF restante reacciona al vecino ausente y forma un terminal sináptico ectópico con el TTMn contralateral. Este terminal atípico, bilateralmente simétrico, inerva ambos TTMns, como se demuestra mediante el acoplamiento de colorantes, e impulsa ambas neuronas motoras, como se demuestra mediante ensayos electrofisiológicos. En resumen, la ablación de una sola interneurona demuestra la competencia sináptica entre un par bilateral de neuronas que puede compensar la pérdida de una neurona y restaurar las respuestas normales al circuito de escape.
La ablación láser es una herramienta preferida para diseccionar circuitos neuronales en una amplia variedad de organismos. Desarrollado en sistemas genéticos modelo como gusanos y moscas, se ha aplicado en todo el reino animal para estudiar la estructura, la función y el desarrollo del sistema nervioso 1,2,3. Aquí, la ablación de una sola neurona se empleó para investigar cómo interactúan las neuronas durante el ensamblaje del circuito en Drosophila. El sistema de escape de la mosca es uno de los circuitos favoritos para el análisis porque contiene las neuronas más g....
Todos los animales utilizados para el protocolo fueron de la especie Drosophila melanogaster. No hay problemas éticos en torno al uso de esta especie. No era necesaria la autorización ética para llevar a cabo este trabajo. Los detalles de las especies de Drosophila , los reactivos y el equipo utilizado en el estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Cría de Drosophila y selección del estadio larvario correcto
Este método se puede utilizar para manipular el desarrollo de redes neuronales específicas en el sistema nervioso de Drosophila. La principal pregunta de investigación aquí fue la formación de conexiones sinápticas. La eliminación de la GF presináptica o la TTMn postsináptica permitió la investigación de la sinaptogénesis reactiva en esta sinapsis central y los mecanismos moleculares cruciales para la función y el desarrollo sináptico. Como se describe en el protocolo, se realizó una ablación cel.......
La ablación celular con un microscopio de 2 fotones demostró ser un método muy exitoso para manipular el desarrollo de circuitos neuronales en Drosophila. Dado que este método no es invasivo, causa un daño mínimo al animal. Los datos respaldan la utilidad de esta manipulación específica de la célula de circuitos conocidos.
Crucial para el éxito de la ablación fue la selección del controlador Gal4 más adecuado. Dado que el GFS está bien estudiado, se han descrito muchas l.......
Los autores no tienen nada que revelar.
Los experimentos con el microscopio de 2 fotones se realizaron en el Núcleo de Imágenes Celulares Avanzadas del Instituto del Cerebro Stiles-Nicholson de la FAU. Nos gustaría agradecer a la Iniciativa de Ciencias de la Vida de Júpiter por su apoyo financiero.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Alexa Fluor 488 AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jaxkson ImmunoResearch | 111-545-003 | |
Anti-green fluorescent protein, rabbit | Fisher Scientific | A11122 | 1:500 concentration |
Apo LWD 25x/1.10W Objective | Nikon | MRD77220 | water immersion long working distance |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma | B4287-25G | |
Chameleon Ti:Sapphire Vision II Laser | Coherent | ||
Cotton Ball | Genesee Scientific | 51-101 | |
Dextra, Tetramethylrhodamine, 10,000 MW, Lysine Fixable (fluoro-Ruby) | Fisher Scientific | D1817 | |
Drosophila saline | recipe from Gu and O'Dowd, 2006 | ||
Ethyl Ether | Fisher Scientific | E134-1 | Danger, Flammable liquid |
Fly food B (Bloomington recipe) | LabExpress | 7001-NV | |
Methyl salicylate | Fisher Scientific | O3695-500 | |
Microcentrifuge tube 1.5 mL | Eppendorf | 22363204 | |
Microscope cover-slip 18x18 #1.5 | Fisher Scientific | 12-541A | |
Neurobiotin Tracer | Vector Laboratories | SP-1120 | |
Nikon A1R multi-photon microscope | Nikon | on an upright FN1 microsope stand | |
NIS Elements Advanced Research | Nikon | Acquisition and data analysis software | |
Paraformaldehyde (PFA) | Fisher Scientific | T353-500 | |
PBS (Phosphate Buffered Salin) | Fisher BioReagents | BP2944-100 | Tablets |
R91H05-Gal4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 40594 | |
shakB(lethal)-GAl4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 51633 | |
Superfrost microscope glass slide | Fisher Scientific | 12-550-143 | |
Triton X-100 | Fisher Scientific | 422355000 | detergent solution |
UAS-10xGFP | Bloomington Drosophila Stock Center | 32185 |
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