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Este protocolo describe el diseño, la creación y la aplicación de las fosfatasas reguladas por rapamicina. Este método proporciona una alta especificidad y un estricto control temporal de la activación de la fosfatasa en las células vivas.
Las tirosina fosfatasas son una familia importante de enzimas que regulan funciones fisiológicas críticas. A menudo están desregulados en las enfermedades humanas, lo que los convierte en objetivos clave de los estudios biológicos. Las herramientas que permiten la regulación de la actividad de la fosfatasa son fundamentales en la disección de su función. Los enfoques tradicionales, como la sobreexpresión de mutantes negativos constitutivamente activos o dominantes, o la regulación negativa mediante siRNA, carecen de control temporal. Los inhibidores de la fosfatasa a menudo tienen poca especificidad y solo permiten a los investigadores determinar qué procesos se ven afectados por la inhibición de la fosfatasa.
Desarrollamos un enfoque quimiogenético, el sistema regulado por rapamicina (RapR), que permite la regulación alostérica de un dominio catalítico de fosfatasa que permite un control temporal estricto de la activación de la fosfatasa. El sistema RapR consiste en un dominio iFKBP insertado en un sitio alostérico en la fosfatasa. La dinámica estructural intrínseca del dominio RapR interrumpe el dominio catalítico, lo que lleva a la inactivación de la enzima. La adición de rapamicina media la formación de un complejo entre iFKBP y una proteína FRB coexpresada, que estabiliza la iFKBP y restaura la actividad del dominio catalítico de la fosfatasa.
Este sistema proporciona una alta especificidad y un estricto control temporal de la activación de la fosfatasa en las células vivas. Las capacidades únicas de este sistema permiten la identificación de eventos transitorios y la interrogación de vías de señalización individuales aguas abajo de una fosfatasa. Este protocolo describe las pautas para el desarrollo de una RapR-fosfatasa, su caracterización bioquímica y el análisis de sus efectos sobre la señalización y regulación posteriores de la morfodinámica celular. También proporciona una descripción detallada de una estrategia de ingeniería de proteínas, ensayos in vitro que analizan la actividad de la fosfatasa y experimentos de imágenes de células vivas que identifican cambios en la morfología celular.
Las proteínas tirosina fosfatasas son una familia crítica de proteínas involucradas en una gran cantidad de eventos de señalización celular. Se ha demostrado que desempeñan un papel clave en la regulación de la proliferación, migración y apoptosis celular 1,2,3. En consecuencia, la desregulación de la proteína tirosina fosfatasas conduce a una variedad de enfermedades y trastornos debilitantes 4,5,6,7. El estudio de....
1. Diseño de RapR-fosfatasas
La Figura 4 muestra los resultados que se pueden esperar del ensayo de actividad de fosfatasa basado en paxilina. En este experimento, se comparó la actividad de la fosfatasa Shp2 negativa constitutivamente activa y dominante con la de RapR-Shp2 activa e inactiva utilizando fosfopaxilina como lectura. Los constructos Shp2 fueron inmunoprecipitados y sometidos al ensayo de actividad descrito en el protocolo. Las lecturas de fosfo-paxilina para Shp2 constitut.......
Este protocolo proporciona pasos detallados para el desarrollo, la caracterización y la aplicación de fosfatasas controladas quimiogenéticamente. La herramienta RapR-Shp2 se basa en un interruptor regulado por rapamicina insertado en el dominio catalítico Shp2. El punto fuerte de esta herramienta es la especificidad y el estricto control temporal de la actividad de la fosfatasa. La herramienta es aplicable a otras fosfatasas y, en combinación con la tecnología RapR-TAP descrita ant.......
Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.
