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Este protocolo tiene como objetivo platear de manera estable ensamblajes fusionados dorsal-ventral en matrices de electrodos múltiples para modelar la epilepsia in vitro.
Los organoides del cerebro humano son estructuras tridimensionales (3D) derivadas de células madre pluripotentes humanas (hPSC) que recapitulan aspectos del desarrollo del cerebro fetal. La fusión de organoides cerebrales dorsales con ventrales especificados regionalmente in vitro genera ensamblajes, que tienen microcircuitos funcionalmente integrados con neuronas excitadoras e inhibidoras. Debido a su complejidad estructural y a la diversidad de la población de neuronas, los ensamblajes se han convertido en una herramienta útil in vitro para estudiar la actividad aberrante de la red. Los registros de matrices de electrodos múltiples (MEA) sirven como método para capturar potenciales de campo eléctrico, picos y dinámica de red longitudinal de una población de neuronas sin comprometer la integridad de la membrana celular. Sin embargo, adherir ensamblajes a los electrodos para registros a largo plazo puede ser un desafío debido a su gran tamaño y área de superficie de contacto limitada con los electrodos. Aquí, demostramos un método para colocar ensamblajes en placas MEA para registrar la actividad electrofisiológica durante un período de 2 meses. Aunque el protocolo actual utiliza organoides corticales humanos, se puede adaptar ampliamente a organoides diferenciados para modelar otras regiones del cerebro. Este protocolo establece un ensayo electrofisiológico robusto y longitudinal para estudiar el desarrollo de una red neuronal, y esta plataforma tiene el potencial de ser utilizada en el cribado de fármacos para el desarrollo terapéutico en la epilepsia.
Los organoides cerebrales derivados de células madre pluripotentes humanas (hPSC) son estructuras 3D espacialmente autoorganizadas que reflejan la arquitectura del tejido y las trayectorias de desarrollo in vivo. Están compuestas por múltiples tipos de células, incluyendo progenitores (células neuroepiteliales, glía radial, progenitores neuronales, progenitores gliales), neuronas (neuronas excitadoras de tipo cortical e interneuronas inhibidoras) y células gliales (astrocitos y oligodendrocitos)1,2. Los ensamblajes representan la próxima generación de organoides cereb....
Todos los procedimientos experimentales que se muestran a continuación se llevaron a cabo de acuerdo con las pautas éticas de la Junta de Revisión Institucional de la Facultad de Medicina de la Universidad de Michigan y el Comité de Supervisión de la Investigación de Células Madre Pluripotentes Humanas. Las líneas de iPSC utilizadas en este protocolo y los experimentos representativos se derivaron de fibroblastos de prepucio humano obtenidos de una fuente comercial. Los detalles de las líneas celulares, los reactivos y el equipo utilizados en este estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.
Los ensamblajes dorsal-ventrales humanos se colocaron en una placa MEA de 6 pocillos (n = 6 por diferenciación, 3 diferenciaciones), y cada pocillo contenía 64 electrodos (Figura 2A). Nueve de los diez ensamblajes planeados para el registro longitudinal estuvieron firmemente unidos a los electrodos durante más de 50 días in vitro (Figura 2D). 6 de los 8 ensambles designados para ensa.......
Se han utilizado métodos basados en MEA para registros electrofisiológicos de la actividad de la red en ensamblajes derivados de iPSC para el modelado in vitro de la epilepsia22,23. Esta plataforma propuesta que integra conexiones sinápticas excitadoras e inhibidoras tiene el potencial de abordar los mecanismos de hiperexcitabilidad neuronal y el papel de las interneuronas corticales en el proceso de epileptogénesis........
Los autores no tienen divulgaciones relevantes.