Los autores agradecen a la Dra. Jordan Fauser por su contribución al desarrollo de RapR-Shp2 y los protocolos asociados. El trabajo fue respaldado por un premio 5R35GM145318 del NIGMS, un premio R33CA258012 del NCI y un premio P01HL151327 del NHLBI.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
#1.5 Glass Coverslips 25 mm Round | Warner Instruments | 64-0715 | |
1.5 mL Tubes | USA Scientific | cc7682-3394 | |
2x Laemmli Buffer | For 500 mL: 5.18 g Tris-HCL, 131.5 mL glycerol, 52.5 mL 20% SDS, 0.5 g bromophenol blue, final pH 6.8 | ||
4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Biorad | 4561096 | |
5x Phusion Plus Buffer | Thermo Scientific | F538L | |
A431 Cells | ATCC | CRL-1555 | |
Agarsose | GoldBiotech | A-201 | |
Attofluor Cell Chamber | invitrogen | A7816 | |
Benchmark Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-products | 100-106 | Heat Inactivated Triple 0.1 µm sterile-filtered |
Brig 35,30 w/v % | Acros | 329581000 | |
BSA | GoldBiotech | A-420 | |
CellGeo | N/A | N/A | Published in 10.1083/jcb.201306067 |
CellMask Deep Red plasma membrane dye | invitrogen | c10046 | |
Colony Screen MasterMix | Genesee | 42-138 | |
DH5a competent cells | NEB | C2987H | |
DMEM | Corning | 15-013-CV | |
DMSO | Thermo Scientific | F-515 | |
DNA Ladder | GoldBio | D010-500 | |
dNTPs | NEB | N04475 | |
DpnI Enzyme | NEB | R01765 | |
DTT | GoldBio | DTT10 | DL-Dithiothreitol, Cleland's Reagents |
EGTA | Acros | 409910250 | |
Fibronectin from bovine plasma | Sigma | F1141 | |
FuGENE(R) 6 Transfection Reagent | Promega | E2692 | transfection reagent |
Gel extraction Kit | Thermo Scientific | K0692 | GeneJET Gel Extraction Kit |
Gel Green Nucleic Acid Stain | GoldBio | G-740-500 | |
Gel Loading Dye Purple 6x | NEB | B7024A | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | GlutaMAX-l (100x) 100 mL |
HEK 293T Cells | ATCC | CRL-11268 | |
HeLa Cells | ATCC | CRM-CCL-2 | |
HEPES | Fischer | BP310-500 | |
ImageJ Processing Software | N/A | N/A | |
Igepal CA-630 (NP40) | Sigma | I3021 | |
Imidazole Buffer | 25 mM Imidazole pH 7.2, 2.5 mM EDTA, 50 mM NaCl, 5 mM DTT | ||
KCl | Sigma | P-4504 | |
L-15 1x | Corning | 10-045-CV | |
LB Agar | Fisher | BP1425-2 | |
Lysis Buffer | 20 mM Hepes-KOH, pH 7.8, 50 mM KCl, 1 mM EGTA, 1% NP40 | ||
MATLAB | MathWorks | N/A | R 2022b update was used to run CellGeo functions |
Metamorph Microscopy Automation and Image Analysis Software | N/A | N/A | |
MgCl2 | Fisher Chemical | M33-500 | |
Mineral Oil | Sigma | M5310 | |
MiniPrep Kit | Gene Choice | 96-308 | |
Mini-PROTEAN TGX Precast Gels 12 well | Bio-Rad | 4561085 | |
Molecular Biology Grade Water | Corning | 46-000-CV | |
Multiband Polychroic Mirror | Chroma Technology | 89903BS | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-3 | |
Olympus UPlanSAPO 40x objective | Olympus | N/A | |
PBS w/o Ca and Mg | Corning | 21-031-CV | |
PCR Tubes | labForce | 1149Z65 | 0.2 mL 8-Strip Tubes and Caps, Rigid Strip Individually Attached Dome Caps |
Phusion Plus DNA Polymerase | Thermo Scientific | F630S | |
Primers | IDT | ||
Protein-G Sepharose | Millipore | 16-266 | |
PVDF Membranes | BioRad | 1620219 | Immun-Blot PVDF/Filter Paper Sandwiches |
Rapamycin | Fisher | AAJ62473MF | |
0.25% Trypsin, 2.21 mM EDTA, 1x [-] sodium | Corning | 25-053-CI | |
Tris-Acetate-EDTA (TAE) 50x | Fischer | BP1332-1 | for electrophoresis |
Wash Buffer | 20 mM Hepes-KOH, pH 7.8, 50 mM KCl, 100 mM NaCl, 1 mM EGTA, 1% NP40 | ||
β-Mercaptoethanol | Fisher Chemical | O3446I-100 | |
Antibodies | |||
Anti-EGFR Antibody | Cell Signaling | 2232 | |
Anti-Erk 1/2 Antibody | Cell Signaling | 9102 | |
Anti-Flag Antibody | Millipore-Sigma | F3165 | |
Anti-GAPDH Antibody | invitrogen | AM4300 | |
Anti-GFP Antibody | Clontech | 632380 | |
Anti-mCherry Antibody | invitrogen | M11217 | |
Anti-paxillin Antibody | Thermo Fischer | BDB612405 | |
Anti-phospho-EGFR Y992 Antibody | Cell Signaling | 2235 | |
Anti-phospho-Erk 1/2 T202/Y204 Antibody | Cell Signaling | 9101 | |
Anti-phospho-paxillin Y31 Antibody | Millipore-Sigma | 05-1143 | |
Anti-phospho-PLCγ Y783 Antibody | Cell Signaling | 14008 | |
Anti-PLCγ Antibody | Cell Signaling | 5690 |
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