Este manuscrito fue apoyado por R01NS127829 NIH/NINDS (LTD). La Figura 1 se ha generado utilizando biorender.com.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
10 cm Corning Non TC-treated culture dishes | Corning | 08-772-32 | For suspension culture on the shaker |
100 mL Beaker | Fisher Scientific | FB100100 | |
100% Ethanol | Fisher Scientific | BP28184-4L | |
2-Mercaptoethanol (β-ME) | Thermo Fisher | 21985023 | Working concentration 100 μM |
48-well cell culture plate | Fisher Scientific | 50-202-140 | |
6-well cell culture plate | Fisher Scientific | 07-200-83 | |
Aggrewell 800 | Fisher Scientific | 501974754 | |
Allegra X-14R Refrigerated Centrifuge | Beckman Coulter | BE-AX14R | |
Allopregnanolone | Cayman | 16930 | Suspended 5mg into DMSO to get 1 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:10,000 for use. Working concentration 100 nM. |
Automated cell counter | Thermo Fisher | AMQAX2000 | |
Axion CytoView MEA 6-well plates | Axion Biosystems | M384-tMEA-6B | |
Axion Maestro MEA platform | Axion Biosystems | Maestro | With temp environmental control |
B-27 supplement (regular, with Vitamin A) | Thermo Fisher | 21985023 | |
B-27 supplement (without Vitamin A) | Thermo Fisher | 12587010 | |
Basement membrane matrix- Geltrex | Thermo Fisher | A1569601 | |
Bead bath | Fisher Scientific | 10-876-001 | Isotemp |
Benchtop inverted microscope | Olympus | CKX53 | Kept in laminar flow clean bench |
Bicuculline | Sigma-Aldrich | 14340 | Working concentration 10 μM |
Bleach | CLOROX | 67619-26 | |
Borate buffer 20x | Thermo Fisher | 28341 | Working concentration at 1x |
BrainPhys media | StemCell Technologies | 5790 | |
Cell dissociation reagent (StemPro Accutase) | Thermo Fisher | A1110501 | |
Celltron orbital shaker | HT-Infors | I69222 | |
Detergent/enzyme (Terg-A-Zyme) | Sigma-Aldrich | Z273287 | Working concentration 1% m/v |
DMEM/F12 + HEPES/L-Glutamine | Thermo Fisher | 113300 | |
DMSO | Sigma-Aldrich | 67685 | |
Dorsomorphin | Sigma-Aldrich | P5499 | Dissolve 5mg into DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:2000 for use. (working concentration 5 μM) |
D-PBS w/o calcium or magnesium | Thermo Fisher | 14190144 | |
Glial cell line-derived neurotrophic (GDNF) | Peprotech | 450-10 | Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
GlutaMAX supplement | Thermo Fisher | 35050061 | |
Hemacytometer | Election Microscopy Sciences | 63510-20 | |
HEPES | Thermo Fisher | 15630080 | |
Heraguard ECO Clean Bench | Thermo Fisher | 51029692 | |
Humidity controlled cell culture incubator | Thermo Fisher | 370 | set to 37 °C, 5% CO2 |
IWP-2 | Selleckchem | S7085 | Aliquot and freeze at −80 °C. It will precipitate if thawed at room temp. Frozen aliquots should be placed directly into 37 °C before use. |
Knockout serum replacement (KOSR) | Thermo Fisher | 10828010 | |
mTeSRplus (medium + supplements) | StemCell Technologies | 100-0276 | cGMP, stabilized feeder-free medium for human iPSC cells |
N2 supplement | Thermo Fisher | 17502048 | |
Neurobasal A | Thermo Fisher | 21103049 | |
Non-essential amino acids (NEAA) | Thermo Fisher | 11140050 | |
NT3 | Peprotech | 450-03 | Dissolve 100 μg in 1mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
NuFF Human neonatal foreskin fibroblasts | MTI-GlobalStem | GSC-3002 | |
Parafilm | PARAFILM | P7793 | |
Penicilin/Streptomycin | Thermo Fisher | 15140122 | |
Pipette (P10, P200, P1000) | Eppendorf | EP4926000034 | Autoclaved cut P1000 tips for organoid collection |
Poly (Ethyleneimine) (PEI) | Sigma-Aldrich | P3143 | Dilute stock in sterile borate buffer. Working concentration 0.07%. See details in manuscript. |
Recombinant human epidermal growth factor (EGF) | R&D Systems | 236-EG-200 | Suspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C. |
Recombinant Human fibroblast growth factor (FGF)-basic | Peprotech | 100-18B | Suspended in PBS. Aliquot and freeze at -20 °C. |
Recombinant human-brain-derived neurotrophic factor (BDNF) | Peprotech | 450-02 | Centrifuge briefly before reconstitution. Dissolve 100 μg in 1 mL of PBS to 100 μg/mL. Aliquot and freeze at −20 °C. Dilute at 1:5000 for use. (working concentration 20 ng/mL). |
Retinoic acid (RA) | Sigma-Aldrich | R2625 | Dissolve 100 mg into 3.3 mL of DMSO to get 100 mM stock solution. Aliquot the stock 100 μL/tube and freeze at −80 °C. Take 200 μL of 100 mM stock and dilute 10x (add 1.8 mL of DMSO) to make 10 mM stock. Aliquot 50 μL/tube and store at −80 °C. Dilute at 1:100,000 for use. (working concentration 100 nM). |
ROCK inhibitor Y-27632 | Tocris | 1254 | 1:200 from 10 mM stock |
SAG (smoothened agonist) | Selleckchem | S7779 | Aliquot and freeze at −80 °C. Stock concentration 1mM. Use at 1:10,000 dilution (working concentration 100 nM). |
SB-431542 | Tocris | 1614 | Dissolve 5mg into 1.3 mL of DMSO to get 10 mM stock solution. Aliquot and freeze at −80 °C. Dilute at 1:1000 for use. (working concentration 10 μM) |
Serological pipette filler | Fisher Scientific | 14-387-166 | |
Steriflip vacuum tube top filter | Sigma-Aldrich | SE1M179M6 | |
Sterile cell culture hoods | Baker Company | SG-600 | |
Trypan blue solution (0.4%) | Thermo Fisher | 15250061 | |
Trypsin-EDTA (0.25%) | Thermo Fisher | 25200056 | |
Zoom stereomicroscope | Olympus | SZ61/SZ51 | Kept in laminar flow clean bench |
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